پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.123650.759 مقاله پژوهشی تأثیر تیمار پیش از برداشت پوترسین‏ بر ویژگی‏های کمی، کیفی و عمر پس از برداشت گل شاخه‌بریدۀ لیزیانتوس ((Eustoma grandiflorum cv. Miarichi Grand white عطایی داود دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج نادری روح انگیز استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج خندان میرکوهی عزیزالله استادیار، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج 23 08 2017 48 2 229 242 11 05 2015 11 09 2015 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63043.html

این آزمایش باهدف بررسی تأثیر محلول‏پاشی برگی پوترسین در مرحلۀ پیش از برداشت بر کیفیت رویشی و ویژگی‏های پس از برداشت گل شاخه‌بریدۀ لیزیانتوس رقم میاریچی گرند وایت انجام شد. گیاهان در گلدان‏های محتوای خاک زراعی، ماسه و خاک‌برگ پوسیده با نسبت 1:1:1 حجمی کشت شدند. تیمار‏ها در مرحلۀ پیش از برداشت شامل پوترسین با چهار غلظت 0 (شاهد)، 5/0، 1 و 2 میلی‌مولار بودند که در مرحلۀ انگیزش غنچه انجام شد. صفات مربوط به کیفیت رویشی شامل طول و قطر غنچه، ارتفاع ساقۀ گل‏دهنده و وزن تر و خشک آن، سطح برگ و محتوای سبزینه (کلروفیل) بودند. نتایج نشان داد، تیمار پوترسین منجر به افزایش بسیاری از ویژگی‏ها مانند طول و قطر غنچه، ارتفاع ساقۀ گل‏دهنده و وزن تر و خشک آن، سطح برگ و محتوای سبزینۀ برگ نسبت به تیمار شاهد شد. همچنین در بین غلظت‏ها پوترسین 2 میلی‌مولار بیشترین تأثیر را بر عامل‏های اندازه‏گیری‌شده داشتند. به‌منظور بررسی تأثیر تیمارهای پیش از برداشت پوترسین بر ویژگی‏های پس از برداشت گل شاخه‌بریدۀ لیزیانتوس، گل‏ها در مرحله‏ای که دو غنچۀ آن به‌طور کامل باز شدند، برداشت شدند. نتایج نشان داد، تیمارهای پیش از برداشت منجر به افزایش عمر گلجایی، حفظ بهتر وزن تر نسبی و جذب آب نسبی نسبت به تیمار شاهد شدند. همچنین کاهش میزان نشت یونی، تجمع کمتر مالون‏دی‏آلدئید، فعالیت کمتر آنزیم لیپوکسیژناز، تجمع کمتر H2O2 و بهبود آنزیم‏های پاداکسندۀ (آنتی‌اکسیدان) کاتالاز و آسکوربات پراکسیداز در غلظت 2 میلی‌مولار پوترسین نسبت به تیمار شاهد به دست آمد.

 آنزیم‏های پاداکسنده جذب آب عمر گلجایی کیفیت رویشی لیپوکسیژناز مالون‏دی‏آلدئید Abdel Aziz Nahed, G., Taha Lobna, S. & Ibrahim Soad, M. (2009). Some studies on the effect of putrescine, ascorbic acid and thiamine on growth, flowering and some chemical constituents of gladiolus plants at Nubaria. Ozean Journal of Applied Sciences, 2(2). Aebi, H. (1984). Catalase in vitro. Methods Enzymology, 105, 121-126. Alaey, M. (2011). Study the effect of salicylic acid in pre- and postharvest treatment on physio-chemical characteristics and vase-life of Rose hybrid L. Black Magic. Ph.D. Thesis. Faculty of Agriculture Tehran University, Iran. (in Farsi) Alexieva, V., Sergiev, I., Mapelli, S. & Karanov, E. (2001). The effect of drought and ultraviolet radiation on growth and stress markers in pea and wheat. Plant Cell and Environment, 24, 1337-1344. Arnon, A. N. (1967). Method of extraction of chlorophyll in the plants. Agronomy Journal, 23, 112-121. Arrom, L. & Munné-Bosch, S. (2010). Tocopherol composition in flower organs of Lilium and its variations during natural and artificial senescence. Plant Science,179, 289-295. Axelroad, B., Cheesebrough, T. M. & Laasko, S. (1981). Lipoxigenase from soybeans. Methods Enzymology, 71, 441-451. Azad, A. K., Ishikawa, T., Ishikawa, T., Sawa, Y. & Shibata, H. (2008). Intracellular energy depletion triggers programmed cell death during petal senescence in tulip. Journal of Experimental Botany, 59, 2085-2095. Bagni, N., Tassoni, A. & Teixeira daSilva, J. A. (2006). In: J.A. Teixeira daSilva (Ed), the role of polyamines in relation to flower senescence. Floriculture, ornamental and plant biotechnology. (pp. 88-95)Springer Science. Bailly, C., Corbineau, F. & van Doorn, W. G. (2001). Free radical scavenging and senescence in Iris tepals. Plant Physiology and Biochemistry,39, 649-656. Bais, H. P. & Ravishankar, G. A. (2002). Role of polyamines in the ontogeny of plants and their biotechnological applications. Plant Cell Tissue Organ Culture, 69, 1-34. Bouchereau, A., Aziz, A., Larher, F. & Martin-tanguy, J. (1999). Polyamines and environmental challenges: recent development. Plant Science, 140, 103-125. Chakrabarty, D., Chatterjee, J. & Datta, S. K. (2007). Oxidative stress and antioxidant activity as the basis of senescence in chrysanthemum florets. Plant Growth Regulation, 53, 107-115. Fukuchi-Mizutani, M., Ishiguro, K., Nakayama, T., Utsunomiya, Y., Tanaka, Y., Kusumi, T. & Ueda, T. (2000). Molecular and functional characterization of a rose lipoxygenase cDNA related to flower senescence. Plant Science, 160, 129-137. Ghahsare, M. & Kafi, M. (2012). Floriculture. Pearson Prentice Hall. (in Farsi) Hong, Y., Wang, T. W., Katalin, A., Hudak, F. S., Carol, D., Froese, J. & Thompson, E. (2000). An ethylene induced cDNA encoding a lipase expressed at the onset of senescence. PNAS, 97, 871722. Hossain, Z., Mandal, A. K. A., Datta, S. K. & Biswas, A. K. (2006). Decline in ascorbate peroxidase activity a prerequisite factor for tepal senescence in Gladiolus. Journal of Plant Physiology, 163, 186-194. Hosseini-Farahi, M., Khalighi, A., Kholdbarin, Mashhadi, B., Akbar-boojar, M. & Eshghi, S. (2013). Morphological responses and vase life of Rosa hybrida cv. Dolcvita to polyamines spray in hydroponic system. World Applied Sciences Journal, 21(11), 1681-1686. Jiang, Y. M. & Chen, F. (1995) A study on polyamine change and browning of fruit during cold storage of litchi fruit. Postharvest Biology and Technology, 5, 245-250. Joyce, D. C. & Jones, P. N. (1992). Water balance of the foliage of cut Geraldton waxflower. Postharvest Biology and Technology, 2, 31-39. Lee, M. M., Lee, S. H. & Park, K. Y. (1997). Effects of spermine on ethylene biosynthesis in cut carnation (Dianthus caryophyllus L.) flowers during senescence. Journal of plant physiology, 151(1), 68-73. Liu, J. H., Kitashiba, H., Wang, J., Ban, Y. & Moriguchi, T. (2007). Polyamines and their ability to provide environmental stress tolerance to plants. Plant Biotechnology, 24(1), 117-126. Mahgoub, M. H., Abdel Aziz Nahed, G. & Mazhar, M. A. (2011). Response of Dahila pinnata L. plant to floiar spray white putrescine and thiamine on growth, flowering and photosynthetic pigments. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences, 10(5), 769-775. Mahros, K. M., El-Saady, M. B., Mahgoub, M. H., Afaf, M. H. & El-Sayed, M. I. (2011). Effect of putrescine and uniconazole treatments on flower characters and photosynthetic pigments of Chrysanthemum indicum L. plant. Journal of American Science, 7, 399-408. Majidiyan, N. (2013). Study some aspects of flower Senescence in Asiatic hybrid lily Seb Dassel. Ph.D. thesis. Faculty of Agriculture Tehran University, Iran. (in Farsi) Panavas, T., Walker, E. L. & Rubinstein, B. (1998). Possible involvement of abscisic acid in senescence of daylily petals. Journal of Experimental Botany, 49(329), 1987-1997. Motozu, T. & Makihara, T. (2001). Selection of useful cultivars in Eustoma grandiflorum with flower longevity as an additional selecting factor. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science, 9, 23-28. Pandey, S., Ranade, S. A., Nagar, P. K. & Kumar, N. (2000). Role of polyamines and ethylene as modulators of plant senescence. Journal of Biosciences, 25(3), 291-299. Ranieri, A., Castagna, J., Pacini, B., Baldan, A. & Mensuali Sodi, G. F. (2003). Soldatini early production and scavenging of hydrogen peroxide in the apoplast of sunflowers plants exposed to ozone. Journal of Experimental Botany, 54, 2529-2540. Rogers, H. J. (2012). Is there an important role for reactive oxygen species and redox regulation during floral senescence?. Plant, Cell & Environment, 35(2), 217-233. Rubinowska, K. & Miachałek, W. (2009). Influence of putrescine on leaf senescence of Helianthus annuus L. potted plants. Horticulture and Landscape Architecture, 30, 57-65. Rubinowska, K., Pogroszewska, E. & Michałek, W. (2012). The effect of polyamines on physiological parameters of post-harvest quality of cut stems of Rosa ‘Red Berlin’. Acta Scientiarum Polonorum Hortorum Cultus, 11(6). Shahri, W. & Tahir, I. (2011). Flower senescence-strategies and some associated events. Botanical Review, 77, 152-184. Shimizu, H. & Ichimura, K. (2010). Postharvest physiology and technology of cut Eustoma flowers. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science, 79(3), 227-238. Sivaprakasam, G., Singh, V. P. & Arora, A. (2009). Physiological and molecular analysis of effect of spermine on senescing petals of gladiolus. Indian Journal of Plant Physiology, 14(4), 384-391. Soleimany-Fard, E., Hemmati, K. & Khalighi, A. (2014(. Impact of pre- and post-harvest putrescine applications on water relations and vase life of cut alstroemeria flowers. Advances in Environmental Biology, 8(12), 158-165. Stewart, R. C. & Beweley, J. D. (1980). Lipid peroxidation associated with accelerated aging of soybean axes. Plant Physiology, 25, 136-1. van Doorn, W. G. & Woltering, E. J. (2008). Physiology and molecular biology of petal senescence. Journal of Experimental Botany, 59(3), 453-480. Yamane, K., Kawabata, S. & Fujishige, N. (1999). Changes in activities of superoxide dismutase, catalase and peroxidase during senescence of Gladiolus florets. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science,68, 798-802. Yang, C. W., He, S. G., Jiang, Y. M. & Yi, S. (2000). Effects of polyamines on biochemical and physiological changes and vase life of cut rose (Rosa chinensis Jacq. cv. Bellamie) flowers during senescence. Journal of Tropical and Subtropical Botany, 8(2), 104-108. Youssef, A. A., Mahgoub, M. H. & Talaat, I. M. (2004). Physiological and biochemical aspects of Matthiola incana plants under the effect of Putrescine and Kinetin treatments. Egypt journal applied science, 19(9B) 492-510. Zhang, Y., Guo, W., Chen S., Han, L. & Li, Z. (2007). The role of N-lauroylethanolamine in the regulation of senescence of cut carnations (Dianthus caryophyllus). Journal of Plant Physiology, 164, 993-1. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.127919.801 مقاله پژوهشی بررسی رابطۀ بین عملکرد گل و اجزای آن در ده ژنوتیپ‌ گل محمدی در گلپایگان نظرالملک اسماعیل دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان زاهدی بهمن استادیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان زینلی حسین استادیار، مرکز تحقیقات کشاورزی استان اصفهان 23 08 2017 48 2 243 249 17 07 2015 07 12 2015 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63044.html

به‌منظور بررسی عملکرد گل و اجزای آن از نظر صفات ریخت‌شناختی (مورفولوژیک)، شمار ده نژادگان (ژنوتیپ) گل محمدی (Rosa damascena Mill.) از نقاط مختلف کشور، در قالب طرح بلوک‌های کامل تصادفی با سه تکرار در ایستگاه تحقیقات کشاورزی شهرستان گلپایگان کشت شده و در سال 1392 بررسی شدند. در نتایج مقایسۀ میانگین‌ها، از نظر آماری در صفت عملکرد بوته، نژادگان یزد2 با بیشترین عملکرد و نژادگان خوزستان با کمترین عملکرد و همچنین در صفت عملکرد اسانس در هکتار نژادگان اصفهان4 با بیشترین عملکرد معنی‌دار داشتند. همبستگی معنی‌داری در سطح 1 درصد در بین صفات مشاهده شد که از مهم‌ترین آن‌ها همبستگی مثبت و معنی‌دار ارتفاع گیاه و شمار گل با عملکرد بوته بود. همچنین نتایج تجزیۀ واریانس نشان داد، بین نژادگان‌ها برای همۀ صفات ارزیابی‌شده اختلاف معنی‌داری وجود دارد، اما برای صفات درصد اسانس و نسبت وزن گلبرگ به وزن گل اختلاف معنی‌داری وجود نداشت. در تجزیۀ خوشه‌ای نیز نژادگان‌های مورد بررسی در چهار گروه متفاوت قرار گرفتند.

 صفات مورفولوژی عملکرد اسانس عملکرد گل گل محمدی نژادگان Carins, T. (2003). Horticulture classification schemes. 117-124. In: A.V. Roberts, T. Debener, and S. Gudin, (Eds), Encyclopedia of Rose Science. Vol. l. Elsevier Academic Press. Amesterdom. Chevallier, A. (1996). The encyclopedia of medicinal plants. Dorling Kindersley, London. 336. Fraser, J. & Eaton, G. W. (1983). Application of yield component analysis to crop research. Field Crop Abs, 39, 787-797. Haghi-Kashani, A., Tabaei-aghdaei, S. R., Zeinali, H. & Rozban, M. R. (2012). Relationships between yield and its components in Damask Rose (Rosa damascena Mill) genotypes. Crops Magazine, 14(1), 19-13. (in Farsi) Kafi, M. & Riazi, Y. (2002). Rose growing and rose water production. Parchin publishing, Tehran University Press. 110. (in Farsi) Koduri, M. & Tabaei-aghdaei, S. R. (2007). Evaluation of yield and its components in the accession of the Damask rose in Kerman. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 23(1), 100-111. (in Farsi) Linley, J. (1820). Rosarum Monographia-A Botanical History of Roses. J. Ridgeway, London. Nilson, O. (1972). Rosa. 104-128. In: P. H. Davis, (ed.). Flora of Turkey and the Aegean Island, Vol. 4, University Press, Edinborough, UK. Pal, B. P. (1991). The rose in India. Indian Council of Agricultural Research, Delhi. pp. 389. Rahmani, A., Shakibi, M., Tabaei-aghdaei, S. R. & Ashraf Jafari, A. (2011). The effect of chemical fertilizers and livestock on flower size and growth rate of Damask Rose (Rosa damascena Mill). Iranian conference National Botanical Gardens, 6(3), 987. (in Farsi) Tabaei-aghdaei, S. R., Rezaee, M. B. & Jaymand, K. (2003a). Evaluate the variation in components flowers and essential oil yield Damask rose genotypes in Kashan. Iranian Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 11(2), 219-234. (in Farsi) Tabaei-aghdaei, S. R. & Babaei, M. (2003b). Evaluation of the genetic diversity of (Rosa damascena Mill) drought tolerance in Damask Rose cuttings using multivariate analysis. Iranian Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 11(1), 39-51. (in Farsi) Tabaei-Aghdaei, S. R. (2004a). Evaluation performance and morphological traits in a number of plants Damask rose genotypes. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 20(1), 111-122. (in Farsi) Tabaei-aghdaei, S. R., Sahebi, M., Jafari, A. A. & Rezaei, M. B. (2004b). Evaluation of flower yield and morphological characteristics of 11 Rosa damascena Mill. Genotypes using multivariate analysis. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 20(2) 199-211. (in Farsi) Tabaei-aghdaei, S. R. Farhangian, S. & Jafari, A. A. (2005). Yield components in genotypes of Damask rose (Rosa damascena Mill.) Central regions of the country using path analysis. Iranian journal Specialized plants and ecology, 1, 45-54. (in Farsi) Tabaei-Aghdaei, S. R., Soleymani, A. & Jafari, A. A. (2005). Variation in flowering time and morphology 8 genotypes Damask rose (Rosa damascena Mill.). Iranian Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 12(3), 265-280. (in Farsi) Tabaei-aghdaei, S. R., Lebaschi, M. H., jafari, A. A., Mirjani, L., Najafi-ashtiani, A., Nemati-Loghmejani, Z. & Daneshjo, M. (2011). Study the reaction to the dry conditions in the 10 accession Damask rose. Conference National Botanical Gardens, Nov 2011. (in Farsi) Yousefi, B., Tabaei-Aghdaei, S. R., Darvish, F. & Assareh, M. H. (2009) Flower yield performance and stability of various Rosa damascena Mill. Landracesunder different ecological conditions. Scientia Horticulturae, 121, 333-339. Zeinali, H., Tabaei-aghdaei, S. R., Asgarzadeh, M., kianipoor, A. & Abtahi, S. M. (2007). Study the relationship between yield and yield components in Damask rose genotypes. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 23(2), 195-203. (in Farsi) _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.135238.863 مقاله پژوهشی تأثیر دو روش پوشاندن با کاغذ مومی در مهار آسیب‌های ناشی از سرمازدگی میوۀ انار ’ملس ساوه‘ در سردخانه بابالار مصباح استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج مسیب زاده عزیزه دانشجوی دکتری، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج زمانی ذبیح‌اله استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج موسوی امیر دانشیار، گروه بیوتکنولوژی کشاورزی، پژوهشگاه ملی مهندسی‌ژنتیک و زیست‌فناوری فتاحی‌مقدم محمدرضا دانشیار، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج 23 08 2017 48 2 251 263 31 10 2015 16 04 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63045.html

یکی از مهم‌ترین عامل‌های محدود‌کنندۀ انبارداری میوۀ انار تنش سرمازدگی است. از نشانه‌های قابل‌مشاهده می‌توان به قهوه‌ای شدن پوست و رنگ‌پریدگی نارمیانبر (آریل)‌ها اشاره کرد. در طول سال‌های گذشته تحقیقات پرشماری به‌منظور بررسی و مهار این پدیده صورت گرفته است. در این پژوهش تأثیر دو روش پوشاندن میوه با کاغذ مومی در مهار آسیب‌های ناشی از تنش سرمازدگی نسبت به شاهد مقایسه و ارزیابی شده است. روش کار به این صورت بود که شماری از میوه‌ها درون پوشالی از کاغذ مومی قرار گرفته و شمار دیگری از میوه‌ها درون صفحه‌های کاغذ مومی پیچیده شدند. میوه‌های شاهد هیچ پوششی دریافت نکردند. میوه‌ها به انباری با دمای 5 درجۀ‌ سلسیوس و رطوبت نسبی 85درصد منتقل شدند. نمونه‌برداری به مدت 12 هفته و هر سه ‌هفته یک‌بار انجام شد. ارزیابی‌های ظاهری نشان داد، پوشاندن میوه‌ها باعث کاهش معنی‌دار قهوه‌ای شدن پوست و حفظ درخشندگی نارمیانبر‌ها می‌شود. همچنین مشخص شد که میوه‌های پوشانده‌شده نشت یونی و پراکسیدهیدروژن کمتری نسبت به میوه‌های شاهد داشته‌اند. تحلیل نتایج به‌دست‌آمده نشان می‌دهد، هر دو روش پوشاندن قابلیت مهار آسیب‌های ناشی از تنش سرمازدگی در بافت‌های مختلف میوۀ انار را داشته‌اند. بنابراین هر دو روش پوشاندن قابلیت تجاری‌سازی را دارند، با این حال پیچیدن میوه‌ها درون صفحه‌های کاغذی به دلیل کارایی بهتر و نیاز به میزان کمتر کاغذ در اولویت قرار می‌گیرد.

 انبارداری تنش قهوه‌ای شدن نارمیانبر نشت یونی Alferez, F., Lluch, Y. & Burns, J. K. (2008). Phospholipase A2 and postharvest peel pitting in citrus fruit. Postharvest Biology and Technology, 49(1), 69-76. Arbona, V., Manzi, M., Ollas, C. D. & Gomez-Cadenas, A. (2013). Metabolomics as a tool to investigate abiotic stress tolerance in plants. International journal of molecular sciences, 14(3), 4885-4911. Artes, F., Villaescusa, R. & Tudela, J. A. (2000). Modified atmosphere packaging of pomegranate. Journal of Food Science, 65(7), 1112-1116. Azene, M., Workneh, T. S. & Woldetsadik, K. (2014). Effect of packaging materials and storage environment on postharvest quality of papaya fruit. Journal of food science and technology, 51(6), 1041-1055. Barman, K., Asrey, R., Pal, R. K., Kaur, C. & Jha, S. K. (2014). Influence of putrescine and carnauba wax on functional and sensory quality of pomegranate (Punica granatum L.) fruits during storage. Journal of Food Science and Technology, 51(1), 111-117. Bergevin, M., Lheureux, G. P., Thompson, J. E. & Willemot, C. (1993). Effect of chilling and subsequent storage at 20oC on electrolyte leakage and phospholipid fatty acid composition of tomato pericarp. Physiologia Plantarum, 87(4), 522-527. Bligh, E. G. & Dyer, W. J. (1959). A rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochemistry and Physiology, 37(8), 911-917. Caleb, O. J. (2013). Modified Atmosphere Packaging of Pomegranate Arils. Ph.D. Thesis. Department of Food Science, Faculty of Agricultural Sciences, Stellenbosch University, South Africa. Campos, P. S., nia Quartin, V., chicho Ramalho, J. & Nunes, M. A. (2003). Electrolyte leakage and lipid degradation account for cold sensitivity in leaves of Coffea sp. plants. Journal of plant physiology, 160(3), 283-292. Das, P. K., Shin, D. H., Choi, S. B. & Park, Y. I. (2012). Sugar-hormone cross-talk in anthocyanin biosynthesis. Molecules and Cells, 34(6), 501-507. Demidchik, V., Straltsova, D., Medvedev, S. S., Pozhvanov, G. A., Sokolik, A. & Yurin, V. (2014). Stress-induced electrolyte leakage: The role of K+-permeable channels and involvement in programmed cell death and metabolic adjustment. Journal of Experimental Botany, 65(5), 1259-1270. Elyatem, S. M. & Kader, A. A. (1984). Post-harvest physiology and storage behaviour of pomegranate fruits. Scientia Horticulturae, 24(3), 287-298. Fawole, O. A. & Opara, U. L. (2013). Effects of storage temperature and duration on physiological responses of pomegranate fruit. Industrial Crops and Products, 47, 300-309. Fraser, C. M. & Chapple, C. (2011). The phenylpropanoid pathway in Arabidopsis. The Arabidopsis Book, 2011(9), doi:10.1199/tab.0152. Giusti, M. M. & Wrolstad, R. E. (2001). Characterization and measurement of anthocyanins by UV‐visible spectroscopy. Current Protocols in Food Analytical Chemistry, 2001, doi:10.1002/0471142913.faf0102s00. Gonzalez-Aguilar, G. A., Fortiz, J., Cruz, R., Baez, R. & Wang, C. Y. (2000). Methyl jasmonate reduces chilling injury and maintains postharvest quality of mango fruit. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 48(2), 515-519. Hansen, J. & Moller, I. B. (1975). Percolation of starch and soluble carbohydrates from plant tissue for quantitative determination with anthrone. Analytical Biochemistry, 68(1), 87-94. Huelin, F. E. & Coggiola, I. M. (1968). Superficial scald, a functional disorder of stored apples. IV: Effect of variety, maturity, oiled wraps and diphenylamine on the concentration of a‐farnesene in the fruit. Journal of the Science of Food and Agriculture, 19(6), 297-301. Idah, P. A., Musa, J. J. & Abdullahi, M. (2010). Effects of storage period on some nutritional properties of orange and tomato. AU J.T., 13(3), 181-185. Kader, A. A., Chordas, A. & Elyatem, S. (1984). Responses of pomegranates to ethylene treatment and storage temperature. California Agriculture, 38(7), 14-15. Kader, A. A., Zagory, D., Kerbel, E. L. & Wang, C. Y. (1989). Modified atmosphere packaging of fruits and vegetables. Critical Reviews in Food Science & Nutrition, 28(1), 1-30. Khan, D., Khan, R. A., Bibi, S., Ali, S. & Khalil, A. I. (2007). Storage stability of persimmon fruits (Diospuros kaki) stored in different packaging materials. Journal of Agricultural and Biological Science, 2(2), 20-23. Khorshidi, M. & Abavisani, A. (2013). Effect of putrescine on dragonhead under low temperature. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 5(20), 2454-2458. Khwaldia, K., Arab‐Tehrany, E. & Desobry, S. (2010). Biopolymer coatings on paper packaging materials. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 9(1), 82-91. Lara, I., Belge, B. & Goulao, L. F. (2014). The fruit cuticle as a modulator of postharvest quality. Postharvest Biology and Technology, 87, 103-112. Lara, I., Belge, B. & Goulao, L. F. (2015). A focus on the biosynthesis and composition of cuticle in fruits. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 63(16), 4005-4019. Laribi, A. I., Palou, L., Taberner, V. & Perez-Gago, M. B. (2012). Modified atmosphere packaging to extend cold storage of pomegranate cv. Mollar de Elche. http://www.academia.edu/2500799. Lee, S. H., Singh, A. P. & Chung, G. C. (2004). Rapid accumulation of hydrogen peroxide in cucumber roots due to exposure to low temperature appears to mediate decreases in water transport. Journal of Experimental Botany, 55(403), 1733-1741. Le Gall, H., Philippe, F., Domon, J. M., Gillet, F., Pelloux, J. & Rayon, C. (2015). Cell wall metabolism in response to abiotic stress. Plants, 4(1), 112-166. Lo Piero, A. R., Puglisi, I., Rapisarda, P. & Petrone, G. (2005). Anthocyanins accumulation and related gene expression in red orange fruit induced by low temperature storage. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53(23), 9083-9088. Mao, L., Pang, H., Wang, G. & Zhu, C. (2007). Phospholipase D and lipoxygenase activity of cucumber fruit in response to chilling stress. Postharvest Biology and Technology, 44(1), 42-47. Mandal, C., Ghosh, N., Adak, M. K. & Dey, N. (2013). Interaction of polyamine on oxidative stress induced by exogenously applied hydrogen peroxide in Salvinia natans Linn. Theoretical and Experimental Plant Physiology, 25(3), 223-230. Marsh, K. & Bugusu, B. (2007). Food packaging: roles, materials, and environmental issues. Journal of Food Science, 72(3), 39-55. McCollum, T. G. & McDonald, R. E. (1991). Electrolyte leakage, respiration, and ethylene production as indices of chilling injury in grapefruit. HortScience, 26(9), 1191-1192. Miguel, G., Fontes, C., Antunes, D., Neves, A. & Martins, D. (2004). Anthocyanin concentration of ‘Assaria’ pomegranate fruits during different cold storage conditions. Journal of Biomedicine and Biotechnology, 2004(5), 338-342. Mirdehghan, S. H. & Rahemi, M. (2002). Reduction of chilling injury in the pomegranate (Punica granatum L.) fruits by intermittent warming. Iranian Journal of Agriculture Science, 33(1), 75-80. (in Farsi) Mirdehghan, S. H. & Rahemi, M. (2005). Effect of hot water treatment on reducing chilling injury of pomegranate (Punica granatum L.) fruit during storage. Acta Horticulturae, 682, 887-892. Mirdehghan, S. H. & Rahemi, M. (2010). Determination of time of chilling injury occurrence in pomegranate fruit (Punica granatum L.) during cold storage.  Iranian Journal of Horticultural science, 41(1), 11-18. (in Farsi) Mohammadrezakhani, S. & Pakkish, Z. (2015). Reduction of chilling injury and peroxide hydrogen accumulation in Thompson grape (Vitis vinifera L.) fruit by proline and ascorbic acid during storage. Journal of Plant Physiology and Breeding, 5(1), 1-12. Nunes, M. C. N. & Emond, J. P. (2007). Relationship between weight loss and visual quality of fruits and vegetables. In: Proceedings of the Florida State Horticultural Society, 120, 235-245. Page, T., Griffiths, G. & Buchanan-Wollaston, V. (2001). Molecular and biochemical characterization of postharvest senescence in broccoli. Plant Physiology, 125(2), 718-727. Petrov, V. D. & Van Breusegem, F. (2012). Hydrogen peroxide: A central hub for information flow in plant cells. AoB Plants, 2012: 1-13. Rab, A., Haq, S., Khalil, S. A. & Ali, S. G. (2010). Fruit quality and senescence related changes in sweet orange cultivar Blood red unipacked in different packing materials. Sarhad Journal of Agriculture, 26, 221-227. Rahemi, M. & Mirdehghan, S. H. (2004). Effects of temperature conditioning on reducing chilling injury in pomegranate fruits during storage. Indian Journal of Horticulture, 61(4), 345-347. Ramezanian, A., Rahemi, M., Maftoun, M., Bahman, K., Eshghi, S., Safizadeh, M. R. & Tavallali, V. (2010). The ameliorative effects of spermidine and calcium chloride on chilling injury in pomegranate fruits after long-term storage. Fruits, 65(3), 169-178. Rashidi, M., Bahri, M. H., Naserzaeim, F., Abdi, J. & Ahmadbeyki, A. (2014). Wrapping materials and cold storage durations effect on water content of plum. Agricultural Engineering Research Journal, 4(3), 65-68. Riederer, M. & Schreiber, L. (2001). Protecting against water loss: Analysis of the barrier properties of plant cuticles. Journal of Experimental Botany, 52(363), 2023-2032. Roberts, J. D. & Caserio, M. C. (1977). Basic Principles of Organic Chemistry (2th Ed.). WA Benjamin, Inc. Roy, R., Rahim, M. A. & Alam, M. S. (2012). Effect of wrapping papers on physiological changes and shelf-life of mango cv. Langra. Journal of Environmental Science and Natural Resources, 4(2), 99-103. Sayyari, M., Babalar, M. & S. Kalantari, (2010a). The effect of pre-storage application of calcium chloride on chilling resistance and calcium concentration of pomegranate fruits. Acta Horticulturae, 868, 367-372. Sayyari, M., Babalar, M., Kalantari, S., Serrano, M. & Valero, D. (2009). Effect of salicylic acid treatment on reducing chilling injury in stored pomegranates. Postharvest Biology and Technology, 53(3), 152-154. Sayyari, M., Castillo, S., Valero, D., Diaz-Mula, H. M. & Serrano, M. (2011). Acetyl salicylic acid alleviates chilling injury and maintains nutritive and bioactive compounds and antioxidant activity during postharvest storage of pomegranates. Postharvest Biology and Technology, 60(2), 136-142. Sayyari, M., Valero, D., Babalar, M., Kalantari, S., Zapata, P. J. & Serrano, M. (2010b). Pre-storage oxalic acid treatment maintained visual quality, bioactive compounds, and antioxidant potential of pomegranate after long-term storage at 2oC. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 58(11), 6804-6808. Shahnawaz, M., Sheikh, S. A., Soomro, A. H., Panhwar, A. A. & Khaskheli, S. G. (2012). Quality characteristics of tomatoes (Lycopersicon esculentum) stored in various wrapping materials. African Journal of Food Science and Technology, 3(5), 123-128. Sharma, P., Jha, A. B., Dubey, R. S. & Pessarakli, M. (2012). Reactive oxygen species, oxidative damage, and antioxidative defense mechanism in plants under stressful conditions. Journal of Botany, 2012, doi:10.1155/2012/217037. Sudheer, K. P. & Indira, V. (2007). Postharvest Technology of Horticultural Crops. New India Publishing. Tcherkez, G., Nogues, S., Bleton, J., Cornic, G., Badeck, F. & Ghashghaie, J. (2003). Metabolic origin of carbon isotope composition of leaf dark-respired CO2 in French bean. Plant Physiology, 131(1), 237-244. Thomson, D. L. (1928). The effect of hydrogen peroxide on the permeability of the cell. The Journal of Experimental Biology, 5(3), 252-257. Ubani, O. N. & Okonkwo, E. U. (2011). A review of shelf-life extension studies of Nigerian indigenous fresh fruits and vegetables in the Nigerian Stored Products Research Institute. African Journal of Plant Science, 5(10), 537-546. Whitaker, B. D. (2012). Membrane lipid metabolism and oxidative stress involved in postharvest ripening, senescence, and storage disorders of fruits. Acta Horticulturae, 945, 269-282. Whitaker, B. D. (2013). Genetic and biochemical bases of superficial scald storage disorder in apple and pear fruits. Acta Horticulturae, 989, 47-60. Whitaker, B. D. & Lester, G. E. (2006). Cloning of phospholipase Dα and lipoxygenase genes CmPLDa1 and CmLOX1 and their expression in fruit, floral, and vegetative tissues of Honey Brew hybrid Honeydew melon. Journal of the American Society for Horticultural Science, 131(4), 544-550. Wills, R. B., Bailey, W. M. & Scott, K. J. (1975). Possible Involvement of α-Farnesene in the Development of Chilling Injury in Bananas. Plant Physiology, 56(4), 550-551. Zhao, Y. Y., Qian, C. L., Chen, J. C., Peng, Y. & Mao, L. C. (2010). Responses of phospholipase D and lipoxygenase to mechanical wounding in postharvest cucumber fruits. Journal of Zhejiang University Science B, 11(6), 443-450. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.130996.834 مقاله پژوهشی تأثیر اسید جیبرلیک بر برخی ویژگی‌های مورفوفیزیولوژیکی دو رقم گل سفید و زرد (Alba and Apollo) گل میمون (Antirrhinum majus) چهرازی مهرانگیز استادیار، دانشگاه شهید چمران اهواز حسینی حمیدرضا دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشگاه شهید چمران اهواز هاشمی دهکردی الهه دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشگاه شهید چمران اهواز اسدی وفا خلیل کارشناس ارشد علوم باغبانی. دانشگاه شهید چمران اهواز 23 08 2017 48 2 265 273 31 08 2015 31 01 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63046.html

به‌منظور بررسی تأثیر اسید جیبرلیک (0، 100، 200 و 400 میلی‌گرم بر لیتر) بر ویژگی‌های کمی و کیفی دو رقم گل میمون (Antirrhinum majus) آزمایشی به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح بلوک‌های کامل تصادفی با سه تکرار اجرا شد. دانهال‌ها 50 روز پس از کشت بذر (در مرحلة 6 تا 8 برگ حقیقی) تحت تیمار سطوح مختلف اسید جیبرلیک (به‌صورت محلول‌پاشی برگی) قرار گرفتند. نتایج به‌دست‌آمده از آزمایش نشان داد، افزایش غلظت اسید جیبرلیک به‌طور معنی‌داری موجب افزایش صفات مورد بررسی شد. بیشترین شمار، طول و قطر شاخة گل‌دهنده، طول گل‌آذین، شمار گلچه، شمار برگ، ماندگاری گل و همچنین وزن تر اندام‌های هوایی از اثر متقابل غلظت 400 و 200 میلی‌گرم در لیتر اسید جیبرلیک و رقم زرد (Apollo) و پس از آن رقم سفید (Alba) به دست آمد. در بین غلظت‌های مختلف اسید جیبرلیک بیشترین قطر گلچه، سطح برگ، سبزینه (کلروفیل)‌های a، b و کل و همچنین وزن خشک اندام‌های هوایی مربوط به تیمار 400 میلی‌گرم در لیتر و کمترین میزان مربوط به شاهد بود. سطح برگ و وزن خشک اندام‌های هوایی در رقم زرد (Apollo) بالاتر از رقم سفید (Alba) بود.

 جیبرلین سبزینه شاخة گل‌دهنده ماندگاری Abd El- Aal F, S., Shaheen, A. M. & Rizk, F. A. (2008). The effect of foliar application of GA3 and soil dressing of NPK at different levels on the plant productivity of potatoes (Solanum tuberosum L.). Research Journal of Agriculture & Biological Sciences, 4(1), 384-391. Akbari, S., Moallemi, N. (2011). Effects of gibberellic acid on the growth of seedlings olive (Olea europaea l.). Horticultural Science, 24, 184-188. (in Farsi) Amirshekari, H., Sorosh zadeh, A., Modares sanavi, A. M. & Jalali, M. (2004). The effect of ambient temperature of root, bulb size and gibberellin on growth of saffron (Crocus sativus L). Journal of Biology, 19(1), 18-5. Arnon, D. I. (1949). Copper enzymes in isolated chloroplasts: polyphenol oxidase in Beta vulgaris. Plant Physiol, 24(7), 1-15. Ashraf, M. & Karim, F. (2002). Interactive effects of gibberellic acid (GA3) and salt stress on growth, ion accumulation and photosynthetic capacity in to spring wheat (Triticum asetivum L.) cultivars differing in salt tolerance. Plant Growth Regulation, 36(7), 49-59. Brooking, I. R. & Cohen, D. (2002). Gibberellin-induced flowering in small tubers of Zantedeschia .Black Magic. Scientia Horiculturae, 95(4), 63-73. Burchi, G., Nesi, B. & Grassotti, A.  (2005). Longevity and ethylene production during development stages of two cultivars of lilium flowers ageing on plant or in vase. Acta Horticulturae, 682(12), 813-821. Chang, S., Tsang, C. & Wen, S. (2006). Gibberellins in relation to flowering in Polianthes tuberosa. Physiology Plant, 112(6), 429-432. Corr, B. E. & Widmer, R. E. (1987). Gibberellic acid increases flower number in Zantedeschia elliotiana and Z. rehmannii. Horticulture Sciences, 22(5), 605-607. De, L. C. & Dhiman, K. R. (2005). Effect of leaf manures and GA3 on growth, flowering and longevity of Tuberosa. Ornamental Horticulture, 4(8), 50-52. Du Toit, E. S., Robbertse, P. J. & Niederwieser, J. G. (2004). Plant carbohydrate partitioning of Lachen alia cv. Ronina during bulb production. Scientia Horiculturae, 102(7), 433-440. El-Nagar, A. H., El-Naggar, A. A. M. & Naglaa, M. I. (2009). Effect of phosphorus application and gibberellic acid on the growth & flower quality of Dianthus caryophyllus L. American-Eurasian Journal of Agriculture & Environment Science, 6(4), 400-410. El-Naggar, A. H. & El-Naggar, A. A. M. (2004). Physiological response of carnation plants to gibberellic acid and potassium fertilization under greenhouse conditions. Journal Agriculture Research, 9(8), 931-950. Fathi, G. H. & Esmailpour, B. (1998). Plant growth regulators. By Artka Richard, Second Edition, published by Jahad Daneshgahi Mashhad, pp. 69-64. (in Farsi) Ferrante, A., Hunter, D. H., Hackett, W. P. & Reid, M. (2002). Thidiazuron-a potent inhibitor of leaf senescence in alstromeria. Postharvest Biological and Technology, 25(9), 333-338. Hanks, G. R. (1984). Factors affecting the response of tulips to gibberellin. Scientia Horiculturae, 23(8), 379-390. Hartman, H. T., Kester, D. E. & Davis, F. T. (1990). Plant propagation principles & pratices 5 the.Prentice-Hall, Engleuood Cliffs.Nj. Hartmann, H. T., Kester, D. E. & Davis, J. R. FT (1990). Plant propagation. Principalsand Practices, 53-4. Hopkins, W. G. & Huner, N. P. (1995). Introduction to plant physiology. New York: John Willey and Sons. Hosseini, H. R. (2013). Study the effects of colchicine treatment on generation of autopolyploidy in Catharanthus roseus Cvs. rosea and alba. MSc Thesis. Faculty of Agriculture University of Shahid Chamran, Iran. Ichimura, K. & Goto, R. (2000). Effects of gibberellin (GA3) on yellowing & vase life of Narcissus tazetta var. chinensis flowers. Journal Japan Horticulture Science, 69(12), 423-427. Ilias, I., Ouzounidou, G., Giannakoula, A. & Papadopoulou, P. (2007). Effects of gibberellic acid & prohexadione-calcium on growth, chlorophyll fluorescence & quality of okra plant. Biologia Plantarum Journal, 51(3), 575-578. Kim, H. J. & Miller, W. B. (2009). GA4+7 plus BA enhance post-production quality in pot tulips. Postharvest Biological Technology, 51(11), 272-277. Kumar, N., Reddy, Y. N. & Chrashekar, R. (2008). Effect of growth regulation on flowering & corm production in gladiolus. Indiana Journal of Horticulture, 56(11), 91-99. Majidian, N., Naderi, R., Khalighi, A. & Majidian, M. (2011). Effect of gibberellin & BA on the production of potted plants horny c.v Chayldsyana. Journal of Horticultural Science (Agricultural Science & Technology), 25(4), 368-361. Memarsharifi, B. (1998). Effects of hormones & environmental conditions on development & sustainability in Fritillaria bulbs multiply. Thesis. Tarbiat Modarres University. (in Farsi) Mohsenzadeh, S. & Hertmany, A. (2006). Botany 1 (anatomy, morphology & physiology). Press Moghim. Monselise, S. P. & Halevy, A. H. (2011). Effects of gibberellin & Amo-1618 on growth, dry-matter accumulation, chlorophyll content & peroxidase activity of citrus seedlings. American Journal of Botany, 49(4), 405-412. Munir, M., Jamil, M., Baloch, J. & Khattak, K. (2004). Growth and Flowering of Antirrhinum majus L. under Varying Temperatures. International Journal of Agriculture & Biology, 6(1), 173-178 Nagarja, G. S., Gowda, J. V. & Farooqui, A. (2003). Effects of growth regulators on growth & flowering of Tuberose cv. Single. Karantaka Journal of Agriculture Science, 12(6), 236- 238. Ramesh, K., Kartar, S. & Reddy, B. S. (2002). Effect of planting time, photoperiod, GA3 & pinching on carnation. Journal ormanamental Horticulture, 5(4), 20-23. Shoor, M., Tehrani far, A., Nemati, H., Salah varzi, Y. & Alizadeh, B. (2008). Effect of Gibberellic acid and cold storage on some quantitative traits of cut flowers (Poliatenus tuberosa L.). Agricultural Research: Water, Soil and Agricultural Plants, 4, 247-239. (in Farsi) Skutnik, E. W., Lukaszewska, A. L. & Margrethe, S. (2003). Effect of growth regulators on postharvest characteristics of Zantedeschia aethiopica. Postharvest Biology & Technology, 21(7), 241-246. Tripathi, A. N., Tripathi, S. N., Shukla, R. K. & Pandey, G. (2003). Effect of GA, NAA and CCC on growth & flowering of French marigold (Tagetes patula). Journal of Applied Horticulture, 5(2), 112-113. Yusef Saleh, S. A. & Al-safar, M. (2006). Effect of GA3 treatment & nitrogen on growth & development of gladiolus corms. Pakistan Journal of Biological Science, 9(13), 2516-2519. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.124217.769 مقاله پژوهشی ارزیابی تحمل به خشکی و اثرگذاری‌های آن بر ویژگی‌های رشدی برخی توده‌های هندوانۀ ابوجهل (Citrullus colocynthis (L.) Schrad) حسندخت محمد رضا استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج بیگدلو مهدی دانشجوی سابق دکتری، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج سلطانی فروزنده استادیار، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج صالحی محمدی رضا استادیار، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج 23 08 2017 48 2 275 284 18 05 2015 20 04 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63047.html

هندوانۀ ابوجهل Citrullus colocynthis L.یکی از گونه‌های گیاهی متحمل به خشکی است که به‌طور گسترده در مناطق بیابانی ایران پراکنده شده است. برای ارزیابی تحمل به خشکی آن آزمایش در مزرعۀ تحقیقاتی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران واقع در کرج به‌صورت کرت‌های خردشده در قالب طرح پایۀ بلوک‌های کامل تصادفی اجرا شد که در آن سطوح آبیاری به‌عنوان کرت اصلی در دو سطح (100 درصد و 60 درصد ظرفیت زراعی) و توده‌ها به‌عنوان کرت فرعی در هفت سطح (کرمان، سیستان و بلوچستان، خوزستان، یزد، هرمزگان، بوشهر و اصفهان) بودند. در پایان دورۀ رشد، عملکرد، اجزای عملکرد و شاخص‌های مقاومت به خشکی در شرایط تنش و بدون تنش خشکی برای غربالگری توده‌های هندوانۀ ابوجهل اندازه‌گیری شد. بیشترین میانگین عملکرد میوه در بوته در شرایط تنش و بدون تنش خشکی به‌ترتیب به تودۀ اصفهان (54/2 کیلوگرم در بوته) و تودۀ کرمان (73/5 کیلوگرم در بوته) و کمترین عملکرد به ترتیب به تودۀ بوشهر (27/1 کیلوگرم در بوته) و تودۀ سیستان و بلوچستان (54/3 کیلوگرم در بوته) تعلق داشت. اجزای عملکرد تودۀ اصفهان کمترین درصد تغییرپذیری را در شرایط تنش و بدون تنش خشکی نشان داد. بررسی شاخص‌های مقاومت به خشکی و همبستگی بین شاخص‌ها به همراه تجزیه به مؤلفه‌های اصلی نشان داد تودۀ اصفهان به‌عنوان تودۀ متحمل و دارای عملکرد پایدار، توده‌های یزد و هرمزگان توده‌هایی نیمه متحمل با عملکرد به نسبت پایدار، تودۀ کرمان دارای عملکرد بالا در شرایط بدون تنش و غیر‌متحمل به تنش خشکی، توده‌های بوشهر و خوزستان دارای عملکرد پایین و حساسیت بالا به تنش خشکی و تودۀ سیستان و بلوچستان به‌عنوان توده‌ای با ظرفیت عملکرد پایین و به نسبت متحمل به تنش خشکی بودند. به‌طورکلی تودۀ اصفهان تحمل بالایی به تنش خشکی داشت و مناسب برای برنامه‌های بهنژادی هندوانه‌های تجاری است.

 تودۀ بومی شاخص‌های مقاومت عملکرد ظرفیت زراعی Badr Abadi, M., Shokrpour, M., Asghari, A. & Esfandyari, E. (2012). Determining relationships among dry matter remobilization and some morphological traits in barley genotypes using factor analysis method under low water stress. Journal of Crop Breeding, 4(10), 109-122. (in Farsi) Bosabalidis, A. M. & Kofidis, G. (2002). Comparative effects of drought stress on leaf anatomy of two olive cultivars. Plant Science, 163, 375-379. Dane, F., Liu, J. & Zhang, C. (2006). Phylogeography of the bitter apple, Citrullus colocynthis. Genetic Resources and Crop Evolution, 54, 327-336. Dichio, B., Romano, M., Nuzzu, V. & Xiloyannis, C. (2002). Soil water availability and relationship between canopy and roots in young olive trees cv. Coratana. Acta Horticulturae, 586, 419-422. Faramarz Pour, A., Delshad, M. & Parsi Nejad, M. (2012). An evaluation of growth, yield and water use efficiency of greenhouse cucumber production at different soil moisture circumstances using tensiometer as moisture measuring instrument. Iranian Journal of Horticultural Sciences, 43(3), 285-292. (in Farsi) Farooq, M., Wahid, A., Kobayashi, N., Fujita, D. & Basra, S.M.A. (2009). Plant drought stress: effects, mechanisms and management. Agronomy for Sustainable Development, 29, 185-212. Ferandez, G. C. J. (1992). Effective selection criteria for assessing plant stress tolerance. In: Proceedings of the International Symposium "Adaptation of Vegetables and Other Food Crops in Temperature and Water Stress, AVRDC Publication. Tainan, Taiwan, 18, 257-270. Ficher, R. A. & Mourer, R. (1987). Drought resistance in spring wheat cultivars. I. Grain yield responses. Australian Journal of Agricultural Research, 29, 897-912. Garavandi, M., Farshadfar, M. & Kahrizi, D. (2010). Evaluation of drought tolerance in bread wheat advanced genotypes in field and laboratory conditions. Seed and Plant Improvement Journal, 26, 233-252. (in Farsi) Ghahreman, A. (2000). Colored Flora of Iran. Tehran, Iran: Forest and Rangelands Research Institute Press. Golabadi, M., Arzani, A. & Mirmohamadi Maibody, S. A. M. (2006). Assessment of drought tolerance in segregation population in durum wheat. African Journal of Agricultural Research, 1, 162-171. Jafari, A., Paknejad, F. & Al-Ahmadi, M. (2009). Evaluation of selection indices for drought tolerance of corn (Zea mays L.) hybrids. International Journal of Plant Production, 3, 33-38. Jalilian, J., Modaresesanavi, S. A. M. & Sabaghpour, S. H. (2005). Effect of plant density and supplemental irrigation on yield, yield component and protein content of four chickpea (Cicer arietinum) cultivars under dry land condition. Journal of Agricultural Science and Natural Resources, 12(5), 1-9. (in Farsi) Karami, E., Ghannadha, M. R., Naghavi, M. R. & Mardi, M. (2006). Identification of drought tolerant genotypes in barley. Iranian Journal of Agricultural Sciences, 37(1), 371-380. (in Farsi) Karimi Afshar, A., Baghizadeh, A., Mohammedi Nejad, Q. & Abedi, J. (2014). Evaluation of Cumin (Cuminum cyminum L.) genotypes under drought condition based on tolerance indices. In: Proceedings of the 1st International & 13th Iranian Genetics Congress, 24-26 May, Teheran, Iran, pp. 1-4. Kumar, R., Solankey, S. S. & Singh, M. (2012). Breeding for drought tolerance in vegetables. Vegetable Science, 39(1), 1-15. Mohammadi, M., Taleei, A., Zeinali, H., Naghavi, M. R. & Baum, M. (2008). Mapping QTLs controlling drought tolerance in barley doubled haploid population. Seed and Plant Improvment Journal, 24, 1-16. (in Farsi) Moosavi, S. S., Yazdi Samadi, B., Naghavi, M. R., Zali, A. A., Dashti, H. & Pourshahbazi, A. (2008). Introduction of new indices to identify relative drought tolerance and resistance in wheat genotypes. Desert, 12, 165-178. Ortega, D. G. & Kretchman, D. W. (1982). Water stress effects on pickling cucumber. Horticulture Science, 107, 409-412. Rezvani Moghadam, P. & Sadeghi Samarjan, R. (2008). Effect of sowing dates and different irrigation regimes on morphological characteristics and grain yield of chickpea (Cicer arietinum L.) (Cultivar 3279 ILC). Iranian Journal of Field Crops Research, 6, 315-325. (in Farsi) Rosielle, A. A. & Hamblin, J. (1981). Theoretical aspect of selection for yield in stress and non- stress environment. Crop Science, 21, 943-946. Shafiee Khorshidi, M., Bihamta, M. R., Khialparast, F. & Naghavi, M. R. (2013). Comparison of some common bean (Phaseolus vulgaris L.) genotypes for drought tolerance. Iranian Journal of Field Crops Science, 44(1), 95-107. (in Farsi) Si, Y., Dane, F., Rashotte, A., Kang, K. & Singh, N. K. (2010). Cloning and expression analysis of the Ccrboh gene encoding respiratory burst oxidase in Citrullus colocynthis and grafting onto Citrullus lanatus (watermelon). Journal of Experimental Botany, 61(6), 1635-1642. Sio-Se Mardeh, A., Ahmadi, A., Poustini, K. & Mohammadi, V. (2006). Evaluation of drought resistance indices under various environmental conditions. Field Crops Research, 98, 222-229. Trease, G. & Evans, W. (1970). Text book of pharmacognasy. Tindall and Cassell, London, Baillere. pp: 382. Zeinali Khanghah, H., Izanloo, A., Hoseinzadeh, A. H. & Majnoon Hoseini, N. (2004). Determination of the suitable drought resistance indices in commercial soybean varieties. Iranian Journal of Agricultural Sciences, 35, 875-885. (in Farsi) _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.137318.883 علوم میوه تأثیر اسید سالیسیلیک و سولفات منیزیم کلاته بر میزان آلفا- توکوفرول و برخی ویژگی‌های فیزیولوژیکی در گلابی رقم لوئیزبون عادل مه جبین دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان امیری محمد اسماعیل استاد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان نجاتیان محمد علی دانشیار، بخش تحقیقات علوم زراعی- باغی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان قزوین، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، قزوین، ایران عادل مریم دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان 23 08 2017 48 2 285 292 17 12 2015 22 02 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63048.html

پاداکسنده (آنتی­اکسیدان)­ها، سامانه‌های ضداکسایشی گیاهان عالی به شمار می‌آیند و تحریک تولید یا کاربرد مصنوعی آن­ها می­تواند در غلبه بر تنش­ها مؤثر واقع شود. این ترکیب‌ها شامل انواع آنزیمی و غیر آنزیمی مانند ویتامین­ها، رنگریزه­ها و غیره هستند. در این پژوهش، تأثیر اسید سالیسیلیک و سولفات منیزیم کلاته بر تحریک یا جلوگیری از تولید پاداکسنده­های مختلف در برگ گلابی بررسی شد. آزمایش در شرایط اقلیمی استان قزوین در قالب طرح بلوک کامل تصادفی روی درختان گلابی رقم لوئیزبون انجام شد. صفات مورد بررسی در این پژوهش شامل پاداکسنده­های آلفا- توکوفرول، کاروتنوئید و سبزینۀ (کلروفیل) a، سبزینۀ b و سبزینۀ کل بود. نتایج نشان داد، اسید سالیسیلیک و سولفات منیزیم کلاته تأثیر معنی­داری بر میزان پاداکسندۀ آلفا- توکوفرول، سبزینه و کاروتنوئید داشتند. به‌طوری‌که دامنۀ تغییرپذیری بین تیمارهای مختلف در مورد رنگریزۀ سبزینه بین 03/1 تا 27/6 و کاروتنوئید بین 06/0 تا 985/1 میلی­گرم بر گرم و آلفا- توکوفرول بین 03/0 تا 30/2 قسمت در میلیون (PPM) متغیر بود. مقایسۀ میانگین­ها نشان داد، تیمار همزمان اسید سالیسیلیک با غلظت 5/0 و سولفات منیزیم کلاته با غلظت 7/0 گرم در لیتر بیشترین میزان پاداکسندۀ آلفا- توکوفرول را به خود اختصاص داد که از نقش مثبت تیمار یادشده در تحریک تولید این پاداکسنده حکایت می­کند.

 پاداکسنده تنش سبزینه غیر آنزیمی کاروتنوئید Aarabi, M. H. & Jalali, M. (2003). Simultaneous measurement of vitamins A and E with the way of Reversed Phase HPLC. Feyz (Journal of Kashan University of Medical Sciences), 27: 2-8. (In Farsi) Al-Nabulsi, Y. A., Al-Jasim, A. A. & Al-Taahir, O. A. (1994). Effect of saline drainage water and nitrogen fertilization on kernel yield, vegetative growth and nitrogen and chlorophyll content of Hassawi rice. Arid Soil Research, 8, 207-125. Arnon, A. N. (1967). Method of extraction of chlorophyll in the plants. Agronomy, 23, 112-121. Bergmuller, E., Porfirova, S. & Dormann, P. (2003). Characterization of an Arabidopsis mutant deficient in γ-tocopherol methyltransferase. Plant Molecular Biology, 52, 1181-1190. Blokhin, O., Virolainen, E. & Fagerstedt, K. (2003). Antioxidant oxidative damage and oxygen deprivation stress. Annual Review of Botany, 91, 179-194. Botsoglou, N., Fletouris, D., Psomas, I. & Mantis, A. (1998). Rapid gas chromatographic method for simultaneous determination of cholesterol and tocopherol in eggs. Journal of AOAC International, 8, 1177-1183. Drolet, G., Dumbroff, E. B., Legg, R. & Thompson, J. E. (1986). Radical scavenging properties of polyamines. Phytochemistry, 25, 367-371. Eraslan, F., Inal, A., Pilbeam, D. J. & Gunes, A. (2008). Interactive effects of salicylic acid and silicon on oxidative damage and antioxidant activity in spinach (Spinacia oleracea L. CV. Matador) grown under boron toxicity and salinity. Plant Growth Regulation, 55, 207-219. Fang, Y. Z., Yang, S. & Wu, G. (2002). Free radicals, antioxidants, and nutrition. Nutrition, 18, 872-879. Ghorbani, H. & Ladan Moghadam, A. (2005). Introduction to oxidative stresses and plant strains. Davavin Publication Institute. Iran. 128 p. (in Farsi) Hayat, S. & Ahmad, A. (2007). Salicylic acid: a plant hormone. Springer, 410 pp. Hayat, S., Ali, B. & Ahmad, A. (2007). Salicylic acid: biosynthesis, metabolism and physiological role in plants. In: Hayat, S. & Ahmad, A. (Ed), Salicylic Acid-A Plant Hormone. (Pp.1–14.) Springer. Kurk, j., Hollander-Czytko, H., Oett meier, W. & Trebst, A. (2005). Tocopherol as singlet oxygen scavenger in photosystem II. Plant Physiology, 162, 749-757. Loggini, B., Scartazza, A., Brugonli, E. & Navari-Izzo, F. (1999). Antioxidative defense system, pigment composition, and photosynthetic efficiency in two wheat cultivars subjected to drought. Plant Physiology, 119, 1091-1099. Matringe, M., Ksas, B., Rey, P. & Havaux, M. (2008). Tocotrienols, the unsaturated forms of vitamin E, can function as antioxidants and lipid protectors in tobacco leaves. Plant Physiology, 147, 764-778. Mazaheri Tirani, M., Kalantari, Kh. M., & Hasibi, N. (2008). The study of the interactive effects of ethylene and salicylic acid on induction of oxidative stress and the mechanisms of tolerance in Brassica napus L. Iran Journal of Biology, 21(3), 421-432. (in Farsi) Moharekar, S. T., Lokhande, S. D., Hara, T., Tanaka, R., Tanaka, A. & Chavan, P. D. (2003). Effect of salicylic acid on chlorophyll and carotenoid contents of wheat and moong seedlings. Photosynthetica, 41, 315-317. Munne- Bosch, S., Schwarz, K. & Alegre, L. (1999). Enhanced formation of α-tocopherol and highly oxidized alienate diterpene in water-stressed rosemary plants. Plant Physiology, 121, 1047-1052. Nemeth, M., Janda, T., Horvath, E., Paldi, E. & Szalai, G. (2002). Exogenous salicylic acid increases polyamine content but may decrease drought tolerance in maize. Plant Science, 162, 569-574. Rock, E., Astier, C. & Lab, C. (1995). Dietary magnesium deficiencies in rats enhance free radical production in skeletal muscle. Nutrition, 128, 1205. Sairam, R. K., Deshmukh, P. S. & Saxena, D. C. (1998). Role of antioxidant systems in wheat genotype tolerance to water stress. Plant Biology, 41(3), 387-394. Sies, H. (1999). Glutathione and its role in cellular functions. Free Radical Biology and Medicine. 27, 916. Taiz, L. & Zeiger, E. (1999). Plant Physiology (5th ed.). Translate: Kafee M., Lahootee M., Zand E., Shareefee H. R. & Goldanee M. Publications of Mashhad University Jihad. 456 pp. (in Farsi) _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.134304.854 مقاله پژوهشی بررسی تنوع ژنتیکی برخی توده‌های هندوانۀ ابوجهل (Citrullus colocynthis L.) بر پایۀ صفات ریخت‌شناختی و فیتوشیمیایی میوه و بذر فرشتیان مائده دانشجوی کارشناسی ارشد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج سلطانی صالح آبادی فروزنده استادیار، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج کاشی عبدالکریم استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج بابالار مصباح استاد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج 23 08 2017 48 2 293 303 18 10 2015 12 04 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63049.html

در این تحقیق هفده تودۀ هندوانۀ ابوجهل (حنظل) از مناطق مختلف ایران در قالب طرح بلوک­های کامل تصادفی با سه تکرار در ایستگاه تحقیقات گروه مهندسی علوم باغبانی دانشگاه تهران کشت شدند. برخی ویژگی­های ریخت‌شناختی (مورفولوژیکی) میوه و نیز ترکیب‌های فنلی و کارتنوئیدی و همچنین میزان اسیدهای چرب بذر آن­ها ارزیابی شدند. بر پایۀ نتایج بیشترین شمار میوه در بوته و عملکرد در تودۀ "ارزوئیه" مشاهده شد، درحالی‌که بیشترین وزن تک میوه در تودۀ "خوراسگان 5" مشاهده شد. بیشترین میزان ترکیب‌های فنلی در میوه­های تودۀ "کرمان" و "یزد" (88 میلی­گرم اسیدگالیک در گرم وزن خشک) وجود داشت و بالاترین ترکیب‌های کارتنوئیدی در توده­های "اراک" و "اهواز" (85 میکروگرم در میلی­گرم وزن خشک) وجود داشت. بیشترین محتوای اسید چرب لینولئیک در بذر تودۀ "ارزوئیه" (4/72%) و بیشترین میزان اولئیک اسید در توده "خوراسگان" 2(8/13%) مشاهده شد. وزن میوه با قطر میانبر (مزوکارپ) مرکزی و میانبر حاوی بذر همبستگی مثبت به نسبت بالایی (69/0=r) داشتند. بین میزان اسید استئاریک و طول بذر همبستگی منفی بالایی (775/0-=r) وجود داشت که بذرهای کشیده­تر حاوی میزان اسید استئاریک کمتری بودند. در تجزیۀ خوشه‎ای، در فاصلۀ 5 واحد بر پایۀ روش وارد توده‌ها در چهار گروه قرار گرفتند و یک توده از "کرمان" به‌طور جداگانه در یک خوشه قرار گرفت که میزان ترکیب‌های فنولی بالایی داشت. تنوع بالا در صفات میوه و میزان ترکیب‌های فیتوشیمیایی می‌توان استنباط کرد، هندوانه‌های ابوجهل در کشور تنوع بالایی دارند و بر پایۀ عملکرد و رشد مناسب بوته‌ها امکان زراعی کردن این محصول وجود دارد.

 اسید چرب تجزیۀ خوشه‌ای ترکیب‌های فیتوشیمیایی فنل Abbah, O. C., Sanni, M. & Ejembi, D. O. (2014). Nutritional aspects of egusi melon- Citrullus colocynthis L. Asian Journal of Science and Technology, 3, 176-180. Achu, M. B., Fokou, E., Tchiegang, C., Fotso, M. & Techonanguep, F. M. (2005). Nutritive value of some Cucurbitaceae oil seeds from different regions in Cameroon. African Journal of Biotechnology, 4, 1329-1334. Adam, S., Al-Yahya, M. & Al-Farhan, A. H. (2001). Response of Najdi sheep to oral administration of Citrullus colocynthis fruits, Nerium oleander leaves or their mixture. Small Rumin Research, 40, 239-244. Chun, O. K., Kim, D. O. & Lee, C. Y. (2003). Superoxide radical scavenging activity of the major polyphenols in fresh plums. Journal of Agriculture &Food Chemistry, 51, 8067-8072. Dago, M. & Akgulb, A. (2005). Fatty acid composition of some Walnut (Juglans regia L.) Cultivars from aelt Anatolia University. Innovative Romanian Food Biotechnology, 12, 42033-42040. Delazar, A., Gibbons, S. & Kosari, A. (2010). Flavonoid C-Glycosidees and Cucurbitacin Glycosides from Citrullus colocynthis. Journal of DARU, 14, 3-15. Díez, M. J., Dooijeweert, W., Maggioni, L. & Lipman, E. (Compilers). (2005). Minimum Descriptor lists for Cucurbit; cucumber, melon and watermelon. Report of a Working Group on Cucurbits. First Meeting held between 1st-2nd September. Plovdiv, Bulgaria. pp. 10-11. Ebadi, M., Soltani, F. & Mostoufi, Y. (2013). Evaluation of genetic diversity of watermelon accessions (Citrullus lanatus L.) by morphological and molecular markers and study on storage life of some accessions. M.Sc. thesis. Horticultural Science Department of University of Tehran, Iran. Grin, A., Matsum, L. & Nakai, O. (2010). Taxon Citrullus lanatus (Thunb) Taxonomy for plants. Germplasm Resources Information Network. Agricultural Research Service, Beltsville Area. http://www.arsgringovbin/npgs/html/tax_search.pl.   Jarret, B. & Griffin, G. A. (2007). Watermelon Descriptor Site(s): S9. Contains Characteristic Data on Citrullus (Watermelon) Accessions. Biodiversity from http://www.fao.org/biodiversity. Katalinic, V., Milos, M., Kulisic, T. & Jukic, M. (2006). Screening of 70 medical plant extracts for antioxidant capacity and total phenols. Food Chemistry, 94, 550-577. Keskitalo, M., Pehu, E. & Simon, J. E. (2001). Variation in volatile compounds from Tansy (Tanacetum vulgare L.) related to genetic and morphological difference of genotypes. Theoretical and Applied Genetics, 29, 265-285. Kiani, M. & Jahanbin, Gh. (2006). Evaluation of genetic diversity of Iranian watermelon. Iranian Journal of Field Crops Research, 2, 21-25. Kulkarni, A. S., Khotpal, R. R., Karadbhajane, V. Y. & Moren V. I. (2012). Physico-chemical Composition and lipid classes of Aeglemarmelos (Bael) and Citrullus colocynthis (Tumba)Seed Oils. Journal of Chemical and Pharmaceutical Research, 4, 1486-1488. Madari, N. & Jacobs, R. S. (2004). An analysis of cytotoxic botanical formulations used in the traditional medicine of ancient Persia as abortifacient. Journal of Natural Products, 67, 1204-1210. Magss-Kolling, G. L. (2003). Variability in Namibian Landraces of Watermelon (Citrullus lanatus). Euphytica, 132, 251-258. Marinova, D., Ribarova, F. & Atanassova, M. (2005). Total Phenolics and Total Flavonoids in Bulgarian Fruits and Vegetable. Journal of the University of Chemical Technology and Metallurgy, 40, 255-260. Matkowski, O. & Piotrowska, P. (2006). Antioxidant and free radical scavenging activities of some medicinal plants from the Lamiaceae. Fitoterapia, 77, 346-353. Munisse, P., Andersen, S. B., Jensen, B. D. & Lindskrog Christiansen, J. (2011). Diversity of landraces, agricultural practices and traditional uses of watermelon (Citrullus lanatus) in Mozambique. African Journal of Plant Science, 5, 75-86. Murkovic, M., Hillebrand, A., Draxl, S., Winkler, J. & Pfannhauser, W. (1999). Distribution of fatty acids and vitamin E content in Pumpkin seeds (Cucurbita pepo L.), in breeding lines, Acta Horticulture, 492, 47-55. Osganian, S. K., Stampfer, M. J., Rimm, E., Spiegelman, D., Manson, J. E. & Willett, W. C. (2003). Dietary carotenoids and risk of coronary artery disease in women. Journal of Clinic, 77, 1390-1399. Razavi, S. H. & Ivan, M. (2006). Effect of Temperature and pH on the Growth Kinetics and Carotenoid Production by Sporobolomyces ruberrimus H110 Using Technical Glycerol as Carbon Source. Iranian Journal of Chemistry Energy, 25, 59-64. Robinson, R. W. & Decker-Walters, D. S. (1997). Cucurbits. CAB international, ISBN 85. Safavi, S. R. (2011). Flora of Iran. Research institute of forest and rangelands. Shafaie, H., Soleimani rad, J., Rahimi, A. & Rezazade, H. (2007). Effect of Citrullus colocynthis extract on immune system. Medical Journal of Tabriz University of Medical Science & Health Service, 29, 32-37. Shahid, M. & Rao, N. K. (2014). Diversity of Citrullus colocynthis (L.) Schrad. (Cucurbitaceae) in theUnited Arab Emirates. Journal on New Biological Reports, 3, 145-150. Soltani, F., Akashi, Y., Kashi, A., Zamani, Z., Mostofi Y. & Kato, K. (2010). Characterization of Iranian melon landraces of Cucumis melo L. groups Flexousus and Dudaim by analysis of morphological characters and random amplified polymorphic DNA. Breeding Science, 60, 34-45. Stevenson, D. G., Eller, F. J., Wang L., Jane, J. L., Wang T. & Inglett G. E. (2007). Oil  and  Tocopherol  Content  and Composition  of  Pumpkin  Seed  Oil  in  12 Cultivars.  Journal of Agriculture Food Chemistry, 55, 4005-4013. Wang, Z., Ying, T., Bao, B. & Hung, H. (2005). Characteristics of fruit ripening in tomato mutant. Journal Zhejiang Universal Science, 6, 205-207. Ziyada, A. K. & Elhussien, S. A. (2008). Physical and Chemical Characteristics of Citrullus lanatus var. colocynthoide Seed Oil. Journal of Physical Science, 19, 69-75. Zadeh, B., Sberi, N., Mohammadbeigi, S. & Razmara, B. (2013). The national day of Mount Damavan. Retrieved Febrile 10, from: www.aseman-alborz.com.  _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.138050.888 مقاله پژوهشی بررسی تأثیر محلول‌های غذایی بر آنتوریوم گلدانی (Anthurium andreanum cv. LentiniRed) در کشت بدون خاک فتح اللهی سمانه دانشجوی دکتری، دانشکدۀ علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت حسن پور اصیل معظم استاد، دانشکدۀ علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت زکی زاده هدایت استادیار، دانشکدۀ علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت الفتی جمالعلی استادیار، دانشکدۀ علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت 23 08 2017 48 2 305 315 14 12 2015 12 03 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63050.html

تأثیر محلول­های مختلف غذایی بر رشد و گلدهی گیاه زینتی آنتوریوم گلدانی (Anthurium andreanum cv. Lentini Red) در کشت بدون خاک از آبان سال 93 تا تیر سال 94، در گلخانۀ تحقیقاتی دانشگاه گیلان، در قالب طرح کامل تصادفی با چهار نوع محلول غذایی (تیمار) و چهار تکرار (هر تکرار شامل پنج گلدان)، مقایسه شد. محلول­های غذایی یک (نیترات: نیتروژن کل، 5/3: 5/3)، و دو (نیترات: نیتروژن کل، 3: 3) بدون آمونیوم و محلول­های غذایی سه (نیترات: نیتروژن کل، 4: 5/4 و آمونیوم به نیتروژن کل، 5/0: 5/4) و چهار (نیترات: نیتروژن کل، 5/3: 4 و آمونیوم به نیتروژن کل، 5/0: 4)، حاوی آمونیوم بودند. محلول­های غذایی یک و سه حاوی 9/2 و محلول­های غذایی دو و چهار حاوی 4/2 میلی­اکی والان پتاسیم در لیتر محلول بود. نتایج نشان داد، از نظر شمار برگ، شمار گل، زمان گلدهی، میزان آنتوسیانین­های برگواره‌های بزرگ و رنگی به نام چمچه (Spathes)، سبزینه (کلروفیل)­های a و b، کاروتنوئیدها، غلظت عنصرهای نیتروژن، پتاسیم، منیزیم، کلسیم و آهن برگ اختلاف معنی­داری وجود داشت و از نظر ارتفاع بوته، طول و عرض چمچۀ گل، طول، عرض و سطح برگ و غلظت فسفر برگ اختلاف معنی­دار نبود. بیشترین شمار برگ و گل، مربوط به گیاهان تغذیه‌شده با محلول غذایی سه بود. گلدهی در گیاهان تیمارهای سه و چهار به‌طور معنی­داری سریع­تر رخ داد. بیشترین میزان آنتوسیانین­ها در چمچۀ گیاهان تغذیه‌شده با محلول غذایی دو و بیشترین میزان سبزینه­های a و کاروتنوئیدها، مربوط به تیمارهای یک و سه بود. کاربرد آمونیوم به‌عنوان منبع نیتروژن، منجر به کاهش غلظت کاتیون­ها و افزایش غلظت آهن برگ شد.

 آنتوسیانین آمونیوم چمچه عنصرهای کانی نیترات Assimakopoulou, A. (2006). Effect of iron supply and nitrogen form on growth, nutritional status and ferric reducing activity of spinach in nutrient solution culture. Scientia Horticulturae, 110, 21-29. Banijamal, S. L. & Bayat, H. (2013). The effect of different amounts ofammonium and calciumnutritional statusof nutrient solution on yield and quality of roses (Rosa hybrida L.) in hydroponic system. Science and Technology of Greenhouse Culture, 13, 29-37. (in Farsi) Bar-Tal, A., Aloni, B., Karni, L. & Rosenberg, R. (2001). Nitrogen nutrition of greenhouse pepper. II. Effects of nitrogen concentration and NO3:NH4 ratio on growth, transpiration and nutrient uptake. HortScience, 36(7), 1252-1259. Blackwell, R. D., Murray, A. J. S., Lea, P. J. & Joy, K. W. (1988). Photorespiratory amino donors, sucrose synthesis and the induction ofCO2 fixation in barley deficient in glutamine synthetase and/or glutamate synthase. Journal of Experimental Botany, 39, 845-858. Bolan, N. S., Hedley, M. J. & White, R. E. (1991). Plant Soil Interactions at Low pH. In: R. J. Wright., V. C. Baligar & R. P. Murrmann (Ed), Processes of soil acidification during nitrogen cycling with emphasis on legume based pastures. (pp. 169–179). Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands. Britto, D. T. & Kronzucker, H. J. (2002). NH4+ toxicity in higher plants: A critical review. Journal of Plant Physiology, 159, 567-584. Chang, H. K., Wu, R. Y., Chung, K. C., Hsieh, T. F. &Chung, R. S. (2010). Effects of chemical and organic fertilizers on the growth, flower quality and nutrient uptake of Anturium andreanum, cultivated for cut flower production. Scientia Horticulturae, 125, 434-441. Chang, J., Liu, D., Cao, H., Chang, S. X., Wang, X., Huang, C. & Ge, Y. (2010). NO3 −/NH4+ ratios affect the growth and N removal ability of Acorus calamus and Iris pseudacorus in a hydroponic system.Aquatic Botany, 93, 216-220. Dufour, L. & Clairon, M. (1997). Advances in fertilization of Anthurium hybrid in Guadeloupe. Acta Horticulturae, 450, 433-437. Dufour, L. & Guerin, V. (2003). Growth, development features and flower production of Anthuriumandreanum Lind. in tropical conditions. Scientia Horticulturae, 98, 25-35. Dufour, L. & Guerin, V. (2005). Nutrient solution effects on the development and yield of Anthuriumandreanum Lind. in tropical soilless conditions. Scientia Horticulturae, 105, 269-282. Emami, A. (1996). Plant analysis methods. Publication of Soil and Water Research Institute. Technical publication (pp.982-985). (in Farsi) Fageria, V. D. (2001). Nutrient interactions in crop plants. Journal of Plant Nutrition, 24, 1269-1290. Feigin, A., Ginzburg, C., Gilead, S. & Ackerman, A. (1986). Effect of NH4/NO3 ratio in the nutrient solution on growth and yield of greenhouse roses. Acta Horticulturae, 189, 127-135. Gerendás, J., Zhu, Z., Bendixen, R., Ratcliffe, R. G. & Sattelmacher, B. (1997). Physiological and biochemical processes related to ammonium toxicity in higher plants. Journal of Plant Nutrition and Soil Science, 160, 239-251. Giusti, M. M. & Wrolstad, R. E. (2001). Current Protocols inFood Analytical Chemistry. In: R. E. Wrolstad (Ed.), Anthocyanins. Characterization and measurement with UVvisiblespectroscopy. (pp. 11-13). New York: Wiley. Hassanpour Asil, M., Karimi, M. & Moghaddas, M. (2010). Anthurium. NehzatPuya Publication. (in Farsi) Kiani, Sh., Malakuti, M. J. & Mirzashahi, K. (2012). The effect of different levels of potassium and calcium on growth, nutrient concentration and performance rose cut (Rosa hybrida L.). Plant Production, 34, 15-25. (in Farsi) Konnerup, D., Koottatep, T. & Brix, H. (2009). Treatment of domestic wastewater in tropical, subsurface flow constructed wetlands planted with Canna and Heliconia. Ecological Engineering Journal, 35, 248-257. Kronzucker, H. J., Siddiqi, M. Y. & Glass, A. D. M. (1997). Conifer root discrimination against soil nitrate and the ecology of forest succession. Nature, 385, 59-61. Li, Y. & Zhang, M. (2002). Effect of urea and nitric acid on water and medium quality and on response of anthurium. HortTechnology, 12 (1), 131-135. Lichtenthaler, H. K. (1987). Chlorophylls and carotenoids: Pigments of photosynthetic biomembranes. Methods in Enzymology, 148, 350-382. Lorenzo, H., Cid, M. C., Siverio, J. M. & Caballero, M. (2000). Influence of additional ammonium supply on somenutritional aspects in hydroponic rose plants. Journal of Agricultural Science, 134, 421-425. Rothstein, D. & Cregg, B. M. (2005). Effects of nitrogen form on nutrient uptake and physiology of Fraser fir (Abies fraseri). Forest EcologyManagement, 219, 69-80. Savvas, D., Karagianni, V., Kotsiras, A., Demopoulos, V., Karkamisi, I. & Pakou, P. (2003). Interactions between ammonium and pH of the nutrient solution supplied to gerbera (Gerbera jamesonii) grown in pumice. Plant and Soil, 254(2), 393-402. Savvas, D. & Gizas, G. (2002). Response of hydroponically grown gerbera to nutrient solution recycling and different nutrient cation ratios. Scientia Horticulturae, 96, 267-280. Winston, E. & Pathmanathan, U. (2008). Morphophysiological characteristics associated with vase life of cut flowers of Anthurium. Horticulturae Science, 43(3), 825-831. Sonneveld, C. (2002). Hydroponic Production of Vegetables and Ornamentals. In: D. Savvas & H. C. Passam (Ed), Composition of nutrient solutions. (pp. 179–210). Embryo Publications, Athens, Greece. Veberic, R., Vodnik, D. & Stampar, F. (2005). Influence of foliar-applied phosphorus and potassium on hotosynthesis and transpiration of ‘Golden Delicious’ apple leaves (Malus domestica Borkh.). Acta agriculturae Slovenica, 85(1), 143-155. Wang, Y. T. (2008). High NO3-N to NH4-N ratios promote growth and flowering of a hybrid phalaenopsis grown in two root substrates. HortScience, 43 (2), 350-353. Wang, G., Li, C. & Zhang, F. (2003). Effects of different nitrogen forms and combination with foliar spraying with 6-benzylaminopurine on growth, transpiration and water and potassium uptake and flowin tobacco. Plant Soil, 256, 169-178. Woodson, W. R. & Boodley, J. W. (1982). Effects of nitrogen form and potassium concentration on growth, flowering and nitrogen utilization of greenhouse roses. Journal of the American Society for Horticultural Science, 107(2), 275-278. Zou, C. Q., Wang, X. F., Wang, Z. Y. & Zhang, F. S. (2005). Potassium and nitrogen distribution pattern and growth of fluecured tobacco seedlings influenced by nitrogen form and calcium carbonate in hydroponic culture. Journal of Plant Nutrition, 28, 2145-2157. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.139106.902 مقاله پژوهشی واکنش رشد و عملکرد گیاه دارویی استویا (Stevia rebaudiana Bertoni) به فاصلۀ کاشت و زمان برداشت تبریزی لیلا استادیار، گروه مهندسی علوم باغبانی و فضای سبز، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج، ایران زواری علیرضا دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه مهندسی علوم باغبانی و فضای سبز، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج، ایران یزدانی داراب دانشیار، گروه فارماکوگنوزی و داروسازی، پژوهشکدۀ گیاهان دارویی جهاد دانشگاهی، تهران، ‌ایران 23 08 2017 48 2 317 327 11 01 2016 11 06 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63051.html

به‌منظور بررسی تأثیر سطوح مختلف فاصلۀ کاشت (20، 25، 30 و 35×50 سانتی‌متر) و زمان برداشت (26 مرداد و 26 شهریورماه) بر ویژگی‌های رشد و عملکرد کمی و کیفی گیاه دارویی استویا (Stevia rebaudiana Bertoni)، آزمایشی به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح بلوک‌های کامل تصادفی با سه تکرار در ایستگاه تحقیقات گروه مهندسی علوم باغبانی و فضای سبز دانشگاه تهران در سال زراعی 93-1392 انجام شد. نتایج نشان داد تأثیر فاصلۀ کاشت بر بیشتر صفات به‌جز ارتفاع گیاه، نسبت وزن برگ به ساقه و میزان سبزینه (کلروفیل)­ها معنی‌دار بود. با کاهش فاصلۀ کاشت از 35×50 به 20×50، وزن خشک اندام‌های هوایی و برگ، عملکرد استویوزید و ربودیوزید A افزایش یافت. همچنین‌، تأثیر زمان برداشت بر همۀ صفات به‌جز میزان سبزینه‌ها معنی‌دار بود. بیشترین ارتفاع گیاه و قطر تاج پوشش،‌ وزن خشک اندام‌های هوایی، عملکرد استویوزید و ربودیوزید A در برداشت 26 شهریور و بیشترین نسبت برگ به ساقه در برداشت 26 مرداد بود. اثر متقابل تنها بر صفت وزن خشک برگ معنی‌دار بود و بیشترین وزن خشک برگ در برداشت 26 شهریور و فاصلۀ کشت 20 و 25×50 به دست آمد. صفت میزان سبزینه‌ها تحت تأثیر هیچ‌یک از تیمارها قرار نگرفت. به‌طورکلی می‌توان گفت فاصلۀ کشت 20 و 25×50 سانتی­متر و برداشت گیاه در 26 شهریورماه نسبت به دیگر تیمارها در منطقۀ مورد بررسی در کرج، نتیجۀ بهتری برای کشت و استقرار استویا داشته است.

 استویوزید تراکم بوته ربودیوزید ‌A گیاه دارویی Basuki, S. (1990). Effects of black plastic mulch and plant density on the growth of weeds and stevia. BIOTROP special publication, 38, 107-1.‏ Bondarev, N., Reshetnyak, O., & Nosov, A. (2001). Peculiarities of diterpenoid steviol glycoside production in in vitro cultures of Stevia rebaudiana Bertoni. Plant Science, 161(1), 155-163. Bondarev, N. I., Sukhanova, M. A., Reshetnyak, O. V. & Nosov, A. M. (2003). Steviol glycoside content in different organs of Stevia rebaudiana and its dynamics during ontogeny. Biologia Plantarum, 47(2), 261-264. Brandle, J. F. & Rosa, N. (1992). Heritability for yield, leaf: stem ratio and stevioside content estimated from landrace cultivar of Stevia rebaudiana. Canadian Journal of Plant Sciences, 72, 1263-1266. Ceunen, S. & Geuns, J. M. C. (2013). Influence of photoperiodism on the spatio-temporal accumulation Theof steviol glycosides in Stevia rebaudiana (Bertoni). Plant Science, 198, 72-82. Danalisio, M., Duarte, F., Pinto, A. & Souza, C. (1982).  Stevia rebaudiana. Agronomics, 34, 64-68. Ermakov, E. I. & Kochetov, A. A. (1996). Specificities of the growth and development of Stevia, Stevia plants under different controllable light conditions. Russian journal of Agricultural Science, 1, 9-11. Ezz, A. L. (2009). Plant growth strategies of Thymus vulgaris L. in response to population density. Industrial Crops and Products, 30(3), 389-394. Forbes, J. C. & Watson, R. D. (1994). Plants in agriculture. Cambridge, Britain. Pp: 72-78. Ghanbari, A. & Taheri Mazandarani, M. (2002). Effect of planting date and plant density on yield of Pinto Bean. Journal of Plant Seed Science, 19(4), 483-496. Hemm, M. R., Rider, S. D., Ogas, J., Murry, D. J. & Chapple, C. (2004). Light induces phenylpropanoid metabolism in Arabidopsis roots. Plant Journal, 38, 765-778. IRIMO. (2014). Islamic Republic of Iran Meteorological Organization.http://www.irimo.ir Jamshidi, K. H. (1999). The effect of row spacing and plant density on quantitative aspects of chamomile. Iranian Journal of Agricultural Sciences, 3(1), 203-210. (in Farsi) Jovicich, E., Cantliffe, D. J. & Hochmuth, G. J. (1999). Plant density and shoot pruning on yield and quality of a summer greenhouse sweet pepper crop in North Central Florida. In: Proceedings 28th National Agricultural Plastics Congress (pp. 184-190). Kalandia, A., Papunidze, G., Vanidze, M. & Papunidze, S. (2004). HPLC of Stevia (Stevia rebaudiana Bertoni) diterpene glycosides. Bulletin of the Georgian Academy of Sciences, 169, 147-150. Kennelly, E. J. (2002). Sweet and non-sweet constituents of Stevia rebaudiana. Stevia, the Genus Stevia (Medical and Aromatic Plants-Industrial Profiles), 19, 68-85.‏ Kienle, U. (2010). Welches Stevia hätten Sie denn gerne? Anbau und Herstellung–Perspektiven weltweit. Journal für Verbraucherschutz und Lebensmittelsicherheit, 5(2), 241-250. Kolb, N., Herrera, J. L., Ferreyra, D. J. & Uliana, R. F. (2001). Analysis of sweet diterpene glycosides from Stevia rebaudiana: Improved HPLC method.Journal of Agricultural and Food Chemistry, 49(10), 4538-4541. Kumar, R., Sharma, S., Ramesh, K., Prasad, R., Pathania, V. L., Singh, B. & Singh, R. D. (2012). Effect of agro-techniques on the performance of natural sweetener plant–stevia (Stevia rebaudiana) under western Himalayan conditions. Indiana Journal of Agronomy, 57(1), 74-81. Lee, J. I., Kang, K. H., Park, H. W., Ham, Y. S. & Park, C. H. (1980). Studies on the new sweetening source plant, Stevia rebaudiana in Korea. II. Effects of fertilizer rates and planting density on dry leaf yields and various agronomic characteristics of Stevia rebaudiana. Research Reports of the Office of Rural Development. (Crop Suwon), 2, 138-144. Madore, M. A. (2000). Synthesis and degradation of diterpene glycosides in source leaves of Stevia rebaudiana (Bert.) Bertoni. Journal of Plant Biology, 129. Megeji, N. W., Kumar, J. K., Singh, V., Kaul, V. K. & Ahuja, P. S. (2005). Introducing Stevia rebaudiana, a natural zero-calorie sweetener. Current science, 88(5), 801-804. Mekonnen, S. A. & Kassahun, M. B. (2011). Effect of inter row spacing and harvesting time on growth and essential oil yield of Spearmint (Mentha spicata L.). International Journal of Sustainable Agriculture, 3(2), 39-43. Mizukami, H., Shiba, K., Satoshi, I. & Ohashi, H. (1983). Effect of temperature on growth and stevioside formation of Stevia rebaudiana Bertoni. Japan Journal of Shoyakugaku Zasshi, 37, 175-179. Mohd-Radzman, N. H., Ismail, W. I. W., Adam, Z., Jaapar, S. S. & Adam, A. (2013). Potential roles of Stevia rebaudiana Bertoni in abrogating insulin resistance and diabetes: a review. Journal of Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 10. Moraes, R. M., Donega, M. A., Cantrell, C. L., Mello, S. C. & McChesney, J. D. (2013). Effect of harvest timing on leaf production and yield of diterpene glycosides in Stevia rebaudiana Bert: A specialty perennial crop for Mississippi. Industrial Crops and Products, 51, 385-389. Murayama, S., Kayano, R., Miyazato, K. & Nose, A. (1980). Studies on the cultivation of Stevia rebaudiana: Effects of fertilizer rates, planting density and seedling clones on growth and yield. Science Bulletin of the College of Agriculture, 27, 1-8. Naghdi Badi, H., Yazdani, D., Mohammad Ali, S. & Nazari, F. (2004). Effects of spacing and harvesting time on herbage yield and quality/quantity of oil in thyme, Thymus vulgaris L. Industrial Crops and Products, 19, 231-236. Nassar, A. M., Besheit, S. Y. & Allam, A. I. (2001). Effect of sowing dates, harvesting dates and their interaction on yield and quality of stevia (Stevia rebaudiana Bert. (Bertoni)).  Journal of Applied Sciences, 16, 442-459. Ramesh, K., Singh, V. & Megeji, N. W. (2006). Cultivation of stevia rebaudiana (Bert) Bertoni a comprehensive review. Advance in Agronomy, 89, 137-177. Serfaty, M., Ibdah, M., Fischer, R., Chaimovitsh, D., Saranga, Y. & Dudai, N. (2013). Dynamics of yield components and stevioside production in Stevia rebaudiana grown under different planting times, plant stands and harvest regime. Industrial Crops and Products, 50, 731-736. Shivanna, N., Naika, M., Khanum, F. & Kaul, V. K. (2012). Antioxidant, anti-diabetic and renal protective properties of Stevia rebaudiana. Journal of Diabetes and its Com-Plications, 27(2), 103-113. Tadhani, M. B., Patel, V. H. & Subhash, R. (2007). In vitro antioxidant activities of Stevia rebaudiana leaves and callus. Journal of Food Composition and Analysis, 20(3), 323-329. Taleie, N., Hamidoghli, Y., Rabiei, B. & Hamidoghli, S. (2012). Effects of plant density and transplanting date on herbage, stevioside, phenol and flavonoid yield of Stevia rebaudiana Bertoni. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 4(6), 298-302. Tavarini, S. & Angelini, L. G. (2013). Stevia rebaudiana Bertoni as a source of bioactive compounds: the effect of harvest time, experimental site and crop age on steviol glycoside content and antioxidant properties. Journal of the Science of Food and Agriculture, 93(9), 2121-2129. Woelwer-Rieck, U., Lankes, C., Wawrzun, A. & Wüst, M. (2010). Improved HPLC method for the evaluation of the major steviol glycosides in leaves of Stevia rebaudiana. European Food Research and Technology, 231(4), 581-588. Yadav, S. K. & Guleria, P. (2012). Steviol glycosides from Stevia: biosynthesis pathway review and their application in foods and medicine. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 52(11), 988-998. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.134753.859 علوم میوه تغییرپذیری ترکیب‌های فلاونوئیدی در بافت برگ و میوۀ در برخی از ژنوتیپ‌های درخت به (Cydonia oblonga Mill.) متعلق به مناطق شمال ایران امیراحمدی زیبا دانشجوی کارشناسی ارشد، دانشکدۀ کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج، کرج، صندوق پستی 68111-31499، ایران عبداللهی حمید دانشیار، پژوهشکده میوه‌های معتدله و سردسیری، مؤسسه تحقیقات علوم باغبانی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران عیاری مهدی استادیار، گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، صندوق پستی 336-14115، ایران 23 08 2017 48 2 329 337 07 11 2015 19 04 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63052.html

درخت به از درختان میوه­ای است که خواص دارویی چندی، از جمله محتوای بالای مواد پاداکسنده (آنتی­اکسیدانی) مانند فنل­ها و فلاونوئیدها برای آن بیان‌شده است. بنابراین، با توجه به طیف گستردۀ اهمیت فلاونوئیدها از نظر فیزیولوژیکی و دارویی، این پژوهش با هدف بررسی محتوای و روند تغییر فلاونوئید کل در بافت برگ و میوۀ ژنوتیپ­های به نیمۀ شمالی کشور و مقایسۀ آن با رقم تجاری به اصفهان انجام شد. به این منظور، 24 ژنوتیپ گردآوری‌شده از این مناطق، شامل ژنوتیپ­های اردبیل 1 تا اردبیل 7، به آمرودی، به سیبی و به گیوی کوثر از استان اردبیل، ژنوتیپ­های AS1، ASM1، ASM2، ASM3، ASP1 و ASP2 از استان گیلان، ژنوتیپ­های LA1 و LA3 از استان تهران و ژنوتیپ­های M1، M2، M3، M8 و M9 از استان خراسان ارزیابی شدند. نتایج بیانگر وجود اختلاف معنا­دار در میزان فلاونوئید کل در برگ ­و میوۀ ژنوتیپ­های مختلف بود، به صورتی که ژنوتیپ M3 و LA1 به ترتیب بیشترین و کمترین میزان فلاونوئید کل را در برگ­های خود با 9/21 و 1/3 میلی­گرم کوئرستین بر گرم در مقایسه با رقم شاهد اصفهان با میزان 4/13 میلی­گرم کوئرستین بر گرم داشتند. همچنین نتایج ارزیابی میوه­ها نشانگر بالاترین میزان فلاونوئید کل به میزان 2/6 میلی­گرم کوئرستین بر گرم در رقم شاهد بوده و دیگر رقم‌ها در ردۀ پایین­تری قرار گرفتند. بررسی تأثیر زمان برداشت برگ بر میزان تغییر فلاونوئید کل نشان داد، بالاترین میزان این متابولیت مربوط به آغاز تابستان بوده و در دیگر برداشت­ها میزان فلاونوئید کمتری در برگ‌ها وجود داشت.

 به اصفهان پاداکسنده ترکیب‌های فنلی کوئرستین Cydonia oblonga Mill Abdollahi, H., Alipour, M., Khoramdel Azad, M., Mehrabipour, S., Ghasemi, A., Adli, M., Atashkar, D. & Akbari, M. (2013). Establishment of quince (Cydonia oblonga Mill.) germplasm collection from various regions of Iran. Acta Horticulturae, 976, 199-203. Alipour, M., Abdollahi, H., Abdousi, V., Ghasemi, A. A., Adli, M. & Mohamadi, M. (2014). Evaluation of vegetative and reproductive characteristics and distinctness of some quince (Cydonia oblonga Mill.) genotypes from different regions of Iran. Seed and Plant, 30-1, 507-529. (in Farsi) Bakhshi, D. & Arakawa, O. (2006). Effects of UV-B irradiation on phenolic compound accumulation and antioxidant activity in ‘Jonathan’ apple influenced by bagging, temperature and maturation. Journal of Food, Agriculture and Environment, 4, 75-79. Byrne, P. F., McMullen, M. D., Snook, M. E., Musket, T. A., J. Theuri, M., Widstrom, N. W., Wiseman, B. R. & Coe, E. H. (1996). Quantitative trait loci and metabolic pathways: Genetic control of the concentration of maysin, a corn earworm resistance factor, in maize silks. Proceedings of National Academy of Science of the USA, 17, 8820-8825. Dawidowicza, A. L., Wianowska, D. & Baraniak, B. (2006). The antioxidant properties of alcoholic extracts from Samba cusnigra L. (antioxidant properties of extracts). Journal of LWT-Food Science and Technology, 39, 308-315. Du, A., Li, M., Ma. F. & Liang, D. (2009). Antioxidant capacity and the relationship with polyphenol and Vitamin C in Actinidia fruits. Journal of Food Chemistry, 113, 557-562. FAO. (2013). Food and Agricultural Organization Production Statistics. FAO Publications, Rome, Italy. Ghozati, E. (2015). Evaluation of biochemical and antioxidative characteristics of leaves and fruits of selected quince cultivars and genotypes from central region of Iran. M.Sc. Thesis, Azad University of Abhar, Abhar, Iran. 115pp. (in Farsi) Hamauzu, Y., Yasui, H., Inno, T., Kume, C. & Omanyuda, M. (2005). Phenolic profile antioxidant property and antiinfluenza viral activity of Chinese quince (Pseudocydonia sinesis Schneid.), quince (Cydonia oblonga Mill.) and apple (Malus domestica Mill.) fruits. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 53, 928-934. Hernández, I., Alegre, L., Van Breusegem, F. & Munné-Bosch, S. (2009) How relevant are flavonoids as antioxidants in plants?. Trends in Plant Science, 14, 125-132. Izadi, Z., Asnaashari, M., Ahmadvand, G. B. & Piri, Kh. (2011). Identify the chemical composition of peppermint essential oil antibacterial investigation against several bacterial strains. Armaghan Danesh, 55, 45-52. (in Farsi) Khoubnasabjafari, M. & Jouyban, A. (2011). A review of phytochemistry and bioactivity of quince (Cydonia oblonga Mill.). Journal of Medicinal Plant Research, 16, 3577-3594. Khoramdel Azad, M., Nassiri, J. & Abdollahi, H. (2013). Genetic diversity of selected Iranian quinces using SSRs from apples and pears. Biochemical Genetics, 51, 426-442. Magalhaes, A. S., Silva, B. M., Pereira, J. A., Andrade, P. B., Valentao, P. & Carvalho, M. (2009). Protective effect of quince (Cydonia oblonga Miller) fruit against oxidative hemolysis of human erythrocytes. Food chemistry and Toxicology, 47, 1372-1377 Reyes-Carmona, J., Yousef, G. G., Marteniz-Peniche, R. A. & Lila, M. A. (2005). Antioxidant capacity of fruit extracts of blackberry (Rubus sp.) produced in different climatic regions. Journal of Food Science, 70, 497-503. Sabeti, H. (1994). Trees and Shrubs of Iran. Yazd University Publication, Yazd, Iran. 810 pp. (in Farsi) Vermerris, W. & Nicholson, R. (2006). Phenolic Compound Biochemistry. Springer Press, Dordrecht, the Netherlands. 276 pp. Westwood, M. N. (1993). Temperate Zone Pomology. Timber Press, Inc. Portland, Oregon, USA. 536pp. Wojdylo, A., Oszmianski, J. & Bielicki, P. (2013). Polyphenolic Composition, Antioxidant Activity, and Polyphenol Oxidase (PPO) Activity of Quince (Cydonia oblonga Miller) Varieties. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 61, 2762-2772. Wu, T. S. (1989). Flavonoid from root bark of Citrus sinensis and Citrus nobilis. Phytochemistry, 27, 585-587. Yen, G. C. & Duh, P. D. (1995). Antioxidant activity of methanolic extracts of Peanut hulsfrom various cultivars. Journal of the American Oil Chemist Society, 72, 1065-1067. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.134336.855 مقاله پژوهشی بررسی صفات ریخت‌شناختی و عملکرد اسانس در شماری از جمعیت‌های گونۀ بابونۀ کبیر Tanacetum parthenium (L) Schultz-bip. علیزاده محمدعلی دانشیار، مؤسسه تحقیقات جنگل‌ها و مراتع کشور (سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی- تهران) اصلانی ملیحه دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج میری سید مهدی استادیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج جعفری علی اشرف استاد، مؤسسه تحقیقات جنگل‌ها و مراتع کشور (سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی- تهران) سیدیان سید اسماعیل کارشناس خبره، مؤسسه تحقیقات جنگل‌ها و مراتع کشور (سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی- تهران) 23 08 2017 48 2 347 356 21 10 2015 25 04 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63053.html

به‌منظور بررسی صفات ریخت‌شناختی (مورفولوژیکی) و عملکرد اسانس، شمار 61 جمعیت گونۀ بابونۀ کبیرTanacetum parthenium (L) Schultz-bip. در شرایط مزرعه در قالب طرح بلوک‏های کامل تصادفی در سه تکرار در ایستگاه تحقیقاتی البرز مؤسسۀ تحقیقات جنگل‌ها و مراتع کشور در سال 1392-1391 کشت شدند. صفات قطر طولی و عرضی تاج پوشش، سطح تاج پوشش، ارتفاع و شمار گل در بوته، زمان گلدهی و برداشت، وزن تر و خشک سرشاخه ، درصد و عملکرد اسانس، دمای تجمعی رشد روزانه (GDD) در زمان گلدهی و برداشت اندازه‏گیری شد. نتایج مقایسۀ میانگین صفات نشان داد که جمعیت 26500-همدان با وزن تر و خشک سرشاخه به ترتیب 15545 و 6218 کیلوگرم در هکتار، بیشترین عملکرد سرشاخه را داشت. تولید اسانس به ترتیب در جمعیت‌های14340- همدان با بازدۀ 03/1 درصد و جمعیت 27158- فومن با عملکرد اسانس 3/22 کیلوگرم در هکتار به دست آمد که نسبت به دیگر جمعیت‌ها برتری داشتند. جمعیت 29813- بویراحمد با کمترین دمای تجمعی رشد روزانه GDD (417 درجۀ سلسیوس) و کمترین زمان ظهور گل (65 روز) به‌عنوان جمعیت زودرس شناخته شدند. از نتایج این بررسی نتیجه‌گیری شد که جمعیت‌های زودرس عملکرد سرشاخه و اسانس بیشتری داشتند که از این ویژگی می‌توان در تولید رقم‌های مقاوم به خشکی برای زراعت دیم در مناطق کوه‌پایه‌ای البرز و زاگرس استفاده کرد.

 بابونه دمای تجمعی رشد روزانه زودرسی فنولوژی Adeli, N., Alizadeh, M. & Jafari, A. A. (2013). Evaluation of essential oil yield, morphological traits in some populations of two chamomile species (Matricaria recutita and M.aurea). Journal of Medicinal Plants and By- Products, 2, 153-158. Adeli, N. (2012). Genetic and morphological diversity and the essential oil of chamomile Anthemis haussknechttitii and Anthemis triumfettii populations using multivariate statistical method, MSc thesis, the field of plant breeding, Islamic Azad University of Karaj. Alizadeh, M. A., Khamoshi, H., Jafari, A. A. & Daneshian, J. (2014). Evaluation of some morphological traits, reproductive and therapeutic essential oils of three species of chamomile Anthemis pseudocotula, A. tinctori andA. tiumfettii in two sowing date. Jorunal of Medicinal Aromatic Plant, 66, 954-964. (in Farsi) Akbarnia, A. Kosravifard, M., Rezaie, M. & Sharifi Ashorabadi, A. (2006). Comparing of Autumn and spring cultivation of fennel, Ajowan, anisunand nigella under fayab and dryland conditions Jorunal of Medicinal Aromatic Plant, 21(3), 334-319. (in Farsi) Anonymous. (1991).Chamomile. In: Review of Natural Products. (Dombeck C, ed. Lawerence, B.M.) , St. Louris: Facts and Comparisons. Arazmjo, E., Heidari, M. & Ghanbari, A. (2010). Effect of water stress and type of fertilizer on yield and quality of chamomile (Matricaria chamomilla L.). Iranian Journal of Crop Sciences, 12(2), 100-111. (in Farsi) Azizi, M. & Omidbeygi, R. (2001). Evaluation effect of different amount of nitrogen and phosphor on growth, development, yield and rate of effective material of hypercin in St. Johns Wort (Hypericum perforatum), Journal of Iranian Agriculture Science, 32(4), 525-732. Frank, A. B., Sedives, K. H. & Hofmann, L. (1993). Determining grazing reading for native and tame pastures. Noth Dakota Univ. Ext. Serv. Bull., R-1061. Fargo, N.D. implication. Proceedings of the Royal Society of Edinburgh, 89, 45-58. Grdisa, M., Ccrovic-Stanko, K., Kolak, I. & Šatovic, Z. (2009). Morphological and biochemical diversity of dalmatian pyrethrum (Tanacetum cinerariifolium (Trevir.) Sch. Bip.), 74(2), 73-80. Hamisi, M., Sefidkon, F., Nasiri, M. & Lebaschi, M. (2012). Effects of nitrogen, phosphorus and manure on herb yield, yield, yield and quality of essential oil of feverfew (Tanacetum parthenium L. Jorunal of Medicinal Aromatic Plant, 28(3), 410-399. Mozaffarian, V. (2008). Flora of Iran, Asteraceae (Compositae): Tribes Anthemideae and Echinopeae. Institute of Forests and Rangelands Press, First edition, 59: 169. (in Farsi) Omidbeygi, R. (1999). Production and processing of medicinal plants. Publisher of Behnashr, third volume. (in Farsi) Omidbeygi, R. (1995). Approaches toprocessingof medicinal plants. Publications about the day, 286 p. (in Farsi) Rahimi Kalamervdi, A. (2001). Cultivated tetraploid and diploidspeciesandthe composition ofchamomileessential oilandcompared tosamplesin Iran. Ph.D. thesis in Pharmacy, University of Medical Sciences of Esphahan. (in Farsi) Siddiqui, M. H., Oad, F. C. & Jmaro, M. G. H. (2006). Emergence and nitrogen use efficiency of maize under different tillage operation and fertility levels. Asian Journal of plant Sciences, 5(3), 508-510. Vildova, A., Stolcova, M., Kloucek, P. & Orsak, M. (2006). Quality characterization of chamomile (Matricaria chamomilla L.) in organic and traditional agricultures. In: Proceedings of 1th international symposium on chamomile research, development and production, Slovak Republic, June 7-1. Yaryab, S. (2013). Evaluation of yield and morphological traits in populations of six species Anthemis haussknechtii, A. althissimaA. tinctoria, A. psedocotula, Matricaria recutita and Tripleurospermum sevasnense, M.Sc. thesis, Islamic Azad University, Karaj- Branch, pp: 1-96. (in Farsi) Zargary, A. (1997). Plant medicine. 6th Ed., Tehran University Press, Tehran, Iran. (in Farsi) _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.131959.840 علوم میوه تأثیر سطوح مختلف شوری در فراسنجه‌های فیزیولوژیکی برخی پایه‌های پیوندی گلابی میرعبدالباقی میترا استاد، بخش تحقیقات باغبانی، مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ نهال و بذر، کرج 23 08 2017 48 2 347 356 16 09 2015 14 05 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63056.html

به‌منظور تعیین تأثیر سطوح مختلف شوری (شاهد با هدایت الکتریکی 8/0، 6/1، 4/2، 2/3 و 4 دسی‌زیمنس بر متر) با استفاده از نمک کلرور سدیم روی فراسنجه (پارامتر)های فیزیولوژیکی و شاخص‌های رشد (طول و قطر) در سه رقم دره گزی، لوییزبون و ویلیام دوشس که روی پایه‌های گلابی بذری، OHF69 و Pyrodwarf پیوند شده بودند. پژوهشی در قالب طرح آماری بلوک‌های کامل تصادفی به‌صورت فاکتوریل و در کشت گلدانی مستقر در باغ تحقیقاتی کمال‌آباد کرج در سال 1394 به اجرا گذاشته شد. در این پژوهش برای صفات مورد بررسی از شاخص‌های مختلف حساسیت و تحمل به تنش شوری استفاده شد. در نهایت با استفاده از شاخص میانگین رتبه‌بندی و انحراف معیار بر مبنای همۀ شاخص‌های اندازه‌گیری‌شده، حساس‌ترین و متحمل‌ترین نهال به شوری معرفی شد. نتایج نشان داد که در بین صفات مورد بررسی روند کاهشی سبزینه (کلروفیل) یا ارزش SPAD با افزایش شوری بیشتر از دیگر صفات (20درصد کاهش در شرایط شور) بود. در بین نهال‌های مورد بررسی، در شرایط شور نهال پیوندی لوییزبون× بذری برتری نسبی از نظر طول، قطر تنه، FV/FM و میزان سبزینه یا ارزش SPAD در مقایسه با دیگر نهال­ها نشان داد. همچنین نهال لوییزبون× پیرودوارف در شرایط شور، کاهش بیشتری در فراسنجه‌های طول و قطر تنه، سطح برگ، FV/FM و سبزینه یا ارزش SPAD مقایسه با دیگر نهال­ها نشان داد. در این پروژه نهال لوییزبون*بذری به عنوان متحمل ترین و نهال لوییزبون× پیرودوارف به عنوان حساس ترین نهال به شوری شناخته شدند.

 پایه‌های پیوندی گلابی شوری شاخص‌های تحمل فراسنجه‌های فیزیولوژیکی Barbagallo, R. P., Oxborough, K., Palette, K. E. & Baker, N. R. (2003). Rapid, non-invasive screening for perturbations of metabolism and plant growth using chlorophyll fluorescence imaging. Plant Physiology, 132, 485-493. Bhardway, R. & Singhal, G. (1981). Effect of water stress on photochemical activity of chloroplasts during greening etiolated barley seedling. Plant Cell Physiology, 22(2), 155-162. Bolat, I., Kaya, C., Almaca, A. & Timucin, S. (2006). Calcium sulfate improve salinity tolerance in rootstock of plum. Journal of Plant Nutrition, 29, 553-564. Bouslama, M. & Schapaugh, W. T. (1984). Stress tolerance in soybean. Part 1: evaluation of three screening techniques for heat and drought tolerance. Crop Science, 24, 933-937. Cheeseman J. M. (1988). Mechanisms of salinity tolerance in plants. Plant Physiology, 87, 57-550. Clark, J. M., Depauw, R. M. & Townley–Smith, T. F. (1992). Evaluation of methods for quantification of drought tolerance in wheat. Crop Science, 32, 723-728. Clark, J. M., Townley–Smith, T. F., McCaig, T. N. & Green, D. G. (1984). Growth analysis of spring wheat cultivars of varying drought resistance. Crop Science, 24, 537-541. Duran-Zuazo, V. H., Martinez-Raya, H. & Aguilar-Ruiz, J. (2003). Salt tolerance of mango rootstock (Magnifera indica L. cv.Osteen). Spanish Journal of Agricultural Research, 1(1), 67-78. Fallahi, S. H. (1998). Detailed soil and land classification studies at Kamalabad Research Station (Karaj). Technical Journal of Soil and Water Research Institute. ???????. Farshadfar, E. & Elyasi, P. (2012b). Screening quantitative indicators of drought tolerance in bread wheat (Triticum aestivum L.) landraces, European Journal of Experimental Biology, 2(3), 577-584 Farshadfar, E., Elyasi, P. & Aghaee, M. (2012a). In Vitro selection for drought tolerance in common wheat (Triticum aestivum L.) genotypes by mature embryo culture, American Journal of Science, Research, 48, 102-115. Fernandez, G. C. J. (1992). Effective selection criteria for assessing plant stress tolerance. Proceeding of adaptation for food crops to temperature and water stress symposium. Taiwan. pp. 257-270. Fernandez, R. J. & Reynolds, J. F. (2000). Potential growth and drought tolerance of eight desert grasses. Journal of Ecologia, 123, 90-98. Fisarakis, I., Nikolaou, N., Tsikalas, P., Therios, I. & Stavrakas, D. (2004). Effect of salinity and rootstock on concentration of potassium, calcium, magnesium, phosphorus, and nitrate-nitrogen in Thompson seedless grapevine. Journal of Plant Nutrition, 12, 2117-2134. Fischer, R. A. & Maurer, R. (1978). Drought resistance in spring wheat cultivars. I. Grain yield response. Australian Journal of Agricultural Research, 29, 897-912. Fischer, R. A. & Maurer, R. (1978). Drought resistance in spring wheat cultivars. I. Grain yield response. Australian Journal of Agricultural Research, 29, 897-912. Garcia-Sanchez, F. & Syvertsen, J. P. (2006). Salinity tolerance of Cleopatra mandarin and carrizo citrange citrus rootstock seedlings is affected by CO2 enrichment during growth. Journal of the American Society for Horticultural Science, 131, 24-31. Garcia-Sanchez, F., Syvertsen, J. P., Martinez, V. & Melgar, J. C. (2006). Salinity tolerance of “Valencia” orange trees on rootstocks with contrasting salt tolerance is not improved by moderate shade. Journal of Experimental Botany, 121, 1-10. Gavuzzi, P., Rizza, F., Palumbo, M., Campaline, R. G., Ricciardi, G. L. & Borghi, B. (1997). Evaluation of field and laboratory predictors of drought and heat tolerance in winter cereals. Canadian Journal of Plant Science, 77, 523-531. Homaii, M. (2002). The reaction of plants to salinity. First edition, National Iranian Irrigation and Drainage Committee Publication. No. 58, Tehran Khalili, M., Naghavi, M. R., Pour Aboughadareh, A. R. & Talebzadeh, J. (2012). Evaluating of Drought Stress Tolerance based on selection indices in spring canola cultivars (Brassica napus L.). Journal of Agricultural Science, 4(11), 78-85. Lea-Cox, J. & Syvertsen, J. P. (1993). Salinity reduces water use and nitrate- N-use- efficiency of citrus. Annals of Botany, 72, 47-54. Matsumoto, K., Chun, J., Tamura, F., Kamamoto, Y. J. P. & Tanabe, K. (2006). Salt tolerance in Pyrus species is linked to levels of Na and Cl translocation from roots to leaves. Journal- Japanese Society for Horticultural Science, 75(5), 385-391. Munns, R. (2002). Comparative physiology of salt and water stress. Plant Cell Environment, 25, 239-250. Naeini, M.R., Khoshgoftarmanesh, A. H. & Fallahi, E. (2006). Partitioning of chlorine, sodium and potassium and shoot growth of three pomegranate cultivars under different levels of salinity. Journal of Journal of Plant Nutrition, 29, 1835-1843. Okubo, M., Furukawa, Y. & Sakuratani, T. (2000). Growth, flowering and leaf properties of pear cultivars grafted on two Asian pear rootstock seedlings under NaCl irrigation. Scientia Horticulturae, 91-101. Oxborough, K. (2004). Using chlorophyll fluorescence imaging to monitor photosynthetic performance. 254-298.In: Papa Georgiou, G. and E. D. S. Govindjee. Chlorophyll fluorescence: a signature of photosynthesis.Dordrecht: Kluwer Academic Publishers. Paknejad, F., Majidiheravan, E., Noormohammadi, Q., Siyadat, A. & Vazan, S. (2007). Effects of drought strees on chlorophyll fluorence parameters, chlorophyll content and grain yield of wheat cultivars. American Journal of Biochemistry and Biotechnology, 5(4), 162-169. Radnia, H. (1996). Fruit Trees. (Translation). First Edition, Educational Agricultural Publishing. 637 pages. Rosielle, A. A. & Hamblin, J. (1981). Theoretical aspects of selection for yield in stress and non-stress environments. Crop Science, 21, 943 -946. Shani, U. & Ben-Gal, A. (2005). Long-term response of grape vines to salinity: osmotic effects and ion toxicity. American Journal of Enology and Viticulture, 30(56), 2. Sotiropoulos, T. E., Therios, I. N., Almaliotis, D., Papadakis, I. & Dimassi, K. N. (2006). Response of cherry rootstocks to boron and salinity. Journal of Plant Nutrition, 29, 1691-1698. Szczerba, M. W., Britto, D. T. & Kronzucker, H. J. (2009). K+ transport in plants: physiology and molecular biology. Journal of Plant Physiology, 166, 447-466. Tabatabaei, S. J. (2006). Effects of salinity and N on the growth, photosynthesis and N status of olive (Olea europaea L.) trees. Scientia Horticulturae, 108, 432-488. Wilson, J. M. & Greave, J. A. (1993). Development of water stress in crop plants. In: Adaption of food crops to temperature and water stress, AVRDC, Taiwan, pp: 389-398. Zhao, G. Q., Ma, B. L. & Ren, C. Z. (2007). Growth, Gas Exchange, chlorophyll fluorescence, and ion content of naked oat in response to salinity. Journal of Crop Science, 41, 123-131. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.138947.899 مقاله پژوهشی بررسی پایداری ژنتیک گیاهچه‌های حاصل از کشت بافت برخی از رقم‌های خرما با استفاده از نشانگرهای ریزماهواره شهبازی احسان استادیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه شهرکرد عالمی سعید خلیل استادیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان، خوزستان صلواتی افشین دانشجوی سابق دکتری، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج غلامی نسیم دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان، خوزستان گلکار پوراندخت استادیار، پژوهشکدۀ زیست‌فناوری و مهندسی زیستی، دانشگاه صنعتی اصفهان 23 08 2017 48 2 357 367 23 12 2015 11 06 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63057.html

خرما با نام علمی Phoenix dactylifera گیاهی تک‌لپه، دو پایه و با عمر طولانی و چندساله است که اهمیت اقتصادی بالایی در کشور ایران دارد. افزایش درختان آن با استفاده از پاجوش کند و هزینه‌بر است، به همین دلیل امروزه از روش­های افزایش دیگری از جمله کشت بافت استفاده می­شود. روش کشت بافت منجر به تنوع همسانۀ بدنی (سوماکلونال) می­شود که ناشی از تنوع اپی­ژنتیک غیر قابل وراثتی است که در نتیجۀ تغییرپذیری پدیدگانی (فنوتیپی) موقت به وجود می­آید. لذا نبود ثبات ژنتیک نهال­های کشت بافتی باعث تمایل نداشتن نخل­داران در استفاده از این نوع نهال­ها است. در این پژوهش بررسی ثبات ژنتیک، ده نژادگان (ژنوتیپ) از خرمای پاجوشی و کشت بافتی ناشی از اندام­زائی مستقیم در رقم‌های ایرانی با استفاده از بیست جفت آغازگر ریز ماهواره­ای ارزیابی شد. نتایج نشان داد، از بین جفت آغازگرهای مورد استفاده، چهار آغازگر mPdCIR044، PDAAG1023، DP172 و PDAAG1025 قادر به تمایز بین رقم‌ها و بیان چندشکلی بودند. برابر با این نتایج درمجموع 38 آلل با میانگین 9/1 آلل در هر مکان ژنی افزایش و امتیازبندی شد. هیچ‌کدام از آغازگرها تفاوتی بین نمونۀ کشت بافتی و پاجوشی درون هر رقم نشان ندادند. نتایج تجزیۀ خوشه­ای با استفاده از روش Ward رقم‌ها را به دو گروه اصلی تقسیم کرد. نتایج این بررسی نشان داد، درختان خرمای به‌دست‌آمده از روش افزایش کشت بافت (اندام­زائی مستقیم) از لحاظ ژنتیک مانند گیاهان مادری بوده است، لذا روش افزایش سریع نمونه­های خرما به‌منظور تولید نهال با استفاده از اندام­زائی مستقیم در شرایط درون شیشه­ای توصیه می­شود. 

 پایداری تنوع ژنتیکی سوماکلونال نشانگر Abahmane, L.(2011). Date palm micropropagation via organogenesis. In: Jain SM, Al-Khayri JM, Johnson DV (Ed). Date Palm Biotechnology. (pp. 69-90). Springer Science.  Akkak, A., Scariot, V., Torello Marinoni, D., Boccacci, P., Beltramo, C. & Botta, R. (2009). Development and evaluation of microsatellite markers in Phoenix dactylifera L. and their transferability to other Phoenix species. Biologia Plantarum, 53(1), 164-166. Al Kaabi, H. H., Zaid, A. & Ainsworth, C. (2005) Plant-off types in tissue culture-derived date palm (Phoenix Dactylifera L.). In: Proceedings of International Workshop on True-to-Typeness of Date Palm Tissue Culture-Derived Plants. 23-25 May, National Institute of Agronomic Research, Morocco, pp.14-26. AlKhateeb, A. A. (2008). The problems facing the use of tissue culture technique in date palm (Phoenix dactylifera L.). Scientific. Journal King Faisal University (Basic and Applied Sciences), 9, 85-104. Al-Khayri, J. M. (2003). In vitro germination of somatic embryos in date palm: effect of auxin concentration and strength of MS salts. Current Science, 84:680-683. Al-Ruqaishi, I. A., Davey, M., Alderson, P. & Mayes,S.(2007). Geneticrelationshipsand genotype tracing in date palms (phoenix dactylifera L.) in Oman based on microsatellite markers. Plant Genetic Resources, 6(1), 70­72. Al-Wasel, A. S. (2005). Survey Study On: Somaclonal variations in in-vitroderived date palm trees. In: Proceedings of International Workshop on True-to-typeness of Date Palm Tissue Culture-Derived Plants. 23-25 May, National Institute of Agronomic Research, Morocco, p. 44. Arabnezhad, H., Bahar, M., Mohammadi, H. R. & Latifian, M. (2012). Development, characterization and use of microsatellite markers for germplasm analysis in date palm (Phoenix dactylifera L.). Scientia Horticulturae, 134, 150-156. Askari, E. & Al-Khalifah, N. S. (2003). Molecular phylogeny of date palm (Phoenix dactylifera L.) cultivars from Saudi Arabia by DNA fingerprinting. Genetics, 107, 1266-1270. Barrow, S. (1998). A monograph of Phoenix L. (Palmae: Coryphoideae). Kew Bull, 53, 513-575. Bassam, B. J. & Caetano-Anolles, G. (1993). Silver staining of DNA in polyacrylamide gels. Applied Biochemistry and Biotechnology, 42, 181-188. Bekheet, S. (2013). Direct organogenesis of Date palm (Phoenix dactylifera L.) for propagation of true-to-type plants. Scientia Agriculturae, 4(3), 85-92. Bell, G. I. (1996). Evolution of simple sequence repeats. Computational Chemistry, 20(1), 41-48. Chaluvadi, S. R., Khanam, S., Aly, M. A. & Bennetzen, J. L. (2014). Genetic diversity and population structure of native and introduced date palm (Phoenix dactylifera L.) germplasm in the United Arab Emirates. Tropical Plant Biology, 7, 30-41. Dayani, O., Khezri, A. & Moradi, A. A. (2012). Determination of nutritive value of date palm by-products using in vitro and in situ measurements. Small Ruminant Research, 105, 122-125. Doyle, J. J. & Doyle, J. L. (1990). Isolation of plant DNA from fresh tissues. Focus, 12, 11-15. Ebtissam, H. A., Adawy, S., Ismail, S. E. & El-Itriby, H. A. (2008). Molecular characterization of some Egyptian date palm germplasm using RAPD and ISSR markers. Biotechnology, (1), 83-98.. Elsafi, M. (2014). Study on the on-farm diversity of local date palm (Phoenix dactylifera L.) genetic resources grown in Northern region of Sudan. Ph.D. Thesis, University of Swedish, Swedish. Elshibli, S. & Korpelainen, H. (2008). Microsatellite markers reveal high genetic diversity in date palm (Phoenix dactylifera L.) germplasm from Sudan. Genetica, 134, 251-260. Food and Agriculture Organization. (2012). Date palm production, from http:// www.fao.org. Gurevich, V., Lavi, U. & Cohen, Y. (2005). Genetic variation in date palms propagated from offshoots and tissue culture. Horticultural Science, 130(1), 46-53. Hamwieh, A., Farah, J., Moussally, S., Al-Sham, K., Almer, K., Khierallah, H., Udupa, S., Lababidi, S., Malek, J. A., Aaouine, M. & Baum, M. (2010). Development of 1000 microsatellite markers across the date palm (Phoenix dactylifera L.) genome. Acta Horticulture, 882, 269-277. Hedrick, P. W. (1999). Genetic of Populations (2nd ed.). Jones and Bartlett Publishers, Sudbury, MA, USA. Jain, M. (2007). Recent advances in date palm tissue culture and mutagenesis. Acta Horticulture, 736, 205-211. Khan, S. & Bi, T. B. (2012). Direct shoot regeneration system for date palm (Phoenix dactylifera L.) cv. Dhakki as a means of micropropagation. Pakistan Journal of Botany, 44(6), 1965-1971. Khanam, S., Sham, A., Bennetzen, J. & Alyl, M. (2012). Analysis of molecular marker-based characterization and genetic variation in date palm (Phoenix dactylifera L.). Crop Science, 6(8), 1236-1244. Khierallah, H., Bader, S., Baum, M. & Hamwieh, A. (2011). Genetic diversity of Iraqi date palms revealed by microsatellite polymorphism. Horticulture Science, 136(4), 282-287. Kriaa, W., Masmoudi, F. & Drira, N. (2007). In vitro culture of date palm using mature female flower explants. In: Proceedings of the fourth Symposium on Date Palm, 5-8 May, Saudi Arabia, King Faisal University, Al-Hassa. p.146. Kumar, N., Singh, A.S., Modi, A., Patel, A. R., Gajera, B. & Subhash, N. (2010). Genetic stability studies in 21. Micropropagated date palm (Phoenix dactylifera L.) plants using microsatellite marker. Forest Science, 26, 31-36. Moghaieb, R. E., Abdel-Hadi, A. A. & Ahmed, M. R. (2011). Genetic stability among date palm plantlets regenerated from petiole explants. Biotechnology, 10, 14311-14318. Mohammadi, S. & Prasanna, B. M. (2003). Analysis of genetic diversity in crop plants-salient statistical tools and consideration. Crop Science, 43, 1235-1248. Nei, M. (1983). Genetic polymorphism and the role of mutation in evolution. Genetics, 165-190. Peakall, R. & Smouse, P. E. (2012). Gen AlEx 6.5: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research an update. Bioinformatics, 28, 2537-2539. Racchi, M., Bove, M., Turchi, A., Bashir, G., Battaglia, M. & Camussi, A. (2013). Genetic characterization of Libyan date palm resources by microsatellite markers. Biotechnology, 4, 21-32. Sefc, K. M., Lopes, M. S., Lefort, F., Botta, R., Roubelakis-Angelakis, K. A., Ibanez, J., Pejic, I., Wanger, H. W., Glossl, J. & Steinkellner, H. (2000). Microsatellite variability in grapevine cultivars from different European regions and evaluation of assignment testing to assess the geographic origin of cultivar. Theoretical and Applied Genetics, 100, 498-505. Younis, R. A., Ismail, O. M. & Soliman, S. S. (2008). Identification of sex-specific DNA markers for date palm (Phoenix dactylifera L.) using RAPD and ISSR techniques. Agriculture & Biology Science, 4, 287-184. Zaid, A. & De Wet, P.F. (2002). Date Palm propagation. Food and Agriculture Organization of the United Nations Rome 73-105. Zehdi, S., Trifi, M., Billotte, N., Marakchi, M. & Pintaud, J.C. (2004). Genetic diversity of Tunisian date palms (Phoenix dactylifera L.) revealed by nuclear microsatellite polymorphism. Hereditas, 141, 278-287. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.140666.920 علوم میوه بررسی ویژگی‌های فیزیکوشیمیایی و پاداکسندگی برخی از موهای وحشی استان آذربایجان غربی خوش آمد شورجه رقیه دانشجوی کارشناسی ارشد، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ارومیه حسن پور حمید استادیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ارومیه 23 08 2017 48 2 369 380 19 01 2016 19 04 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63388.html

بررسی و ارزیابی ویژگی‌های موهای وحشی در برنامه­های بهنژادی و معرفی رقم‌های مناسب برای شرایط آب و هوایی خاص اهمیت بسیار زیادی دارد. هدف از این پژوهش، ارزیابی و شناخت بهتر ویژگی­های نژادگان (ژنوتیپ)­های موهای وحشی استان آذربایجان غربی به‌منظور کاربرد آن‌ها در برنامه­های بهنژادی است. بیست نمونه­ از مناطق پیرانشهر و سردشت این استان گردآوری‌شده و صفات فیزیکوشیمیایی مختلفی مربوط به خوشه، خوشه­چه، حبه و بذر و ظرفیت پاداکسندگی کل اندازه­گیری شدند. نتایج نشان داد، تنوع بالایی در برخی از صفات مانند طول و عرض خوشه و وزن خوشه وجود داشت.دامنۀ ظرفیت پاداکسندگی گوشت، پوست و بذر در نژادگان­های مورد بررسی به ترتیب از 53/15 تا 53/71، 36/7 تا 96/84 و 71/8 تا 64 درصد متغیر است. صفات مرتبط با خوشه از جمله طول­ خوشه و عرض ­خوشه همبستگی مثبت و معنی­داری با صفات مرتبط با حبه مانند طول، عرض، وزن و اندازۀ حبه داشتند. یازده عامل اصلی نزدیک به 97/79 درصد از واریانس کل را توجیه کردند. در تجزیۀ خوشه­ای به روش Wardنژادگانهای موهای وحشی در سه گروه اصلی تقسیم شدند. نژادگان­های موجود در گروه اول بیشترین میانگین صفات وزن گوشت، ضخامت پوست، هیو، کروما، TA و pHآب‌میوه را داشتند. صفات طول و عرض­ حبه، طول دم ­حبه، شمار بذر، L* و a* نیز در جداسازی گروه دوم نقش مهمی داشتند. نژادگان­های موجود در گروه سوم میانگین صفات شمار خوشۀ ­فرعی و طول خوشۀ بالاتری داشتند. نتایج به‌دست‌آمده از این بررسی می­تواند در کارهای به نژادی و معرفی رقم در مو بسیار سودمند باشد.

 تجزیه به عامل‌ها تجزیۀ خوشه‌ای ضریب تنوع همبستگی Badenes, M. L., Martinez-Calvo, J. & Llacer, G. (2000). Analysis of a germplasm collection of loquat (Eriobotrya japonica Lindl.). Euphytica, 114, 187-194. Chiou, A., Karathanos, V. T., Mylona, A., Salta, F. N., Preventi, F. & Andrikopoulos, N. K. (2007). Grape (Vitis vinifera L.) content of simple phenolics and antioxidant activity. Food chemistry, 102, 516-522. Drogoudi, P. D., Tsipouridis, C. & Michailidis, Z. (2005). Physical and chemical characters in pomegranate. Horticulture Science, 40, 1200-1203. Du, A., Li, M., Ma, F. & Liang, D. (2009). Antioxidant capacity and the relationship with polyphenol and Vitamin C in Actinidia fruits. Journal of Food Chemistry, 113, 557-562. Doulati Baneh, H., Nazemia, A., Mohammadi, S.A., Hassani, G. & Henareh, M. (2010).Identification and evaluation of West Azarbaijan grape cultivars by ampelography and ampelometery. Plant Production Technology, 10(1), 13-23. (in Farsi) Eshghi, S., Salehi, L. & Karami, M.J. (2014). Antioxidant activity, total phenolic compounds and anthocyanin contents in 35 different grapevine (Vitis vinifera L.) cultivars grown in Fars province. International Journal of Horticultural Science and Technology, 1(2), 151-161. Forde, H. I. (1975). Walnuts. Advances in Fruit Breeding. In: Janick, J. and Moore, J. N. Purdue University Press, West Lafayette, IN. (Eds.). 439-455. Hashemzehi, M., Moradgholi, A. & Kamali. M. (2011). Evaluation of genetic diversity and analysis to agents for morphological traits of grape cultivars. In: Proceeding of the 7th Horticultural Sciences Congress of Iran. Esfehan, 1955p. (in Farsi) Kadir, U.Y., Sezai, E., Yasar, Z., Memnune, S. & Ebru, Y. K. (2009). Preliminary characterization of cornelian cherry (Cornus mas L.) genotypes for their physico-chemical properties. Food Chemistry, 114, 408-412. Karami, M. J. (2009). Introduction and description of major characteristics of nonirrigated grape cultivars grown in Kurdistan. Seed and Plant, 21, 577-600. (in Farsi) Karimi, S. H., Dehvari, M., Hajiyan, M. & Mokhtariyan, A. (2012). Genetic diversity of grape varieties based on molecular markers in Razavi khorasan province. Seed and Plant improvement Journal, 28(2), 159-172. (in Farsi) Levadoux, L. (1956). Les populations saurcages et cultivees de Vitis vinifera. Ann Amelior Plantes, 6, 59-118. Mokhtarian, A. (1997). Identification and study of local grape cultivars in Kashmar. Congress of Horticultural Science in Iran, Karaj, 155p. (in Farsi) Mousazadeh, R., Shor, M. & Tehranifar, A. (2013). Investigation of antioxidant activity in grape seed extract of some grape cultivars. Journal of Plant Science Research, 28(4), 13 -9. (in Farsi) Moosazadeh, R., Shoor, M., Tehranifar, A., Davarinezhad, G. & Mokhtaryan, A. (2013). Identity of some grape cultivars based on fruits and their seeds morphological characteristics. Journal of Plant Science Rearch, 28, 1-8. (in Farsi) Ocete, R., Canto, M., Lopez, M. A., Gomez, I. & Troncoso, A. (2002). Wild grapevine populations in the Ossa-Morena Mountain range (Portugal-Spain): location, characterization and sanitary state. Vitis, 41, 55-56. Parvaneh, V. (2006). Quality control and the chemical analysis of food. University of Tehran, 332p. (in Farsi) Rsouli, M., Mohammad parast, B. & Eyni, M. (2015). Study on phenotypic diversity of some grape (Vitis Vinifera L.) cultivars and genotypes using morphological markers. Journal of Applied Crop Breeding. 2(3), 241-260.(in Farsi) Rouzbahan, Y., Alipour, D., Barzgar, M. & Azizi, M. H. (2008). The antioxidant activity and phenolic compounds of grape pomace. Journal of Food Science. 5(3), 74 -69. (in Farsi) Ruhi, E. & Alleweldet, G. (1985). Investigation into the influence of time of irrigation on yield and quality of grapevine. Acta Horticulture, 171, 457-462. Shiraishi, M. (1995). Proposed descriptors for organic acid to evaluate grape germplasm. Euphytica, 81(1), 13-20. Xianming, W., Sykes, S. R. & Clingeleffer, P. R. (2002). An investigation to estimate genetic parameters in CSIRO’s table grape breeding program 2 Quality characteristics. Euphytica, 128, 343-351. Yildirim, H. K., Akçay, Y. D., Güvenç, U., Altindisli, A. & Sözmen, E. Y. (2005). Antioxidant activities of organic grape, pomace, juice, must, wine and their correlation with phenolic content. International Journal of Food Science and Technology, 40, 133-142. Yoo, J. Y., Shin, D. H. & Min, B. Y. (2000). Composition of Grape seed oil. Korean Journal of Food Sciences and Technology, 16(3), 257-26. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.140652.921 مقاله پژوهشی افزونش انبوه لیموترش ایرانی (Citrus latifolia) در شرایط درون شیشه‌ای مجتهدی نرگس استادیار، پژوهشکدۀ بیوتکنولوژی کشاورزی ایران، مؤسسۀ تحقیقات اصلاح و تهیۀ نهال و بذر، کرج 23 08 2017 48 2 381 389 13 01 2016 19 04 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63389.html

مناسب‌ترین راه ممکن برای مبارزه با بیماری جاروک لیموترش، استفاده از پایه‌ها و رقم‌های متحمل و سالم است. در این پژوهش، دستورکار ریزازدیادی لیموترش ایرانی (پرشین لایم) که تحمل بالایی نسبت به این بیماری دارد، در شرایط درون شیشه‌ای بررسی شده است. برای استقرار، جوانه‌های انتهایی و جانبی شاخه‌های جوان نهال‌های سه ساله پس از برش و ضدعفونی سطحی در محیط کشت پایۀ بدون هورمون MS قرار داده شده و پس از 20 تا 30 روز، سرشاخه‌های تولیدشده برای پرآوری، به محیط‌های کشت MS و DKW  و تنظیم‌کنندۀ‌ رشد بنزیل‌آمینوپورین منتقل شدند. برای طویل‌سازی ریزشاخه‌ها برای انتقال به محیط ریشه‌زایی، آزمایش دیگری با استفاده از تنظیم‌کننده‌های رشد کاینتین و بنزیل‌آمینوپورین و برای تعیین محیط ریشه‌زایی، دو آزمایش جداگانه، با استفاده از سه غلظت ایندول استیک اسید (IAA) و نفتالن استیک اسید (NAA) و سه غلظت ایندول بوتیریک اسید (IBA)در محیط DKW حاوی 2درصد ساکارز انجام شد. برای سازگاری، آزمایشی با شش ترکیب خاک انجام گرفت. نتایج نشان داد، محیط کشت DKW با غلظت 1 میلی‌گرم در لیتر بنزیل آمینوپورین (BAP) و ساکارز 3درصد، بهترین محیط برای پرآوری، 25/0 میلی‌گرم در لیتر بنزیل آمینوپورین (BAP) برای افزایش طول، نفتالن استیک اسید به میزان 2 میلی‌گرم در لیتر در محیط کشت DKW و 2درصد ساکارز بهترین محیط برای ریشه‌زایی بودند. بهترین ترکیب خاک، شامل ماسه: پرلایت: پیت: رس سترون‌شده (استریل) با نسبت (1: 1: 3 :3) با میانگین 88درصد زنده‌مانی بود. پس از دو ماه گیاهان به‌کلی سازگار شده و آمادۀ انتقال به باغ بودند.

 پرآوری ریزازدیادی ریشه‌زایی سازگاری طویل‌سازی لیمو Al-Khayri, J. M. & Al-Bahrany, A. M. (2001). In vitro micropropagation of Citrus aurantifolia (Lime). Current Science, 81, 1242- 1246. Bacchi, O. (1940). Observacoes citológicas em Citrus. I. Número de cromossô-mios de algumas espécies e variedades. Jornal de Agronomia Piracicaba, 3, 249-258. Chung, K. R., Khan, J. A. & Brlansky, R. H. )2006(. Citrus diseases exotic to Florida Witches Broom disease of lime (WBDL). Fact Sheet PP-228, Series of the Plant Pathology Department, Florida Cooperative Extension Service, Institute of Food and Agricultural Sciences, University of Florida. Duran-Vila, N. & Navarro, L. (1989). Morphogenesis and tissue cultures of three Citrus species. Plant Cell Tissue Organ Culture, 16, 123-133. Goswami, K. Sharma, R. Singh, P. K. & Singh, G. (2013). Micropropagation of seedless lemon (Citrus limon L. cv. Kaghzi Kalan) and assessment of genetic fidelity of micropropagated plants using RAPD markers. Physiology and Molecular Biology of Plants, 19, 137-145. Hazarika, B. N. Singh, I. P. Nagaraju, V. & Parthasarathy, V. A. (1998). An efficient method of acclimatization of micropropagated plantlets of citrus. Annual Plant Physiology, 12, 47-51. Hazarika, B. N. Nagaraju, V. & Parthasarathy, V. A. (1999). Acclimatization techniques of citrus plantlets from in vitro. Advances in Plant Science, 12, 97-102. Hidaka, T. & Kajiura, I. (1989). A simple method for acclimatization of in vitro plantlets of citrus. Bulletin of the Fruit Tree Research, 16, 19-28. Jones, R. A. (1986). The development of salt-tolerant tomatoes: breeding strategies. Acta Horticulturae, 190, 101-114. Kitto, S. L. & Young, M. J. (1981). In vitro propagation of Carrizo citrange. HortScience, 16, 305-306. Khoshkhooi, M. & Rezazadeh, R. (2000). Effect of explants, culture media and plant growth regulators on micropropagation of Citrus limetta Swing. Journal of Horticultural Science and Technology, 1, 1-14. Kotsias, D. & Roussos, P. A. (2001). An investigation on the effect of different plant growth regulating compounds in in vitro shoot tip and node culture of lemon seedlings. Scientia Horticulturae, 89, 115-128. Maurer, M. (1998). Low desert citrus varieties. College of Agriculture. University of Arizona. From https://cals.arizona.edu/fps/sites/cals.arizona.edu.fps/files/cotw/Mexican_Lime.pdf. Moore, G. A. (2001). Oranges and lemons: clues to the taxonomy of Citrus from molecular markers. Trends in Genetics, 17, 536-540. Morton, F. J. (1987). Tahiti Lime. In: Fruits of warm climates. Julia F. Morton, Miami, FL. 172-175. Normah, M. N. Hamidah, S. & Ghani, F. D. (1997). Micropropagation of Citrns halimii-an endangered species of South-east Asia. Plant Cell Tissue Organ Culture, 50, 225-227. Paudyal, K. P. & Haq, N. (2000). In vitro propagation of Pummelo (Citrus Grandis L.). In vitro Cellular and Developmental Biology 36, 511-516. Perez-Molphe-Balch, E. & Ochoa-Alejo, N. (1997). In vitro plant regeneration of Mexican lime and mandarin by direct organogenesis. HortScience 32, 931-934. Pérez-Tornero, O. Tallón, C. I. & Porras, I. (2009). An efficient protocol for micropropagation of lemon (Citrus limon) from mature nodal segments. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 100, 263-271. Rathore, J. S., Rathore, M. S., Singh, R. P., Singh, M. & Shekhawat, N. S. (2007). Micropropagation of mature tree of (Citrus limon). Indian Journal of Biotechnology, 6, 239-244. Sharma, S., Singh, B., Rani, G., Zaidi, A. A., Hallan, V., Nagpal, A. & Virk, G. S. (2007). In vitro production of Indian citrus ringspot virus (ICRSV) free kinnow plants employing phytotherapy coupled with shoot tip grafting. In Vitro Cellular and Developmental Biology, 43, 254-259. Shahsavar, A. (2004). Studied of rapid multiplication of Citrus aurrantifolia (christm) Swingle and Citrus aurantium L. using shoot tips. Journal of Horticultural Science and Technology, 5, 137-146. Sim, G. E., Goh, C. J. & Loh, C. S. (1989). Micropropagation of Citrus mitis Blanco-multiple bud formation from shoot and root explants in the presence of 6-benzylarninopurine. Plant Science, 59, 203-210. Singh, S., Ray, B. K., Bhattacharyya, S. & Deka, P. C. (1994). In vitro propagation of Citrus reticulata Blanco and Citrus limon Burm. HortScience, 29, 214-216. Zimmerman, R. H. (1991). Micropropagation of temperate zone fruit and nut crops. In: Debergh, P.C. and Zimmerman, R. H. (eds.). Micropropagation technology and application. Kluwer Academic Publ. The Netherlands. 231-246. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.140928.922 علوم میوه تأثیر سیلیکات پتاسیم بر کاهش تجمع بُر و آسیب‌های اکسایشی در انگور بیدانۀ سفید در شرایط تنش سمیت بُر نظام دوست سمیه دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ارومیه فرخزاد علیرضا استادیار گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ارومیه رسولی صدقیانی میر حسن دانشیار گروه علوم خاک، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ارومیه 23 08 2017 48 2 391 401 18 01 2016 25 04 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63390.html

تنش ناشی از سمیت بُر از مهم­ترین اختلال‌ها در نواحی خشک و نیمه‌خشک به شمار می‌آید. تیمار سیلیسیم یکی از روش‌های افزایش مقاومت گیاهان به تنش­های غیرزنده است. برای ارزیابی تأثیر سیلیسیم بر کاهش سمیت بُر در انگور بیدانۀ سفید، آزمایشی با سه سطح بُر (2/0، 15 و 30 میلی­گرم در لیتر) و سه سطح سیلیکات پتاسیم (0، 50 و 100 میلی­گرم در لیتر) به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح بلوک کامل تصادفی با سه تکرار به اجرا درآمد. سه ماه پس از اعمال تیمارها، میزان تجمع بُر، محتوای نسبی آب برگ، نشت یونی، پرولین، مالون دی آلدهید، قند و پروتئین محلول و فعالیت آنزیم گایاکول پراکسیداز اندازه‌گیری شد. نتایج نشان داد، با افزایش غلظت بُر در محلول غذایی، میزان تجمع بُر، نشت یونی، محتوای پرولین، مالون دی آلدهید و پروتئین محلول برگ افزایش و محتوای نسبی آب برگ و فعالیت آنزیم گایاکول پراکسیداز کاهش یافت. کاربرد سیلیکات پتاسیم به‌طور معنی­داری میزان تجمع بُر، مالون دی آلدهید و نشت یونی در برگ را کاهش و فعالیت آنزیم گایاکول پراکسیداز و محتوای نسبی آب برگ را افزایش داد. تیمارها تأثیر معنی­داری بر محتوای قندهای محلول نداشتند. در تنش 30 میلی‌گرم در لیتر بُر، با کاربرد 100 میلی­گرم در لیتر سیلیکات پتاسیم میزان تجمع بُر 33 میلی­گرم به ازای هر کیلوگرم وزن خشک برگ کاهش یافت. نتایج نشان داد، تیمار سیلیکات پتاسیم با کاهش تجمع بُر در برگ­ها، تنش‌های اکسایشی (اکسیداتیو) ناشی از سمیت بُر را در نهال‌های انگور بیدانۀ سفید تعدیل می­ کند.

 پروتئین محلول تنش بُر کشت هیدروپونیک نشت یونی ویژگی‌های بیوشیمیایی Ahmad, M., Hassen, F., Qadeer, U. & Aslam, A. (2011). Silicon application and drought tolerance mechanism of sorghum. African Journal Agriculture Research, 6(3), 594-607. AL-Aghabary, K., Zhujun, Z. & Qinhua, S. (2004). Influence of silicon supply on chlorophyll content, chlorophyll fluorescence, and antioxidative enzyme activities in tomato plants under salt stress. Plant Nutrition, 27, 2101-2115. Apostol, K. G. & Zwiazek, J. J. (2004). Boron and water uptake in jack pine (Pinus banksiana) seedlings. Environmental and Experimental of Botany, 51, 145- 153. Ardic, M., Sekmen, A. H., Tokur, S., Ozdemir, F. & Turkan, I. (2009). Antioxidant response of chickpea plants subjected to boron toxicity. Plant Biology, 11, 328-338. Ayvaz, M., Kemal Avci, M., Yamaner, C., Koyuncu, M., Guven, A. & Fagerstedt, K. (2013). Does excess boron affect the malondialdehyde levels of potato cultivars? EurAsian Journal of BioSciences, 7, 47-53. Balakhnina, T. & Borkowska, B. (2013). Effects of silicon on plant resistance to environmental stresses. International Agrophysics, 27,225-232. Bradford, M. M. (1976). Rapid and sensitive method for the quantitation of micrograms quantities of protein utilizing the principle of protein. Analytical Biochemistry, 72, 248-254. Cervilla, L. M., Blasco, B., Rìos, J. J., Romero, L. & Ruiz, J. M. (2007). Oxidative stress and antioxidants in tomato (Solanum lycopersicum) plants subjected to boron toxicity. Annals of Botany, 100, 747-756. Cervilla, L. M., Blasco, B., Rios, J. J., Rosales, M. A. & Sanchez-Rodriguez, E. (2012). Parameters symptomatic for boron toxicity in leaves of tomato plants. Journal of Botany, http://dx.doi.org/10.1155/2012/726206, 17 pages. Ding, Y. F., Liang, Y. C., Zhu, J. & Li, Z. J. (2007). Effects of silicon on plant growth, photosynthetic parameters and soluble sugar content in leaves of wheat under drought stress. Journal of Plant Nutrition and Fertilizer, 13(3), 471-478. El-Feky, S. S., El-Shintinawy, F. A. & Shaker, E. M. (2014). Role of cacl2 and salicylic acid on        metabolic activities and productivity of boron stressed barley (Hordeum vulgare L.). International Journal of Current Microbiology and Applied Scinces, 3(2), 368-380. Epstein, E. (1999). Silicon. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 50, 641-664. Eraslan, F., Inal, A., Gunes, A. & Alpaslan, M. (2007). Boron toxicity alters nitrite reductase activity, prolin accumulation, membrane permeability, and mineral constituents of tomato and pepper plants. Journal of Plant Nutrition, 30, 981-994. Eraslan, F., Inal, A., Pilbeam, D. J. & Gunes, A. (2008). Interactive effects of salicylic acid and silicon on oxidative damage and antioxidant activity in spinach (Spinacia oleracea L. CV. Matador) grown under boron toxicity and salinity. Plant Growth Regulation, 55, 207-219. Esmaeili, M. & Rahmani, M. (2012). Principles of proper nutrition grape vines. Agriculture Organization of Qazvin Province, 1-39. (in Farsi) Gunes, A., Inal, A., Alpaslan, M., Cicek, N., Eraslan, F. & Guzelordu, T. (2005). Effects of exogenously applied salicylic acid on the induction of multiple stress tolerance and mineral nutrition in maize (Zea mays L.). Archives of Agronomy and Soil Science, 51, 687-695. Gunes, A., Inala, A., Bagcia, E. G., Cobana, S. & Pilbeam, D. J. (2007). Silicon mediates changes to some physiological and enzymatic parameters symptomatic for oxidative stress in spinach (Spinacia oleracea L.) grown under B toxicity. Scientia Horticulture, 113, 113-119. Guntzer, F., Keller, C. & Meunier, J. D. (2012). Benefits of plant silicon for crops. Agronomy for Sustainable Development, 32, 201-213. Haghighi, M. & Pessarakli, M. (2013). Influence of silicon and nano-silicon on salinity tolerance of cherry tomatoes (Solanum lycopersicum L.) at early growth stage. Scientia Horticulture, 161, 111-117. Hajebi, A. H. & Heidari Sharif Abad, H. (2005). Investigation of the effect of drought on growth and nodulation of three species of clover. Pajouhesh and Sazandegi, 66, 13-22. Heath, R. L. & Packer, L. (1968). Photoperoxidation in Isolated Chloroplasts. Archives Biochemistry Biophysics, 125, 850-857. Herrera-Rodriguez, M. B., Gonzalez-Fontes, A., Rexach, J., Camacho- Cristobal, J. J., M. Maldonado, J. & Navarro- Gochicoa, M. T. (2010). Role of boron in vascular plants and response mechanisms to boron stresses. Plant Stress, 4(2), 115-122. Irigoyen, J. J., Emerich, D. W. & Sanchez-Diaz, M. (1992). Water stress induced changes in concentrations of proline and total soluble sugars in modulated alfalfa (Medicago sativa) plants. Plant Physiology, 84, 55-60. Karabal, E., Yucel, M. & Huseyin, A. O. (2003). Antioxidant responses of tolerant and sensitive barley cultivars to boron toxicity. Plant Science, 164, 925-933. Kaya, C., Tuna, A. L., Dikilitas, M., Ashraf, M., Koskeroglu, S. & Guneri, M. (2009). Supplementary phosphorus can alleviate boron toxicity in tomato. Scientia Horticulturae, 121, 284-288. Liamas, A., Ullrich, C. I. & Sanz, A.  (2000). Cadmium effects on transmembrance electrical potential difference, respiration and membrane permeability of rice (Oryza sativa) roots. Plant and Soil, 219, 21-28. Liang, Y. C., Sun, W., Zhu, Y. G. & Christie, P. (2007). Mechanisms of silicon mediated alleviation of abiotic stress in higher plants: a review. Environmental Pollution, 147, 422-428. Lutts, S., Kinet, J. M. & Bouharmont, J. (1996). NaCl-induced senescence in leaves of rice cultivar differing in salinity resistance. Annals of Botany, 78, 389-398. Ma, J. F. & Yamaji, N. (2006) Silicon uptake and accumulation in higher plants. Trends in Plant Science, 11, 392-397. Mittler, R., Vanderauwera, S., Gollery, M. & Breusegem, F. (2004). Reactive oxygen gene network of plants. Trends in Plant Science, 9(10), 490-498. Molassiotis, A., Sotiropoulos, T., Tanou, G., Diamantidis, G. & Therios, I. (2006). Boron induced oxidative damage and antioxidant and nucleolytic responses in shoot tips culture of the apple rootstock EM9 (Malus domestica Borkh). Environmental and Experimental Botany, 56, 54-62. Oraei, M., Tabatabaei, S. J., Fallahi, E. & Imani, A. & Seyyedlar fatemi, S.  (2012). The effects of boron stress on growth, physiological characteristics and the distribution of boron in scion-rootstock combinations of almond (Prunus dulcis Mill.). Journal of Horticultural Sciences, 26, 440-447. (in Farsi) Papadakis, E. I., Dimassi, K. N., Bosabalidis, A. M., Therios, I. N., Patakas, A. & Giannakoula, A. (2004). Boron toxicity in ‘Clementine’ mandarin plants grafted on two rootstocks. Plant Science, 166, 539- 547. Ranjbarani, E., Sarikhani, H., Wakana, A. & Bakhshi, D. (2011). Effect of salicylic acid on storage life and postharvest quality of grape (Vitis vinifera L. cv. Bidaneh Sefid). Journal of the Faculty of Agriculture Kyushu University, 56 (1), 263-269. Paquin, R. & Lechasseur, P. (1979). Observations sur une method de dosage de la proline libre dans les extraits de plants. Canadian Journal of Botany, 57, 1851-1854. Ranjan, R., Bohra, S. P. & Jeet, A. M. (2001). Book of plant senescence. Jodhpur, Agrobios New York. pp. 18-42. Romero-Aranda, M. R., Jurado, O. & Cuartero, J. (2006). Alleviates the deleterious salt effect on tomato plant growth by improving plant water status. Plant Physiology, 163, 847-855. Rostami, H. Tabatabai, S. J., Zare Nahandi, F. & Hajiloo, J. (2013). Concentrations of boron (B) on the growth and physiological characteristics of olives. Journal of Horticultural Science, 27, 26-18. (in Farsi) Sandalio, L. M., Dalurzo, H. C., Gomez, M., Romero-Puertas, M. C.  & Del Río, L. A. (2001). Cadmium- induced changes in the growth and oxidative metabolism of pea plants. Journal of Experimental Botany, 52 (364), 2115-2126. Seyyedlar Fatemi, L., Tabatabai, S. J., & Fallahi, A. (2009). Effect of silicon on growth and yield of strawberry under salt stress conditions. Journal of Horticultural Science (Agricultural Science and Technology), 23, 95-88. (in Farsi) Shariat, A., Osarea, M. H. & Zarea, A. (2010). Effects of cadmium on some physiological parameters in Eucalyptus occidentalis. Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources, Soil and Water Sciences. 53, 145-153. (in Farsi) Sheng, O., Song, S. W., Chen, Y. J., Peng, S. A. & Deng, X. X. (2008). Effects of exogenous B supply on growth. B accumulation and distribution of two navel orange cultivars. Trees, 23, 59-68. Shi, G., Cai, Q., Liu, C. & Wu, L. (2010). Silicon alleviates cadmium toxicity in peanut plants in relation to cadmium distribution and stimulation of antioxidative enzymes. Plant Growth Regulation, 61, 45-52. Shi, X. H., Zhang, C. C., Wang, H. & Zhang, F. S. (2005) Effect of Si on the distribution of Cd in rice seedlings. Plant and Soil, 272, 53-60. Soylemezoglu, G., Demir, K., Inal, A. & Gunes, A. (2009). Effect of silicon on antioxidant and stomatal response of two grapevine rootstock grown in boron toxic –salin soil. Scientia Horticulturae, 123, 240-246. Tabatabaei, S. J. (2009). Principles of Plant Mineral Nutrition. Kharazmi. Tabriz. Iran. (In Farsi) Turner, N. C. (1981). Further progress in crop water relations. Advances in Agronomy, 58, 293-338. Updhyaya, A., Sankhla, D., Davis, T. D., Sankhla, N. & Smidth, B. N. (1985). Effect of paclobutrazol on the activities of some enzymes of activated oxygen metabolism and lipid peroxidation in senescing soybean leaves. Journal of Plant Physiology, 121, 453-461. Verma, S. & Dubeym, R. S. (2001). Effect of cadmium on soluble sugars and enzymes of their metabolism in rice, Biologia Plantarum, 1, 117-123. Wang, J. Z., Tao, S. T., Qi, K. J., Wu, J. & Wu, H. Q. (2011). Changes in photosynthetic properties and antioxidative system of pear leaves to boron toxicity. African Journal of Biotecnology, 10, 19693-19700. Wolf, B. (1974). Improvement in the azomethine-H method for the determination of boron. Communication in Soil Science & Plant Analysis, 5, 39-44. Yermiyahu, U. & Ben-Gal, A. (2006). Boron toxicity in grapevine. Horticultural Science, 41(7), 1698-1703. Zhu, Z. J., Wei, G. Q., Li, J., Qian, Q. Q. & Yu, J. Q. (2004). Silicon alleviates salt stress and increases antioxidant enzymes activity in leaves of salt-stressed cucumber (Cucumis sativus L.). Journal Plant Science, 167, 527-533. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.139169.904 مقاله پژوهشی بررسی رشد و گلدهی برخی نمونه‌های بید‌مشک (Salix aegyptiaca L.) در شرایط آب‌ و ‌هوایی استان کردستان محمدی اسفندیار دانشجوی کارشناسی ارشد، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان رضایی نژاد عبدالحسین دانشیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان یوسفی بایزید استادیار، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان کردستان موسوی فرد صادق استادیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان 23 08 2017 48 2 403 412 11 01 2016 25 04 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63391.html

در این پژوهش، ویژگی­های رشد و گلدهی ده نمونۀ بانک ژنی (اکسسشن) بید­مشک (Salix aegyptiaca L.) موجود در کلکسیون ایستگاه تحقیقاتی کشاورزی کردستان در قالب طرح بلوک­های کامل تصادفی با سه تکرار ارزیابی شد. نتایج تجزیۀ واریانس داده­ها نشان داد، بین ویژگی­های ارتفاع درخت، قطر یقه، طول شاتون، نسبت طول به عرض شاتون، طول برگ، عرض برگ، نسبت طول به عرض برگ، سطح برگ و طول دمبرگ اختلاف معنی‌داری (01/0 P≤) وجود داشت. ویژگی­های زاویۀ شاخۀ اصلی با فرعی، طول شاخۀ یک‌ساله، طول در عرض شاتون نیز اختلاف معنی‌داری (05/0 P≤) با هم داشتند. مقایسۀ میانگین ویژگی­ها نیز گویای تفاوت معنی­دار بین اکسشن­ها بود. نتایج ضریب همبستگی نشان داد که بین سطح برگ با ویژگی­های مرتبط با گلدهی (طول شاتون، عرض شاتون، وزن تر و خشک شاتون) همبستگی مثبت و معنی­داری و بین ارتفاع درخت و ویژگی­های طول و وزن تر شاتون همبستگی منفی و معنی­داری وجود داشت. تجزیۀ خوشه‎ای صفات مورد بررسی، نمونه­های بیدمشک مورد بررسی را در سه خوشه گروه­بندی کرد. برای تعیین نمونه‎های برتر از تجزیه به مؤلفه‌های اصلی استفاده شد. بر پایۀ دو مؤلفۀ اول و دوم که درمجموع حدود 70 درصد از تنوع را توجیه کردند، نمودار دو بعدی (بای پلات) ترسیم و مشخص شد که نمونه‎های K2، K3 و K6 نسبت به نمونه‎های دیگر برتری محسوسی داشته و می‌توان با توجه به ویژگی‌های برتر آن­ها افزون بر کاشت در فضای سبز برای اصلاح ژنتیکی بیدمشک نیز استفاده شوند.

 بید‌مشک تجزیه به مؤلفه‌های اصلی تجزیۀ خوشه‌ای شاتون ضریب‌های همبستگی Aravanopoulos, F. A., Lin, D., Zsuffa, L. & Hubbes, M. (1998). Identification of selected willow (Salix L.) clones based on morphological, biochemical, and molecular data: a comparative analysis. 21th International Poplar Commission (IPC), Portland, Oregon, USA. (Abstract) Argus, G. W. (1997). Infrageneric classification of Salix (Salicaceae) in the new world. Systematic Botany Monographs, 1-121. Chapolagh, P. I., Jalili, S. G., Sonboli, A. & Zarafshar, M. (2012). Leaf, stomata and morphology of the species in Carpinus genus. Toxonomy and Biosystematics Journal, 4(1), 11-26. (in Farsi) Damyar, S., Hassani, D. & Parvaneh, T. (2013). Evaluation of some characteristics of native Red-Fleshed Apple genotypes of Iran. Seed and Plant Journal. 29(3), 483-503. (in Farsi) Daraby Fard, H., Bouzari, N. & Abbosi, V. (2012). Genetic diversity in some Plum (Prunus spp.) cultivars using morphological characteristics and molecular markers. Seed and Plant Journal, 28(4), 643-661. (in Farsi) Förster, N., Ulrichs, C., Zander, M., Kätzel, R. & Mewis, I. (2010). Factors influencing the variability of antioxidative phenolic glycosides in Salix species. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 58(14), 8205-8210. Harris, P. J. C., Pasiecznik, N. M., Smith, S. J., Billinaton, J. M. & Ramirez, L. (2003). Differentiation of Prosopis juliflora and P. pollida using foliar characters and ploidy. Forest Ecology and Management, 180, 153-164. Hend, B. T., Ghada, B., Mustapha Sana, B., Mohamed, M., Mokhtar, T. & Salhi-Hannachi, A. (2009). Genetic relatedness among Tunisian plum cultivars by random amplified polymorphic DNA analysis and evaluation of phenotypic characters. Scientia Horticulturae, 124, 440-446. Iketani, H., Manabe, T., Matsuta, M., Akihama, T. & Hayashi, T. (1998). Incongruence between RFLP of chloroplast DNA and morphological classification in East Asian Pear (Pyrus spp.) Genetic Resources and Crop Evolution, 45, 533-539. Jazireie, M. H. & Rostaghi, M. (2003). Forest of the Zagros. Tehran University Press. 64-71 Kauter, D., Lewandowski, I. & Claupein, W. (2003). Quantity and quality of harvestable biomass from Populus short rotation coppice for solid fuel use-a review of the physiological basis and management influences. Biomass and Bioenergy, 24(6), 411-427. Mir Haidar, H. (1993). Plant sciences. Nashr e Farhang Eslami (Tehran). Mosavei, S. S., Houshmand, S., Mohammadi, SH.  & Khodambashi, M. (2010). Chromosomal localization of the genes controlling quantitative traits of drought resistance in wheat using substitution lines. Electronic Journal of Crop Product, 3(2), 97-114. (in Farsi) Sabbeti, H. (1976). Forests, trees and shrubs of Iran. Organization Research and education of Agriculture and Natural resources Publishers. 663-681 Sattarian, A., Zarafshar, M. & Sustani, F. B. (2011). Leaf morphological variability between natural populations of Quercus castaneifolia and Q. macronthera in Caspian forest. Toxonomy and Biosystematics Journal, 3(6), 25-34. (in Farsi) Sestras, R., Mihai, B. O. T. U., Mitre, V., Sestras, A. & Smaranda, R. M. (2007). Comparative study on the response of several plum cultivars in central Transylvania conditions, Romania. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 35(2), 69. Skvortsov, A. K. (1969). Salicaceae. Salix. In K.H. Rechinger. Flora iranica 65: 12. Akademische Druck, Graz-Austria. Steven, J. B., Carina, K. A. & Drew, R. (1998). Phylogenetic analysis yields insights into genetic complexity in Salix. In: Proceedings of 21st International Poplar Commission (IPC), Portland, Oregon, USA. Stolarski, M. J., Szczukowski, S., Tworkowski, J. & Klasa, A. (2011). Willow biomass production under conditions of low-input agriculture on marginal soils. Forest Ecology and Management, 262(8), 1558-1566. Sugier, D., Sugier, P., Pawełek, M. & Gawlik-Dziki, U. (2011). Salix myrsinifolia Salisb. as a source of phenolic glycosides: distribution and characteristic of habitat conditions in the mid-eastern Poland. Acta Scientiarum Polonorum, Hortorum Cultus, 10(3), 75-88. Sulima, P., Przyborowski, J. A. & Wiwart, M. (2006). Willow bark-herbal raw material harvested from plants cultivated on arable lands. Herba Polonica, 4(52), 18-25. Teresa, C. (1998). A willow breeding program for sawing and paper industries. 21th International Poplar Commission (IPC), Portland, Oregon, USA. Yousefi, B. (2009). Final report of project/research: Collecting and identification of Willows (Salix spp.) accessions of Kurdistan and collection establishment. Research Institute of Forest and Rangelands. Yousefi, B. (2013). Collection, identification, morphological and phonological evaluation of Willows accessions at Kurdistan province of Iran. Iranian Journal of Forest and Poplar Research, 21(1), 184-202.(in Farsi) Yousefzadeh, H., Tabari, M., Hossein Zadeh, A., Asadi, M., Sattarian, A. & Zarea, H. (2010). Leaf morphological variability of Tilia spp In Hircani forest. Taxonomy and Biosystematics Journal, 2(2), 11-24. (in Farsi) _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.202399.961 مقاله پژوهشی مقایسۀ ویژگی‌های بیوشیمیایی و کیفی میوۀ برخی نژادگان‌های ازگیل ژاپنی (Eriobotrya japonica L.) گرگان رحیم خانی رخساره دانشجوی سابق کارشناسی‌ارشد، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران وارسته فریال استادیار، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران سیفی اسماعیل دانشیار، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران 23 08 2017 48 2 413 421 06 03 2016 26 07 2016 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63397.html

ازگیل ژاپنی با نام علمی L. ‌Eriobotrya japonica به دلیل داشتن مقادیر بالای ترکیب‌های فنولی و پاداکسندگی (آنتی‌اکسیدانی) خاصیت ضد‌ سرطانی و ضدالتهابی داشته و در صنایع غذایی، پزشکی و دارویی کاربرد فراوان دارد. به‌منظور بررسی صفات کیفی میوه، بیست نژادگان (ژنوتیپ) ازگیل ژاپنی از مناطق مختلف شهر گرگان در استان گلستان انتخاب شدند. میوه­ها در زمان رسیدن کامل در بهار سال 1393 گرد­آوری و ویژگی‌های بیوشیمیایی و کیفی میوۀ آن‌ها ارزیابی شد. مقایسۀ میانگین­ها نشان داد، میزان فنول کل نژادگان‌ها بین 55/316- 95/131 میکروگرم اسیدگالیک بر گرم وزن تر، میزان فلاونوئید کل بین 91/87- 45/3 میکروگرم بر گرم وزن تر کوئرستین و ظرفیت پاداکسندگی بین 81/76- 05/11 درصد، میزان کاروتنوئید کل پوست میوه بین 39/18- 64/3 و کاروتنوئید کل گوشت میوه بین 08/5- 24/0 میکروگرم بر گرم وزن تر متغیر بود. بنابراین میزان کاروتنوئید کل گوشت میوه کمتر از پوست میوه بود. نژادگان 5 بیشترین L* و b*را داشت. نتایج نشان داد، میزان گلوکز بین 41/136- 86/41، فروکتوز 26/51- 04/16 و ساکارز 63/0- 07/0 میلی‌گرم در 100 گرم وزن تر متغیر بود. افزون بر این نژادگان‌های مورد بررسی از نوع گوشت سفید، و قند غالب در آن‌ها گلوکز بود. به‌طورکلی نژادگان 5، 14 و 9 به ترتیب بیشترین میزان فنول، فلاونوئید و ظرفیت پاداکسندگی را داشتند. در نهایت نتایجبه‌دست‌آمده از این تحقیق بیانگر بالا بودن میزان متابولیت­های ثانویه در میوۀ ازگیل ژاپنی است بنابراین این میوه می­تواند در صنایع غذایی و دارویی بیشتر مورد توجه قرار گیرد.

 ازگیل ژاپنی صنایع غذایی ظرفیت پاداکسندگی فلاونوئید فنول کل کاروتنوئید Amoros, A., Zapata, P., Pretel, M. T., Botella, M. A. & Serrano, M. (2003). Physico- chemical and physiological changes during fruit development and ripening of five loquat (Eriobotrya japonica L.) cultivars. Food Science and Technology International, 9(1), 43-49. Ashournejad, M & Ghasemnezhad, M. (2012). Effects of cellophane-film packaging and cold storage on the keeping quality and storage life of loquat fruit (Eriobotrya japonica L.). Iranian Journal of Nutrition Sciences and Food Technology, 7(2), 95- 102. (In Farsi) Ashwell, G. (1957). Methods in enzymology; Eds. Colowick, SP and Kaplan NO, vol. 3. Academic Press, Inc., New York, 75. Baljinder, S., Seema, G., Dharmendra, K., Vikas, G. & Parveen, B. (2010). Pharmacological potential of Eriobotrya japonica: an overview. International Research Journal of Pharmacy, 1, 95-99. Barnes, J. D., Balaguer, L., Manrique, E., Elvira, S. & Davison, A. W. (1992). A reappraisal of the use of DMSO for the extraction and determination of chlorophyll 'a' and 'b' in lichens and higher plants. Environmental and Experimental Botany, 32(2), 85-90. Cao, Sh., Yang, Zh. & Zheng, Y. (2013). Sugar metabolism in relation to chilling tolerance of loquat fruit. Food Chemistry, 136, 139-143. Cran, J.H. & Calderia, M.L. (2013). Loquat growing the Florida home landscape. IFAS extension. University of Florida. Ding, C. K., Chachin, K., Ueda, Y., Imahori, Y. & Wang, C. (2001). Metabolism of phenolic compounds during loquat fruit development. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 49, 2883-2888. Ebrahimzade, M.A., Pourmorad, F. & Hafezi, S. (2008). Antioxidant activities of Iranian corn silk. Turkish Journal of Biology, 32, 43-49. Ercisli, S., Gozlekci, S., Sengul, M., Hegedus, A. & Tepe, S. (2012). Some physiochemical characteristics, bioactive content and antioxidant capacity of loquat (Eriobotrya japonica L.) fruits from Turkey. Scientia Horticulturae, 148, 185-189. Farahnaky, A., Askari, H. & Mesbahi, G. H. (2009). The use of digital imaging for evaluating color changes of rutab during drying in a cabinet drier. Iranian Journal of Food Science and Technology, 6(2), 43- 52. (in Farsi)  Fu, X., Kong, W., Peng, G., Zhou, J., Azam, M., Changjie, X., Grierson, D. & Kongsong, Ch. (2012). Plastid structure and carotenogenic gene expression in red- and white fleshed loquat (Eriobotrya japonica L.) fruits. Experimental Botany, 63, 341-354. Ghaderi Ghahfarokhi, M., Alami, M., Sadeghi Mahoonak, A., Ghorbani, M. & Azizi, M. (2011). Chemical composition and effect of thermal processing methods on polyphenol content of two Iranian acorn varieties. Journal of Food Research, 21(4), 421- 430. (In Farsi)  Ghasemnezhad, M., Ashour Nezhad, M. & Gerayloo, S. (2011). Change in postharvest quality of Loquat (Eriobotrya japonica L.) fruit influence by chitosan. Horticulture, Environment and Biotechnology, 52(1), 40-45. Goulas, V., Minas, I.S., Kourdoulas, P.M., Vicente, A.R. & Manganaris, G.A. (2014). Phytochemical content, antioxidants and cell wall metabolism of two loquat (Eriobotrya japonica L.) cultivars under different storage regimes. Food Chemistry, 155, 227-234. Handel, E. V. (1968). Direct microdetermination of sucrose. Analytical Biochemistry. 22, 280-283. Hasegawa, P. N., Faria, A. F., Mercadante, A. Z., Chagas, E. A., Pio, R., Lajolo, F. M., Cordenusi, B. R. & Purgatto, E. (2010). Chemical composition of loquat cultivars planted in Brazil. Food Science and Technology, 30(2), 552-559. Hong, Y., Lin, S., Jiang, Y. & Ashraf, M. (2008). Variation in contents of total phenolics and flavonoids and antioxidant activities in the leaves of 11 Eriobotrya species. Plant Foods for Human Nutrition, 63, 200-204. Lin, S., Sharpe, R. H. & Janick, J. (1999). Loquat: botany and horticulture. Horticultural Reviews, 23, 233-276. Mesejo, C., Reig, C., Martinez-Fuentes, A. & Agusti, M. (2010). Parthenocarpic fruit production in loquat (Eriobotrya japonica L.) by using gibberellic acid. Scientia Horticulturae, 126(1), 37-41. Miller, G. L. (1959). Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar. Analytical Chemistry, 31, 426-428. Omokolo, D. N., Tsala, N. & Djogoue, P. F. (1996). Change in carbohydrate, amino acid and phenol content in cocoa pods from three clones after infection with Phytophthora megakarya Bra and Grif. Annals of Botany, 77(2), 153-158. Pareek, S., Benkeblia, N., Janick, J., Cao, Sh. & Yahia, E. M. (2014). Postharvest physiology and technology of loquat (Eriobotrya japonica L.) fruit. Journal of the Science of Food and Agriculture. 94(8), 1495-1504. Pinillos, V., Hueso, J., Marcon Filho, J. L. & Cuevas, J. (2011) Change in fruit maturity indices along the harvest season in ' Algerie ' loquat. Scientia Horticulturae, 129, 769-776. Rahemi, M. (2005). Postharvest, An introduction to the physiology & handling of fruit, vegetables & ornamentals. (5th ed). Shiraz University. 437pages. (iIn Farsi) Rahimkhani, R., Varasteh, F. & Seifi, E. (2016). Evaluation of genetic diversity in some loquat genotypes based on pomological characteristics in Golestan province. Journal of Plant Production Research, 23(1), 157-177. (in Farsi) Salehi, F. & Kashaninejad, M. (2014). Effect of different drying methods on rheological and textural properties of balangu seed gum. Drying Technology, 32, 720-727. Shao, X., Zhu, Y., Cao, Sh., Wang, H. & Song, Y. (2013). Soluble sugar content and metabolism as related to the heat- induced chilling tolerance of Loquat fruit during cold storage. Food and Bioprocess Technology, 6, 3490-3498. Shariatifar, N., Kamkar, A., Shams Ardekani, M., Misaghi, A., Jamshidi, A. H. & Jahed Khaniki, G. H. (2012). Quantitative and qualitative study of phenolic compounds and antioxidant activity of plant pulicaria gnaphalodes. Ofegh-e-Danesh; Journal of Gonabad University of Medical Sciences, 17(4), 35- 41. (in Farsi) Tian, S., Qin, G. & Li, B. (2011). Loquat (Eriobotrya japonica L.). P 424-444, In: Yahia, E.M (ed), Postharvest biology and technology of tropical and subtropical fruits, Vol. 3, Woodhead publishing, UK. Toker, R., Golukcu, M., Tokgoz, H. & Tepe, S. (2013). Organic acids and sugar compositions of some loquat cultivars (Eriobotrya japonica L.) grown in Turkey. Journal of Agricultural Science, 19, 121-128. Uzun, A., Sedayo, U. & Turkay, C. (2012). Fruit quality parameters and molecular characterization of some loquat accessions. Pakistan Journal of Botany, 44, 209-213. Wrolstad, R. E., Durst, R. W. & Lee, J. (2005). Tracking colour and pigment changes in anthocyanin products. Trends in Food Science and Technology, 16, 423-428. Xu, H. X. & Chen, J. W. (2011). Commercial quality, major bioactive compound content and antioxidant capacity of 12 cultivars of loquat (Eriobotrya japonica L.) fruits. Journal Science of Food and Agriculture, 91, 1057-1063. Zhang, W., Zhao, X., Sun, Ch., Li, X. & Chen, K. (2015). Phenolic composition from different loquat (Eriobotrya japonica L.) cultivars grown in China and their antioxidant properties. Molecules, 20, 542-555. Zhou, C. H., Xu, C. J., Sun, C. D., Li, X. & Chen, K. S. (2007). Carotenoids in white- and red-fleshed loquat fruits. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 55, 7822-7830. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.206858.1011 فضای سبز و طراحی منظر تأثیر مقادیر مختلف ابر جاذب و ورمی‌کمپوست بر ویژگی‌های کمی و کیفی گازانیا (Gazania hybrida) در شرایط بام سبز فتحی بنفشه دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، ‌ایران ریزی سعید استادیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، ‌ایران روحی وحید استادیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، ‌ایران قبادی نیا مهدی استادیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، ‌ایران 23 08 2017 48 2 423 429 24 05 2016 29 01 2017 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63398.html

با توجه به شرایط اقلیمی کشور ایران و مشکل کم­آبی و کمبود سرانۀ فضای سبز، بهره­گیری از شیوه­های مناسب به‌منظور کاهش مصرف آب در بام­های سبز ضرورت دارد. به این منظور آزمایشی به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کامل تصادفی در سه تکرار در سال 1393 بر بام بخش تأسیسات گلخانه­های پژوهشی دانشگاه شهرکرد با استفاده از گیاه گازانیا به اجرا درآمد. عامل اول شامل ورمی­کمپوست (حجم/حجم) در سه سطح 0، 4درصد و 8درصد و عامل دوم در چهار سطح ابرجاذب (هیدروژل) شامل 0، 250، 500 و 1000 گرم بر مترمکعب طراحی شد. آبیاری بر پایۀ نیاز آبی بستر شاهد در نظر گرفته شد. پس از گذشت چهار ماه از کاشت نشاها، اندازه­گیری قطر گل و شمارش شمار گل­ها آغاز شد. شاخص­های دیگری مانند میزان آب مصرفی، وزن تر و خشک اندام‌های هوایی و وزن تر و خشک ریشه اندازه­گیری شدند و نتایج نشان داد، تیمارهای دارای ورمی­کمپوست و هیدروژل افزون بر مصرف کمتر آب، موجب بهبود برخی ویژگی­های رویشی و زایشی گیاه مانند وزن تر اندام‌های هوایی، قطر گل و شمار گل شده است.

 میزان آب مصرفی وزن تر و خشک هیدروژل Ahmad Abadi, Z., Ghajar-Sepanlou, M. & Rahimi-Alashti, S. (2012). Effect of vermicompost on physical and chemical properties of soil. Journal of Water and Soil Science, 15(58), 125-137. Alizadeh A. (2009). Soil and plant water relations. Imam Reza University Publications. 483 pp. (in Farsi) Atiyeh, R. M., Lee, S., Edwards, C. A., Arancon, N. Q. & Metzger, J. D. (2002). The influence of humic acids derived from earthworms-processed organic wastes on plant growth. Bioresource Technology, 84, 7-14. Bahamir, S. (2014). Effect of different levels of vermicomposting and ferrous feeding on vegetative and reproductive traits of strawberry from Gaviota Species. MSc. Thesis on Architectural Science, Shahrekord University, Iran. (in Farsi) Bakhshi, R. & Khorsandi-Nikou, M. (2011). Providing some strategies for developing green roof in Iran based on sustainable development goals approach. 6th ultra-regional conference on new developments in science and engineering. May 14. Ayandegan Institute of Higher Education, Tonekabun, Iran. (in Farsi) Beatie, D. J. & Berghage, R. (2004). Green roof media characteristics: The basics. In: Proceedings of 2nd North American Green Roof Construction. Greening rooftops for sustainable communities. Portland. Cardinal Group, Toronto, pp. 411-416. Behbahani, M. R., Asadzadeh, A. & Jebelli, S. J. (2005). Assessing the effect of superabsorbent hydrogels and deficit irrigation treatments on maintenance of nutrients in hydroponic media. In: Proceedings of the 3rd training course and professional conference on superabsorbent hydrogels applications. Iran Polymer and Petrochemical Institute. Tehran, Iran, pp34-51. (in Farsi) Borji, Sh., Khodadadi, M. & Mobasser, H. R. (2014). Effect of different levels of vermicompost on growth characteristics and flowering geranium. Journal of Novel Applied Science, 3(30), 307-309. El-Hady, O. A. & Wanas, S. A. (2006). Water and fertilizer use efficiency by cucumber grown under stress on sandy soil treated with acryl amide hydro gels. Journal of Applied Science Research, 2(12), 1293-1297.‏ Farrell, C., Ang, X. Q. & Rayner, J. P. (2013). Water- retention additives increase plant available water in green roof substrates. Ecological Engineering, 52, 112-118. Friedrich, C. R. (2005). Principles for selecting the proper component for a green roof growing media. In: Proceedings of 3rd North Amer. Green Roof Conf.: Greening rooftops for sustainable communities. Washington D.C., Cardinal Group, Toronto, p. 262-273. Johnson, M. S. & Leah, R. L. (1990). Effects of superabsorbent polyacrylamids on efficiency of water use by crop seedling. Journal of the Science of Food and Agriculture, 52, 431-434. Kianian, M. K. & Cheshmberah, F. (2012). Investigation of superabsorbent role at rainwater absorption in arid and semi lands soils with the aim of sustainable development. In: Proceedings of the 1st National Conference on Policies toward Sustainable Development, Tehran. (in Farsi) Mahfouz, S. A. & Sharaf-Eldin, M. A. (2007). Effect of mineral V.S. biofertilizer on growth, yield and essential oil content of fennel (Foeniculum vulgare Mill.). International Agrophysics, 21(4), 361-366. Orzolek, M. D. (1993). Use of hydrophilic polymers in horticulture. HortTechnology, 3(1), 41-44. Razavian, M. T., Ghafuripur, A. & Razavian, M. (2010). Green Roofs. Geographical Journal of Environmental Logistics, 10, 137-160. (in Farsi) Ouchi, S., Nishikawa, A. & Kamada, E. (1990). Soil improving effect of a super–water absorbent polymer (part2) evaporation, leaching of salts and growth of vegetables. Japanese Society of Soil Science and Plant Nutrition, 61(6), 606-613. Revenga, C. (2000). Will there be enough water? In: Pilot Analysis of Global Ecosystems: Freshwater Systems, October, University of Michigan, USA, pp. 1-6. Roy Aunachalam, K., Kumar, D. B. & Arunachalam, A. (2010). Effect of organic amendments of soil on growth and productivity of three common crops viz. Zea mays. Phaseolus vulgaris and Abelmoschus esculentus. Applied Soil Ecology, 45, 78-84. Saha, S., Mina, B. L., Gopinath, K. L., Kundu, S. & Gupta, H. S. (2008). Relative changes in phosphatase activities as influenced by source and application rate of organic compost in field crops. Bioresource Technology, 99(6), 1750-1757. Sanei-shariatpanahi, M. & Babazade Darjazy, B. (2009). Breeding, maintenance and propagation of outdoor plants. Sepehr Publications. (in Farsi) Savi, T., Marin, M., Boldrin, D., Incerti, G., Andri, S. & Nardini, A. (2014). Green roofs for a drier world: Effect of hydrogel amendment on substrate and plant water status. Science of the Total Environment, 490, 467-476. Shadanpour, F., Mohammadi Torkashvand, A. & Hashemi-Majd, K. (2011). The effect of cow manure vermicompost as the planting medium on the growth of Marigold. Annals of Biological Research, 2(6), 109-115. Soler-Rovira, J., Usano-Martinez, M.C., Fuentez-Priet, I., Arroyo-Sanz, J. M. & Gonzalez-Torres, F. (2006). Retention and availability of different soils amended with superabsorbent hydrogels. In: Proceedings of the International Symposium SOPHYWA (Soil Physics and Rural Water Management), 28–29 Sep., Vienna, Austria, pp 7-10. Tabrizi, F. (2013). Green Roofs. 2013. Series of Journals of Isfahan Parks Organization, 42, 34-36. (in Farsi) Tomati, U., Grappelli, A. & Galli, E. (1995). The hormone-like effect of earthworm casts on plant growth. Biology Fertility Soils, 5, 288-294. Zangooie Nasab, Sh., Emami, H., Astaraie, A. & Yari, A. (2013). Effects of stockosorb hydrogel and irrigation intervals on some soil physical properties and growth of haloxylon seedling. Soil Management and Sustainable Production, 3(1), 167. (in Farsi) _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.221966.1140 علوم گیاهان زینتی ارزیابی مورفوفیزیولوژیکی چمن آفریقایی تحت تأثیر اسید سالیسیلیک در شرایط تنش کم‌آبی طاهری سهیلا دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه زنجان ارغوانی مسعود استادیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه زنجان مرتضوی سید نجم الدین استادیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه زنجان 23 08 2017 48 2 431 442 10 12 2016 26 02 2017 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63399.html

اسید سالیسیلیک می­تواند با تغییر در ویژگی­های فیزیولوژیکی و ریخت‌شناختی (مورفولوژیکی) گیاه سبب بهبود تحمل به تنش در گیاهان شود. این پژوهش به‌منظور بررسی پاسخ‌های مورفوفیزیولوژیکی چمن آفریقایی (Cynodon dactylon (L.) Pers) به تنش کم‌آبی و کاربرد اسید سالیسیلیک در سال 1394 در گلخانۀ تحقیقاتی گروه علوم باغبانی دانشگاه زنجان انجام شد. سه سطح آب قابل دسترس خاک (40، 70 و 100 درصد) و اسید سالیسیلیک (0، 1 و 2 میلی مولار) به‌صورت یک آزمایش فاکتوریل در قالب طرح کامل تصادفی در چهار تکرار اعمال شدند. نتایج نشان داد، تنش کم‌آبی (40 درصد آب قابل دسترس)محتوای نسبی آب برگ و رشد شاخساره را کاهش داد. درصورتی‌کهرشد ریشه، نسبت ریشه به شاخساره، ظرفیت پاداکسندگی (آنتی‌اکسیدانی)، نشت یونی، پرولین، فنل کل و میزانسبزینۀ (کلروفیل) برگ‌ها با کاهش آب قابل دسترس خاک افزایش یافت. کاربرداسید سالیسیلیک از راه افزایشظرفیت پاداکسندگی، میزان پرولین و سبزینۀ برگ‌ها و همچنین کاهش نشت یونی، تأثیر منفی تنش کم‌آبی را بهبود بخشید و این تأثیر در غلظت 2 میلی­مولار واضح‌تر بود.

 آب قابل دسترس پرولین رشد شاخساره سبزینه فنل کل Alvarz, S., Navarro, A., Banon, S. & Sanchez-Blanco, M. J. (2009). Regulated deficit irrigation in potted Dianthus plants Effects of severe and moderate water stress on growth and physiological responses. Scientia Horticulture, 122, 579-585. Arnon, D. I. (1949). Copper enzymes in isolated chloroplasts. Polyphenol oxidases in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24(5), 1-15. Arghavani, M. (2010). A physiological and morphological study on Lollium perenne L. and Poa pratensis L. as affected by trinexapac-ethyl, mowing management and nitrogen source under salt stress conditions. Ph.D. Thesis.. Faculty of Agriculture Tehran University, Iran. Atkinson, C. H. J., Poloicarpo, M., Webster, A. D. & Kuden, A. M. (1999). Drought tolerance of apple rootstocks: Production and partitioning of dry matter. Journal Plant and Soil, 206, 223-235. Avancini, G., Abreu, I. N., Saldana, M. D. A., Mohamed, R. S. & Mazzafera, P. (2003). Induction of pilocarpine formation in jaborandi leaves by salicylic acid and methylasmonate. Phytochemistry, 63, 171-175. Bakhshi, D. & Arakawa, O. (2006). Induction of phenolic compounds biosynthesis with light irradiation in the flesh of red and yellow apples. Journal of Applied Horticulture, 8, 101-104. Barker, D. J., Sullivan, C. Y. & Moser, L. E. (1993). Water deficit effects on osmotic potential, cell wall elasticity and praline in five forage grasses. Agronomy Journal, 85, 270-275. Barrs, H. D. & Weatherley, P. E. (1962). A re-examination of the relative turgidity technique for the estimating of water deficits in leaves. Australian Journal of Biological Sciences, 15, 413-428. Bates, L., Waldern, R. P. & Teare, D. (1973). Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and Soil, 39(1), 205-207. Bhatt, R. M. & Srinivasa-Rao, N. K. (2005). Influence of pod load on response of okra to water stress. Journal Plant Physiology, 10, 54-59. Borsanio, F., Balpuestsa, V. & Botella, M. A. (2001). Evidence for a role of salicylic acid in the oxidative damage generated by NaCl and osmotic stress in Arabidopsis seedling. Plant Physiology, 126, 1024-1030. Burguieres, E., McCu, P., Kwon, Y. I. & Shetty, K., (2007). Effect of vitamin C and folic acid on seed vigour respondent phenolic-linked antioxidant activity. Bioresource Technology, 98(7), 1393-1404. Eberhardt, M. V., Lee, C. Y. & Liu, R. H. (2000). Antioxidant activity of fresh apples. Nature, 405, 903-904. El-Tayeb, M. A. (2005). Response of barley grain to the interactive effect of salinity and salicylic acid. Plant Growth Regul, 42, 215-224. FAO. (2000). Deficit irrigation practices. Food and Agriculture Organization (FAO). Rome. Italy. Water Reports, 22, 102. Fu, J., Fry, J. & Huang, B. (2004). Minimum water requirements of four turfgrass in the transition zone. Horticulture Science, 39(7), 1740-1744. Guo, Z., Ou, W., Lu, S. & Zhong, Q. (2006). Differential responses of antioxidative system to chilling and drought in four rice cultivars differing in sensitivity. Plant Physiology Biochemistry, 44, 828-836. Hatamzadeh, A., Molaahmad Nalousi, A., Ghasemnezhad, M. & Biglouei, M. H. (2015). The potential of nitric oxide for reducing oxidative damage induced by drought stress in two turfgrass species, creeping bentgrass and tall fescue. Grass and Forage Science, 70(3), 538-548. Hayat, S., Fariduddin, Q., Ali, B. & Ahmad, A. (2005). Effect of salicylic acid on growth and enzyme activities of wheat seedlings. Acta Agronomica Hungarica. 53,433-437. Huang, B., Duncan, R. R. & Carrow, R. N. (1997). Drought resistance mechanisms of seven warm season Turfgrasses under surface soil drying: II. Root aspect. Crop Science, 37, 1863-1869. Irrigoyen, J. H., Emerich, D. W. & Sanchez Diaz, M. (1992). Water stress induced changes in concentration of proline and total soluble sugars in nodulated alfalfa (Medicago sative) plants. Journal Physiologia Plantarum, 84, 55-66. Jinrong, L., Xiaorong, X., Jianxiong, D., Jixiong, S. & Xiaomin, B. (2008). Effects of simultaneous drought and heat stress on Kentucky bluegrass. Scientia Horticculturae, 115, 190-195. Kafi, M. & Mahdavi Damghani, A. (2007). Resistance mechanisms of plants to environmental stresses (Translation). University of Mashhad. KaviKishor, P. B. & Sreenivasulu, N. (2014). Is proline accumulation per se correlated with stress tolerance or is proline homeostasis a more critical issue. Plant, Cell and Environment, 37, 300-311. Pessarakli, M. (1999). Handbook of Plant and Crop Stress, Marcel Dekker, Inc., New York. Mansour, M. M. F. (2000). Nitrogen containing compounds and adaptation of plants to salinity stress. Plant Biology, 43, 491-500. Mehrabani, B., Nazeri, S. & Piri, Kh. (2012). Considering total phenol content in plants Stachys (Stachys lavandulifolia Vahi) via callus culture and the possibility of increasing the use of stimulants. Journal of Agricultural biotechnology, 2, 77-88. (in Farsi) Mehrabiyan Moghaddam, N., Arvin, M. J., Khajavinezhad, Gh. & Maghsodi, K. (2011). Effect of Salicylic Acid on growth and forage and grain yield of Maize under drought stress in field conditions. Seed and Plant Production Journal, 27(1), 41-55. (in Farsi) Movahhedi Dehnavi, M., Modarres Sanavi, A. M., Soroush-Zade, A. & Jalali, M. (2004). Changes of proline, total soluble sugars, chlorophyll (SPAD) content and chlorophyll fluorescence in safflower varieties under drought stress and foliar application of zinc and maganese. Biaban, 9(1), 93-110. (in Farsi) Mueller, M. E., Gruenthal, M. & Olson, W. L. (1993). Gabapentin for relief of upper motor neuron symptoms in multiple sclerosis. Archives Physical Medicine Rehabilitation, 78, 521-4. Naghizadeh, M. & gholami, M. (2012). Effect of seed priming with salicylic acid on yield and yield components under drought stress conditions.Agroecology Journal, 6(1), 162-170. (in Farsi) Rahman, M. U., Gul, S. & Ahmad, I. (2004). Effects of water stress on growth and photosynthetic pigments of corn (Zea mayz L.) cultivars. International Journal Agriculture Biology, 4, 652-655. Sakihama, Y., Cohen, M., Grace, S. & Yamasaki, H. (2002). Plant phenolic antioxidant and prooxidant activities: phenolic-induced oxidative damage mediated by metals in plant. Toxicology, 177, 67-80. Sandoval-Yepiz, M. R. (2004). Reguladores de crecimiento XXIII: Efecto del acido salicilicoen la biomasa Del cempazchitl (Tagetes erecta). Tesis de Licenciatura. Instituto Tecnolgico Agropecuario, Conkal, Yucatan, México. Sawada. H., Shim, I. S. & Usui, K. (2006). Induction of benzoic acid 2-hydroxylase and salicylic acid biosynthesis-modulation by salt stress in rice seedling. Plant Science, 171, 263-270. Seevers, P. M. & Daly, J. M. (1970). Studies on wheat stem rust resistance control at sr6 locus. 1- The role of phenolic compounds. Phytopathology, 6, 1322-1328. Senaratna, T., Touchell, D., Bunn, E. & Dixon, K. (2000). Acetyl salicylic acid (Aspirin) and salicylic acid induce multiple stress tolerance in bean and tomato plants. Plant Growth Regulation, 30, 157-161. Shakirova, F. M., Sakhabutdinova, A. R., Bezrukova, M. V. & Fatkhutdinova, D. R. (2003). Changes In the hormonal status of wheat seedling induced by salicylic acid and salinity. Plant Science, 164, 317-322. Singh, B. & Usha, K. (2003). Salicylic acid induced physiological and biochemical changes in wheat seedlings under water stress. Plant Growth Regulation, 39, 141-137. Sullivan, C. Y. & Ross, W. M. (1979). Selection for drought and heat resistance in grain sorghum. In: H. Mussel & R. C Staoles (eds), Stress Physiology in Crop Plants. (pp.263-281.). John Wiley and Sons, New York. Taiz, L. & Zeiger, E. (2006). Plant Physiology. (4th Ed.). Sinauer Association, Inc, Publishers Sunderland, Massachusetts, 764 pages. Tehranifar, A., Salahvarzi, Y., Gazanchian, A. & Aroei, H. (2009). Considering responses of native and imported grasses in how to avoid drought stress. Journal of Horticultural Science, 23(1), 1-9. (in Farsi) Viera, H. J., Bergamaschi, H., Angelocci, L. R. & Libardi, P. L. (1991). Performance of two bean cultivars under two water availability regimes. II. Stomatal resistance to vapour diffusion, transpiration flux density and water potential in the plant. Pesquisa Agropecuària Brasileira, 9, 1035-1045. _||_
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2017.218893.1113 علوم گیاهان زینتی تأثیر ترکیب‌های طیف‌های آبی و قرمز و شدت نور بر رشد رویشی نشای اطلسی رشیدی آزاده دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکدۀ کشاورزی، پردیس بین‌الملل، دانشگاه فردوسی مشهد تهرانی فر علی استاد، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد نعمتی حسین استادیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد 23 08 2017 48 2 443 446 02 01 2017 15 05 2017 Copyright © 2017, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2017 https://ijhs.ut.ac.ir/article_63400.html

به‌منظور بررسی تأثیر کیفیت و شدت نور بر ویژگی‌های رویشی نشای اطلسی (Petunia × hybrida 'Super cascade Blue')، آزمایشی به‌صورت فاکتوریل بر پایۀ طرح کامل تصادفی با سه تکرار انجام پذیرفت و نشای این گیاه به مدت چهار هفته تحت تأثیر دو سطح از شدت نور شامل μmol.m-2.s-165 و μmol.m-2.s-140 و نسبت‌های نوری 0درصد آبی: 100 درصد قرمز، 15 درصد آبی: 85 درصد قرمز، 30 درصد آبی: 70 درصد قرمز و نور فلورسنت قرار گرفتند. نتایج بیانگر بیشترین وزن‌های تر و خشک برگسار و ریشه، سطح برگ، قطر ساقه با کاربرد نسبت نوری 15 درصد آبی: 85 درصد قرمز با شدت μmol.m-2.s-165 بود. همچنین نتایج نشان داد، امکان جبران سطح شدت پایین‌تر نور با کاربرد نسبت خاص نور وجود دارد زیرا صفات مورد بررسی با کاربرد نسبت نوری 15 درصد آبی: 85 درصد قرمز با شدت μmol.m-2.s-140در مقایسه با ترکیب‌های تیماری 0 درصد آبی: 100 درصد قرمز، 30 درصدآبی : 70 درصد قرمز و نور فلورسنت با شدت μmol.m-2.s-165 با اختلافی معنی‌دار برتر بود.

 ال.ای.دی سبزینه کارتنوئید نورساخت نور مصنوعی Ahmad, M. & Cashmore, A. R. (1997). The blue-light receptor cryptochrome 1 shows functional dependence on phytochrome A of ohytochrome B in Arabidopsis thaliana. The Plant Journal, 11, 421-427. Ahmad, M., Grancher, N., Heil, M., Black, R. C., Giovani, B., Galland, P. & Lardemer, D. (2002). Action spectrum for cryptochrome-dependent hypocotyl growth inhibition in arabidopsis. Plant Physiology, 129, 774-785. Cope, K. R. & Bugbee, B. (2013). Spectral effects of three types of white light-emitting diodes on plant growth and development. Absolute versus relative amount of blue light. HortScience, 48(4), 504-509. Currey, J. & Lopez, R. G. (2013). Cutting of Impatient, Pelargunium and Petunia Propagated under Light-emitting Diodes and High-pressure Sodium lamp Have Comparable growth, Morphology, Gas Exchange and post transplant Performance. HortScience, 48(4), 428-434. Folta, K. M. & Spalding, E. P. (2001). Opposing roles of phytochrome A and phytochrome B in early cryptochrome-mediated growth inhibition. The Plant Journal, 28, 333-340. Franklin, K. A. & Whitelam, G. C. (2005). Phytochromes and shade-avoidance responses in plants. Annals of Botany, 96, 169-175. Fukuda, N., Ajima, C., Yukawa, T. & Olsen, J. (2016). Antagonistic action of blue and red light on shoot elongation in petunia depends on gibberellin, but the effects on flowering are not generally linked to gibberellin. Environmental and Experimental Botany, 121, 102-111. Jeong, S. W., Hogewoning, S. H. & Ieperen, W. V. (2014). Responses of supplemental blue light on flowering and stem extension growth of cut chrysanthemum. Scientia Horticulturae, 165, 69-74. Nhut, D. T., Takamura, T., Watanabe, H., Okamoto, K. & Tanaka, M. (2003). Responses of strawberry plantlets cultured in vitro under super bright red and blue light-emitting diodes (LEDs). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 73, 43-52. Pinho, P., Oskari, M., Eino, T. & Lisa, H. (2004). Photobiological aspects of crop plants grown under light emitting diodes. Proc CIE Expert Sym. LED Light Sources. Tokyo, Japan. 7-8 June. p. 71-74. Randall, W. C. & Lopez, R. G. (2014) .Comparison of Supplemental Lighting from High-pressure Sodium Lamps and Light-emitting Diodes during. Bedding Plant Seedling Production. HortScience, 49(5), 589-595. Takemiya, A., Inoue, S., Doi, M. & Kinoshita, T. (2005). Phototropins Promote Plant Growth in Response to Blue Light in Low Light Environments. The Plant Cell, 17, 1120-1127. Wang, J., Lu, W., Tong, Y. & Yang, Q. (2016). Leaf morphology, photosynthetic performance chlorophyll Fluorescence, stomatal development of Lettuce (Lactuca sativa L.). Frontiers in Plant Science, 7, 250. _||_