بهینه‌سازی جوانه‌زنی ناهمزیست ارکیدۀ خربقی معمولی (Epipactis veratrifolia Boiss. & Hohen)

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 استادیار، گروه باغبانی پردیس ابوریحان دانشگاه تهران

2 استاد، گروه مهندسی و علوم باغبانی و فضای سبز پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج

3 استادیار، گروه مهندسی و علوم باغبانی و فضای سبز پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج

چکیده

برای بهینه‌سازی جوانه­زنی بذر ارکیدۀ خربقی معمولی، از دوازده سطح تیمار مختلف قندی (ساکارز، فروکتوز، گلوکز و دو ترکیب از قندهای فروکتوز و ساکارز) به همراه دو سطح تیمار نیتروژن آلی (2 گرم در لیتر پپتون) در محیط کشت فاست استفاده شد. نتایج نشان داد تیمارهای قندی ترکیب 2 فروکتوز-­ساکارز (H12)، 10 گرم در لیتر ساکارز (H8)، 20 گرم در لیتر گلوکز (H2) و ترکیب 1 فروکتوز-­ساکارز (H11) بدون اختلاف معنی­دار به ترتیب بهترین تأثیر را بر درصد جوانه­زنی و تیمارهای ترکیب 1 و 2 فروکتوز-ساکارز (H11 و H12) بهترین تأثیر را در رشد پداژه‌نما­ها داشتند. تیمارهای ترکیب 2 فروکتوز- ساکارز، 20 گرم در لیتر گلوکز و 10 گرم در لیتر ساکارز (H12P2، H2P2 و H8P2) که همگی 2 گرم در لیتر پپتون داشتند، بهترین ترکیب برای جوانه­زنی ناهمزیست بذر (به ترتیب با میانگین جوانه­زنی 6/79درصد، 6/74درصد و 2/71درصد) بودند. تیمار 30 گرم در لیتر ساکارز (H10P2) بهترین ترکیب برای رشد پداژه‌نما­ها (3/17میلی­متر) بود. در مجموع می­توان گفت نوع قند و مواد آلی بر درصد جوانه­زنی بذر به‌صورت ناهمزیست و نیز بر رشد بعدی گیاهچه­های پداژه‌نمای این‌گونه تأثیر معنی­دار دارند. بنابراین می­توان با استفاده از ترکیبی مناسب از آن‌ها درصد جوانه­زنی و رشد گیاهچه­های این‌گونه را بهبود بخشید.

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Improvement of asymbiotic germination of Epipactis veratrifolia

نویسندگان [English]

  • Shirin Dianati Daylami 1
  • Mohsen Kafi 2
  • Seyed Alireza Salami 3
1 Associate Professor, Aburayhan Campus, University of Tehran, Pakdasht, Tehran, Iran
2 Professor, University College of Agriculture & Natural Resources, University of Tehran, Karaj, Alborz, Iran
3 Assistant Professor, University College of Agriculture & Natural Resources, University of Tehran, Karaj, Alborz, Iran
چکیده [English]

For improvement asymbiotic seed germination media of temperate terrestrial orchid Epipactis veratrifolia , 12 different concentrations of the carbohydrates (fructose, glucose, sucrose and two combination of fructose with sucrose ) were assessed on the seed germination and protocorm development, in the presence (2g L−1) and absence of peptone in Fast medium. Results revealed significant differences between treatments on seed germination percentage and protocorm growth. Carbohydrate treatments; H12 (3.5g/l fructose+14 g/l sucrose), H8(10 g/l sucrose), H2 (20 g/l glucose), and H11 (5 g/l fructose+12 g/l sucrose) had significant effect on seed germination percentage. H11and H12 was the best medium for protocorm growth. H8P2(10 g/l sucrose+2 g/l peptone), H2P2(20 g/l glucose+2 g/l peptone) and H12P2(3.5g/l fructose+14 g/l sucrose+2 g/l peptone) were the best for seed germination respectively with 79/6%, 74/6% and 71/9% seed germination percentage. H10P2 (30 sucrose g/l+2 g/l peptone) with 17/3mm growth, significantly was the best for protocorm growth. Therefore kind and concentration of carbohydrate and presence of organic nitrogen (peptone) influence asymbiotic seed germination percentage and protocorm growth and could improved both of them. This finding revealing that it is possible to improvement asymbiotic seed germination of this species orchid with combination of mono and disaccharides and organic nitrogen.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Carbohydrate
  • In vitro culture
  • Native Orchid of Iran
  • Orchid
  • Peptone
  • Protocorm growth
Ali, M. J., Murdad, R. & Latip, M. A. (2011). In Vitro germination of Bornean Endemic Orchids Dendrobium tetrachromum and Dendrobium hamaticalcar. Empowering Science, Technoligy and Innovation Towards a Better tomorrow, 770-777.
Arditti, J. (2008). Micro propagation of Orchids. Blackwell Publishing.
Butcher, D. & Marlow, S.A. (2010). Asymbiotic germination of epiphytic and terrestrial orchids, Modern Methods In Orchid Conservation: The Role of Physiology, Ecology and Management. Pritchard H. N., Jodrell Laboratory Royal botanic Gardens, Kew, 1989, Cambridge university press.
Dowling, N. & Jusaitis, M. (2012). Asymbiotic in vitro germination and seed quality assessment of Australian terrestrial orchids. Australian Journal of Botany, Available online at: http://dx.doi.org/10.1071.BT12133.
Fast, G. (1976). Moglichkeiten zur Massenvermehrung von Cypripedium calceolus und anderen europaischen Wildorchideen. pp. 359-363. In Proceedings of the Eighth World Orchid Conference. German Orchid Society, Frankfurt, Germany.
George, E. F., Hall, M. A. & Klerk, G.-J. (2008). Plant Propagation by Tissue Culture 3rd Edition. Published by Springer, P.O. Box 17, 3300 AA Dordrecht, The Netherlands.
Hossain, M.M., Sharma, M. & Pathak, P. (2012). In vitro propagation of Dendrobium aphyllum (Orchidaceae) –seed germination to flowering. Journal of Plant Biochemistry Biothechnology.
Johnson, T. R., Kane, M. E. & Pe´rez, H. E. (2011). Examining the interaction of light, nutrients and carbohydrates on seed germination and early seedling development of Bletia purpurea (Orchidaceae). Plant Growth Regulator, 63, 89-99.
Jorgensen, B. I. & Andersen, T. F. (1998). Hardy and half hardy terrestrial orchids as potential new potplants. In: Proceedings of third international symposium on new floriculture crops, Acta Horticulturae, 454, International Society for Horticultural Science (ISHS). pp.195-205.
Kauth, Ph. (2005). In vitro Seed germination and seedling development of Calopogon tuberosus and Sacoila lanceolata var. lanceolata: Two Florida native terrestrial Orchids. M.Sc. thesis, University of Florida.
Mozaffarian, VA. (2006). A Dictionary of Iranian Plant Names. Farhang Moaser, Tehran. 1064. (in Farsi)
Rasmussen, H.N. (1995). Terrestrial orchids from seed to mycotrophic plant. Cambridge University Press.
Rens J. – Translation by: H. Mohammadian. (1998). Iranian orchid flowers. Rahnama Publications. 125. (in Farsi)
Sangba, T. & Deb, C.R. (2006). Effect of different factors on non-symbiotic seed germination, formation of protocorm-like bodies and plantlet morphology of Cleisotoma racemiferum (Lindl.) Garay. Indian Journal of Biotechnology, 5, 223-228.
Luana Schneider, D.Sc. J. S. de P. Araújo, D.Sc. Gilmar, & Zaffari, R. (2014). Seed Germination of Cattleyaintermedia and Cattleyawarneri in Alternative culture Media. American International Journal of Contemporary Research, 4, 7, 60-66.
Shahsavari, A. (2001). Persian orchids the introduction of species identification kers and their distribution. Research institute of forests and rangelands. 66. (in Farsi)
Stewart, S. L. & Kane, M. E. (2010). Effects of carbohydrate source on the in vitro asymbiotic seed germination of the terrestrial orchid Habenaria macroceratitis. Journal of Plant Nutrition, 33(8), 1155-1165.
Testtelova  T., Tesitel J., Jersakova J., Rihova G. & Selosse, M. (2012) Symbiotic germination capability of four Epopactis species (Orchidacea) is broader than expected from adult ecology. American Journal of Botany, 99(6), 1020-1032.
Wotavova-Novotna, K., Vejsadova, H. & Kindlamnn, P. (2007). Effects of sugars and growth regulators on in vitro growth of Dactylorhiza species. Biologia Plantarum, 51(1), 198-200.
Zeng, S., Wu, K. J., Silva, A. T., Zhang, J., Xia, Z., Chen, N. & Duan, J. (2012). Asymbiotic seed germination, seedling development and reintroduction of Paphiopedilum wardii Sumerh, and endangered terrestrial orchid. Scientia Horticulturae, 138L, 198-209.