پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56902 علوم گیاهان زینتی اثر خشکی و سایه بر رشد چمن فستوکای پابلند (Festuca arundinacea L.) و علف گندمی بیابانی (Agropyron desertorum L.) اثر خشکی و سایه بر رشد چمن فستوکای پابلند (Festuca arundinacea L.) و علف گندمی بیابانی (Agropyron desertorum L.) صادقی امیر دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان اعتمادی نعمت اله دانشیار، گروه باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان نیکبخت علی استادیار، گروه باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان سبزعلیان محمد رضا استادیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان 22 12 2015 46 4 523 534 28 09 2013 08 03 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56902.html

اطلاعات اندکی در مورد اثرهای متقابل تنش‏های محیطی بر فیزیولوژی و رشد گیاهان چمنی در اختیار است. همچنین بررسی جداگانۀ یک عامل محیطی بر روی گیاه نمی‌تواند الگوی مناسبی برای شرایط طبیعی باشد. در این پژوهش اثر متقابل سطوح مختلف سایه (0، 50 و 70 درصد) و سطوح خشکی (آبیاری کامل و قطع آبیاری) بر خصوصیات ظاهری بخش هوایی و ریشه‌ای علف گندمی بیابانی (Agropyron desertorum) و فستوکای پابلند (Festuca arundinacea Schreb. ‘Forager’) به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی بررسی شد. تحت سطوح مختلف سایه (50 و 70 درصد) اثر منفی خشکی بر سرعت خشکیدگی، کیفیت ظاهری، نشت یونی و درصد مرگ‌و‌میر ریشه‌های سطحی و عمقی نسبت به نور کامل کاسته شد. از نظر کاربرد زینتی (حفظ کیفیت ظاهری)، تحت شرایط خشکی و نور کامل، گونۀ فستوکای پابلند و تحت تنش خشکی و سایه سطح بالا (70 درصد) گونۀ علف گندمی بیابانی موفق‌تر بود. تحت سایۀ متوسط (50 درصد) و خشکی گونۀ فستوکای پابلند نسبت به علف گندمی بیابانی زمان بیشتری‌ تا خشکیدگی سپری کرد. به نظر می‏رسد اثر متقابل عوامل محیطی از‌جمله شدت نور بر مکانیسم‏های‌ استفاده‌شده در مواجهه با خشکی مؤثر باشند که نیاز به بررسی‏های بیشتری دارد.

 علف گندمی بیابانی فستوکای پابلند مرگ‌و‌میر ریشه نشت یونی ریشه Abraham, E. M., Huang, B., Bonos, S. A. & Meyer, W. A. (2004). Evaluation of drought resistance for Texas bluegrass, Kentucky bluegrass, and their hybrids. Crop Science, 44, 1746-1753. Aranda, I., Castro, L., Pardos, M., Gil, L. & Pardos, J. A. (2005). Effects of the interaction between drought and shade on water relations, gas exchange and morphological traits in cork oak (Quercus ruber L.) seedlings. Forest Ecology and Management, 210, 117-129. Climent, J. M., Aranda, I., Alonso, J., Pardos, J. A. & Gil, L. (2006). Developmental constraints limit the response of Canary Island pine seedlings to combined shade and drought. Forest Ecology and Management, 231, 164-168. Daniel, G. O., Loren, S. T. J. & Jensen, K. B. (2001). Crested Wheatgrass (Agropyron cristatum) and Agropyron desertorum accessions. Canadian Journal of Plant Science, 70, 707-716. Fu, J. & Huang, B. (2001). Involvement of antioxidants and lipid peroxidation in the adaption of tow cool season grasses to localized drought stress. Environmental and Experimental Botany, 45, 105-114. Halliwell, B. (1999). Antioxidantdefence mechanism frome the beginning to the end. Free Radical Research, 31, 261-272. Holmgren, M., Scheffer, M. & Huston, M. A. (1997). The interplay of facilitation and competition in plant communities. Ecology, 78, 1966-1975. Holmgren, M. (2000). Combined effects of shade and drought on tulip poplar seedlings: trade-intolerance or facilitation? OIKOS, 90, 67-78. Huang, B., Duncan, R. R. & Carrow, R. N. (1997). Drought-resistance mechanisms of seven warm-season turfgrasses under surface soil drying: II. Root aspects. Crop Science, 37, 1863-1869. Huang, B. & Fry, J. D. (1998). Root anatomical, physiological, and morphological responses to drought stress for tall fescue cultivars. Crop Science, 38, 1017-1022. Huang, B. & Gao, H. (2000). Root physiological characteristics associated with drought resistance in tall fescue cultivars. Crop Science, 40, 196-203. Knievel, D. P. (1973). Procedures for estimating ratio of live or dead root dry matter in root core samples. Crop Science, 13, 124-126. Kubiske, M. E., Abrams, M. D. & Mostoller, S. A. (1996). Stomatal and nonstomatal limitations on photosynthesis in relation to the drought and shade tolerance of tree species in open and understory environments. Trees, 11, 76-82. Man, D., Boa, Y. X., Han, B. & Zhang, X. (2011). Drought tolerance associated with proline and hormone metabolism in two tall fescue cultivars. HortScience, 7,1027-1032. Marshall, J. D. (1986). Drought and shade interact to cause fine-root mortality in Douglas-fir seedlings. Plant and Soil, 91, 51-70. McCann, S. E. & Huang, B. (2008). Turfgrass Drought Physiology and Irrigation Management. pp. 431-446. In: M. Pessarakli (Ed), Handbook of Turfgrass Management and Physiology. (pp. 431-446.) CRC Press. Nobel, P. S. (1999). Physicochemical and environmental plant physiology (2nded.). Academic Press, San Diego. 474 pp. Richardson, M. D., Karcher, D. E., Hignight, K. & Rush, D. (2008). Drought tolerance and rooting capacity of Kentucky bluegrass cultivars. Crop Science, 48, 2429-2436. Ruter, J. M. (1993). High-temperature-induced electrolyte leakage from excised leaves and roots of three hollies. HortScience, 28(9), 927-928. Selahvarzi, Y., Tehranifar, A., Gazanchian, A. & Arooei, H. (2008). Drought resistance mechanisms of native and commercial turfgrasses under drought stress: Root responses. Iranian Journal of Horticultural Sciences, 22(2), 1-12. (in Farsi) Sheffer, K. M., Dunn, J. H. & Minner, D. D. (1987). Summer drought response and rooting depth of three cool-season turfgrasses. HortScience, 22, 296-297. Smith, T. & Huston, M. (1989). A theory of the spatial and temporal dynamics of plant communities. Vegetatio, 83, 49-69. Stier, C. J.& Gardner, D. S. (2008). Shade Stress and Management. In: M, Pessarakli (Ed), Handbook of Turfgrass Management and Physiology. (pp. 447-472.) CRC Press. Taiz, L. & Zeiger, E. (1998). Plant Physiology. Sinauer Associates, Inc, Sunderland, MA. 792 pp. Tatari, M., Fotouhi Ghazvini, R., Etemadi, N., Ahadi, A. M. & Mousavi, A. (2013). Study of some physiological responses in three species of turfgrass in drought stress conditions. Journal of Plant Production, 20(1), 63-87. (in Farsi) Yang, Y., Liu, Q., Han, C., Qiao, Y. Z., Yao, X. Q. & Yin, H. J. (2007). Influence of water stress and low irradiance on morphological and physiological characteristics of Picea asperata seedlings. Photosynthetica, 45(4), 613-619. Yordanov, I., Velikova, V. & Tsonev, T. (2003). Plant responses to drought and stress tolerance. Bulgarian Journal of Plant Physiology, Special Issue, 187-206.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56903 علوم میوه اثر کاربرد خاکپوش پلاستیکی بر برخی ویژگیهای مرفو- فیزیولوژیکی توت‌فرنگی در شرایط تنش خشکی اثر کاربرد خاکپوش پلاستیکی بر برخی ویژگیهای مرفو- فیزیولوژیکی توت‌فرنگی در شرایط تنش خشکی شکری بختیار دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشگاه کردستان قادری ناصر استادیار گروه علوم باغبانی، دانشگاه کردستان جوادی تیمور استادیار گروه علوم باغبانی، دانشگاه کردستان 22 12 2015 46 4 535 547 08 06 2014 16 08 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56903.html

آزمایشی برای بررسی کاربرد خاکپوش پلاستیکی بر روی رشد و نمو دو رقم توت فرنگی کوئین الیزا و پاروس تحت شرایط کم آبی به صورت فاکتوریل بر پایه طرح بلوک های کامل تصادفی با چهار تیمار دارای خاکپوش، بدون خاکپوش، آبیاری کامل )شاهد( و تنش خشکی )زمانی آبیاری صورت گرفت که مکش خاک به 11 بار رسید( با سه تکرار اجرا گردید. بعد از گذشت دو ماه -از شروع آزمایش برخی ویژگیهای رویشی، و فیزیولوژیکی در سال اول و میزان عملکرد در سال دوم اندازه گیری شدند. نتایج نشان داد که در شرایط تنش خشکی محتوای نسبی آب برگ، شاخص پایداری غشاء سلولی و هدایت روزنهای در دو رقم کاهش یافته و با کاربرد خاکپوش میزان آنها در هر دو رقم در مقایسه با شرایط تنش افزایش یافت. میزان پرولین و کربوهیدراتهای محلول کل در دو رقم در شرایط تنش خشکی بهطور معنی درای در مقایسه با شاهد افزایش یافت. کاهش میزان ماده خشک کل بیشتر به هزینه کاهش وزن خشک برگ و دمبرگ روی داد. کاهش خصوصیات رویشی در اثر تنش خشکی عملکرد گیاهان توت فرنگی در سال بعد را کاهش داد. کاربرد خاکپوش سبب افزایش میزان محصول در سال بعد در دو رقم در مقایسه با گیاهانی شد که در شرایط تنش خشکی تحت خاکپوش کاشت نشده بودند. این نتایج نشان داد که کاربرد خاکپوش پلاستیکی به بهبود خصوصیات رویشی توت فرنگی تحت شرایط تنش خشکی کمک میکند و سبب میشود کاهش کمتری در میزان محصول در سال بعد روی دهد.

 توزیع مادۀ خشک ویژگیهای رویشی عملکرد خاکپوش محتوای نسبی آب برگ Abdul Jaleel, C., Manivannan, P., Wahid, A., Farooq, M., Somasundaram, R. & Panneerselvam, R. (2009). Drought stress in plants: a review on morphological characteristics and pigments composition. Journal of Agricultural Biology, 11, 100-105. Ashrafuzzaman, M., Halim, M. A., Ismail, M. R., Shahidullah, S. M. & Hossain, M. A. (2011). Effect of Plastic Mulch on Growth and Yield of Chilli (Capsicum annuum L.). Brazilian Archives of Biology and Technology, 54 (2), 321-330. Babaei, K., Amini, D. M., Modares, S. S. M. A. & Jabari, R. (2010). Effect of drought stress on morophological characteristics, amount of praline and percent of thymol in thyme (Thymus vulgaris. L.). Iranian Journal of Medical and Aromatic plants, 26 (2), 251-239. (in Farsi). Bates, L. S., Waldren, R. P. & Teare, I. D. (1973). Rapid determination of free proline for water-stress studies. Plant and Soil, 39, 205-207. Blanke, M. M. & Cooke, D. T. (2006). Water channels in strawberry and their role in the plant’s response to water stress. Acta Horticulturae, 708, 65-68. Decoteau, D. R., Kasperbauer, M. J., Daniels, D. D. & Hunt, P.G. (1988). Plastic mulch color effects on reflected light and tomato plant growth. Scientia Horticulturae, 34, 169-175. Escalona, J. M., Flexas, J. & Medrano, H. (1999). Stomatal and non-stomatal limitations of photosynthesis under water stress in field-grown grapevines. Journal of Plant Physiology, 26, 421-433. Fortnum, B. A., Decoteau, D. R. & Kasperbauer, M. J. (2000). Effect of mulch surface color on root-knot of tomato grown in simulated planting beds. Journal of Nematology, 32, 101-109. Galmes, J., Flexas, J., Save, R. & Medrano, H. (2007). Water relation and stomatal characteristics of Mediterranean plants with different growth forms and leaf habits: responses to water stress and recovery. Journal of Plant and Soil, 290, 139-155. Gaturuku, J. K., Isutsa, D. K. & Aguyoh, J. N. (2012). Irrigation rate and mulch type significantly affect some physiological processes of purple passion fruit (Passiflora edulis f.edulis sims.) under drought stress. International Journal of Advanced Biological Research, 2(1), 46-52. Ghaderi, N., Talaie, A. R. Ebadi, A. & Lesani, H. (2010). Effect of drought stress and subsequent recovery some physiological characteristics in ‘Sahani’,‘Bidane-sefid’ and ‘Farkhii’ grape cultivars. Iranian Journal of Horticultural Science, 41 (2): 179-188. (in Farsi). Ghaderi, N. & Siosemardeh. A. (2011). Response to Drought Stress of Two Strawberry Cultivars (cv. Kurdistan and Selva). Journal of Horticulture, Environment and Biotechnology, 52(1), 6-12. Ghaderi, N., Talaie, A. R., Ebadi, A. & Lessani, H. (2011). The Physiological Response of Three Iranian Grape Cultivars to Progressive Drought Stress. Journal of Agricultural Science and Technology, 13, 601-610. Ghorbanli, M., Fakerbaher, Z., Mirza, M. & Rezaei, M. B. (2001). The effect of irrigation treatments on some of growth parameters, quality and quantity of essential oil in Satureja hortensis. Pajouhesh-va-Sazandegi, 14(3 (In Natural Resources 52)), 40-45. (in Farsi) Grant, O. M., Johnson, A. W., Davies, M. J., James, C. M. & Simpson, D. W. (2010). Physiological and morphological diversity cultivated strawberry (Fragaria × ananasa) in response to water deficit. Environment and Experiment Botany, 68, 264-272. Ibeawuchi, I. I., Iheoma, O. R., Obilo, O. P. & Obiefuna, J. C. 2008. Effect of time of mulch application on the growth and yield of cucumber (Cucumis sativus ) in Owerri, southeastern Nigeria. Life Science Journal, 5(1), 68– 71. Irigoyen, J. J., Emerich, D.W. and Sanchez-Diaz, M. (1992). Water stress induced changes in concentrations of proline and total soluble sugars in nodulated alfalfa (Medicago sativa) plants. Journal of Plant Physiology, 84, 55-60. Karlidag, H., Yildirim, E. & Turan, M. (2009). Salicylic acid ameliorates the adverse effect of salt stress on strawberry. Journal of Scientific Agriculture, (Piracicaba, Braz.), 66, 180-187. Kerepesi, I., Galiba, G. & Banyal, E. (1998). Osmotic and salt stresses induced differential alteration in water-soluble carbohydrate content in wheat seedlings. Journal of Agriculture Food Chemistry, 46, 5347-5354. Kirnak, H., Kaya, C., Tas, I. & Higgs, D. (2001). The influences of water deficit on vegetative growth, physiology, fruit yield and quality in eggplants. Bulgarian Journalof Plant Physiology, 27 (3-4), 34-46. Klamkowski, K. & Treder, W. (2006). Morphological and physiological responses of strawberry plants to water stress. Journal of Agriculture Conspectus Scientifics, 71, 159–165. Kocheva, K. & Gorgiev, G. (2003). Evaluation of the reac tion of two contrasting barley (Hordeum vulgare L.) cultivars in response to osmotic stress with PEG 6000. Bulgarian Journal of Plant Physiology, Special Issue, 290-294. Krishnamurthy, L., Kashiwagi, J. & Upadhyaya, H. D. (2003). Genetic diversity of drought avoidance root traits in the mini-core germplasm collection of chickpea. International Chickpea and Pigeonpea Newsletters, 10, 21-24. Kumar, S & Dey, P. (2011). Effects of different mulches and irrigation methods on root growth, nutrient uptake, water-use efficiency and yield of strawberry. Scientia Horticulturae, 127, 318-324. Jones, M. M., Osmond, C. B. & Turner, N. C. (1985). Accumulation of solutes in leaves of sorghum and sunflower in response to water deficits. Australian Journal of Plant Physiology, 7, 193-205. Lakso, A. N. (1985). The effect of water stress on physiological process in fruit crop. Acta Horticulturae, 171, 275-290. Larson, K. D., Koike, S. T. & Zalom, F. G. (2006). Polyethylene mulch, deficit irrigation, overhead sprinkling and strawberry fruit bronzing. Proc.Vth Int. Strawberry Symposium Ed. G. Waite Acta Horiculturae, 708, 51-58. Lecoeur, J. & Sinclair, T. R. (1996). Field pea transpiration and leaf growth in response to soil water deficits. Crop Science, 36, 331-335 Levitt, J. (1980). Responses of plants to environmental stresses. II. Water, radiation, salt and other stresses. Academic Press, New York. pp: 3-53. Liu, F., Savi, S., Jensen, C. R., Shahnazari, A., Jacobsen, S. E., Stiki, R. & Andersen, M. N. (2007). Water relations and yield of lysimeter-grown strawberries under limted irrigation. Scientia Horticulturae, 111, 128-132. Mohammadkhani, N. & Heidari, R. (2008). Drought-induced accumulation of soluble sugars and proline in two maize varieties. Journal of World Applied Sciences, 3 (3), 448-453. Moor, U., Karp, K. & Põldma, P. (2004). Effect of mulching and fertilization on the quality of strawberries. Agricultural and Food Science, 13, 256-267. Morgan, J. M. (1992). Osmotic components and properties associated with genotypic differences in osmoregulation in wheat. Australian Journal of Plant Physiology, 19, 67-76. Nayyar, H. (2003). Acclimation of osmolytes and osmotic adjastmant in water-stressed wheat and maiz as affected by calcium and its antagonists. Environmental and Experimental Botany, 50, 253-264. Nayyar, H. & Gupta, D. (2006). Differential sensitivity of c3 and c4 plant to water deficit stress: Assosiation whit oxidative stress and antioxidants. Environmental and Experimental Botany, 58, 106-113. Opara, O., Salau, O. & Swennen, R. (1992). Response of plantain to mulch on a tropical ultisol: Part II. Effect of different mulehing materials on soil hudrologicul properties. International Agrophysies. 6, 3-4. Pinheiro, C., Passarinho, J. A. & Ricardo, C.P. (2004). Effect of drought and rewatering on metabolism of Lupinus albus organs. Journal of PlantPhysiology, 161, 1203-1210. Pongsa-Anutin, T., Suzuki, H. & Matsui, T. (2007). Effects of mulching on the activity of acid invertase and sugar contents in Japanese radish. Asian Journal of Plant Science, 6, 470-476. Rane, J., Maheshwari, M. & Nagarajan, S. (2001). Effect of pre-anthesis water stress on growth, photosynthesis and yield of six wheat cultivars differing in drought tolerance. Indian Journal of Plant Physiology, 6, 53-60. Razavi, F., Pollet, B., Steppe, K. & Vanlabeke, M. C. (2008). Chlorophyll fluorescence as a tool for evaluation of drought stress in strawberry. Photosynthetica, 46(4), 631-633. Saeed, R. & Ahmad, R. (2009). Vegetative Growth and yield of tomato as affected by the application of organic mulch and gypsum under saline rhizosphere. Pakistan Journal of Botany, 41(6), 3093-3105. Shinde, B. M., Limaye, A. S., Deore, G. B. & Laware, S. L. (2010). Physiological responses of groundnut (Arachis Hypogaea L.) varieties to drought stress. Asian Journal of Experimental Biological Sciences, Special issue, 65-68. Shahriari, S. (2011). The study on the effect of irrigation levels and mulch application on growth indices and essential oil content of peppermint (Mentha piperita L.). Planta Medicine, 18, 77 – 88. Singer, C. K. & Martin, C. A. (2009). Effect of landscape mulches and drip irrigation on transplant establishment and growth of three north American desert native plants. Journal of Environmental and Horticulture, 27(3), 166-170. Sharkey, T. D. & Seemann, J. R. (2005). Mild water stress effects on carbon-reduction-cycle intermediates, Ribulose Bisphosphate Carboxylase activity and spatial homogeneity of photosynthesis in intact leaves. Plant Physiology, 89, 1060-1065. Taimori, M., Kafi, M., Orsji, Z. & Oroji, K. (2010). Effect of drought stress, size and cover of corm on morpho-physiological characteristics of crocus (Crocus sativus L.) under greenhouse conditions. Journal of Agro ecology, 2 (2), 323-334. Tsuchida, Y., Negoro, K. & Hishiike, M. (2011). Effect of initiation timing of drought stress on carbohydrate content and vegetative growth in Japanese apricot (Prunus mume Sieb. et Zucc.) ‘Nanko’. Journal of Japanese Society for Horticultural Science, 80 (1), 19-25. Topcu, S., Kirda, C., Desgan, Y., Kaman, H., Cetin, M. & Yazic, A. (2007). Yield response and N-fertilizer recovery of tomato grown under deficit irrigation. European Journal of Agronomy, 26(1), 64-70. Vieira, S. J., Naylor, A. W. & Kramer, P. J. (1974). Some ultra-structural and enzymatic effects of drought stress in cotton (Gossypium hirsutum L.) leaves. Proceedings of the National Academy of Sciences. 71, 3243-324. Valentovič, P., Luxová, M., Kolarovič, L. & Gašparíková, O. (2006). Effect of osmotic stress on compatible solutes content, membrane stability and water relations in two maize cultivars. Plant Soil Environment, 52(4), 186-191. Uwah, D. F. & Iwo, G. F. 2011. Effectiveness of organic mulch on the productivity of maize (Zea mays L.) and weed growth. The Journal of Animal and Plant Sciences, 21(3), 525-530. Yin, C., Wang, X., Duan, B., Luo, J. & li, C. (2005). Early growth, dry matter allocation and water use efficiency of two sympatric Populus species as affected by water stress. Journal of Environmental andExperimental Botany, 53, 315-322. Wang, X. Q., Li, S. X. & Gao, Y. J. (1998). Effect of plastic film mulching on ecophysiology and yield of spring maize on arid lands. Acta Agronomica Sinica, 24, 348-353.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56904 مقاله پژوهشی ارزیابی برخی پاسخ‌های فیزیولوژیکی و رشدی سه ژنوتیپ مختلف گردو نسبت به بیکربنات آب آبیاری ارزیابی برخی پاسخ‌های فیزیولوژیکی و رشدی سه ژنوتیپ مختلف گردو نسبت به بیکربنات آب آبیاری منظری توکلی میثم دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ولی‌عصر(عج) رفسنجان باقری واحد دانشجوی سابق دکتری، گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ولی‌عصر(عج) رفسنجان کریمی حمیدرضا دانشیار، گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ولی‌عصر(عج) رفسنجان روستا حمیدرضا دانشیار، گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ولی‌عصر(عج) رفسنجان 22 12 2015 46 4 549 561 07 11 2013 23 08 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56904.html

به‏منظور بررسی اثر بیکربنات سدیم آب آبیاری بر صفات رشدی و فیزیولوژیکی ژنوتیپ‏های گردو، آزمایشی به‏صورت فاکتوریل با دو فاکتور بیکربنات سدیم در 3 سطح (صفر، 20 و 40 میلی‏مولار) و ژنوتیپ‏های گردو در 3 سطح شامل: ژنوتیپ محلی A؛ ژنوتیپ‏های وحشی B و C در قالب طرح کاملاً تصادفی انجام گرفت. در این پژوهش اثر غلظت‏های مختلف بیکربنات بر روی صفات مختلفی نظیر رشد رویشی، خصوصیات فتوسنتزی، تنظیم‏کننده‏های اسمزی و غلظت عناصر معدنی بافت گیاهی هر یک از ژنوتیپ‏ها بررسی شد. نتایج نشان داد که وجود بیکربنات کلیۀ صفات مطالعه‌شده را تحت‌تأثیر قرار داد و اختلاف این اثر در بین سه ژنوتیپ به‏وضوح قابل مشاهده بود. مقدار آهن در اندام هوایی صرف نظر از نوع ژنوتیپ کاهش یافت. کمترین میزان کاهش (17/15 درصد) آهن اندام هوایی در غلظت 40 میلی‏مولار بیکربنات مربوط به ژنوتیپ A بود. کمترین درصد کاهش در کلروفیل بر اثر بیکربنات در مقایسه با شاهد در گیاهان ژنوتیپ A مشاهده شد. نتایج نشان داد که گردو جزء آن دسته از محصولات باغی است که حساسیت زیادی به بیکربنات آب آبیاری دارد، به‏طوری‏که از تیمار 20 میلی‌مولار به بعد رشد گیاهان کاهش یافت. بر‌اساس نتایج حاصل از این پژوهش، ژنوتیپ A بیشترین میزان تحمل به بیکربنات‌ و نیز رشد رویشی بهتری در چنین شرایطی داشت، هر‌چند‌ بین گیاهان ژنوتیپ B و C اختلاف معنا‏داری مشاهده نشد. بنابراین، می‏توان ژنوتیپ A را به‌منزلۀ ژنوتیپ متحمل به بیکربنات آب آبیاری در مقایسه با دو ژنوتیپ دیگر معرفی کرد.

 آهن ژنوتیپ مقاوم‌‌ قلیاییت گردو pH Ahmad, P. & Sharma, S. (2010). Physio-biochemical attributes in two cultivars of mulberry (Morusalba L.) under NaHCO3 stress. International Journal of Plant Production, 4 (2), 1735-6814. Alcantara E., Manuel Cordeiro A. & Barranco D. (2003). Selection of olive varieties tolerance to iron chlorosis. Plant Physiology, 160, 1467-1477. Alcantara, E., Romera, F. J. & de la Guardia, M. D. (1988). Genotypic differences in bicarbonate-induced iron chlorosis in sunflower. Journal of Plant Nutrition, 11, 65-67. Alhendawi, R. A., Römheld, V. E., Kirkby, A. & Marschner, H. (1997). Influence of increasing bicarbonate concentrations on plant growth, organic acid accumulation in roots and iron uptake by barley, sorghum and maize. Journal of Plant Nutrition, 20, 1731-1753. Barber, S. A. (1995). Soil Nutrient Bioavailability, A Mechanistic Approach. (2nd ed.). John Wiley & Sons, New York. Bavaresco, L., Giachino, E. & Colla, R. (1999). Iron chlorosis paradox in grapevine. Journal of Plant Nutrition, 22, 1589-1597. Bertoni, G. M., Pissaloux, A., Morad, P. & Sayag, D. R. (1992). Bicarbonate-pH relationship with iron chlorosis in white lupine. Journal of Plant Nutrition, 15, 1509- 1518. Bialczyk, J., Lechowski, Z. & Libik, A. (1994).Growth of tomato seedlings under different HCO3- concentration in the medium. Journal of Plant Nutrition, 17, 801-816. Bugbee, B. (2003). Nutrient management in recirculating hydroponic culture. Available at http://www.usu.edu/cpl/research hydroponics 3. htm. Accessed 22 November 2010. Chapman, H. D. & Pratt, P. F. (1982). Methods of Analysis for Soils, Plants and Waters. Division of Agriculture, University of California, Berkeley, CA. 4034p. Colla, G., Rouphael, Y., Cardarelli, M., Salerno, A. & Rea, E. (2010). The effectiveness of grafting to improve alkalinity tolerance in watermelon. Environmental & Experimental Botany, 68,283-291. Darvishyan, M. (1997). Walnut culture to new method. Publication company technical of Iran. (in Farsi) De la Guardia, M. D. & Alcántara, E. (2002). Bicarbonate and low iron level increase root to total plant weight ratio in olive and peach rootstock. Journal of Plant Nutrition, 25, 1021-1032. Deng, C. N., Zhang, G. X., Pan, X. L. & Zhao, K. Y. (2010). Chlorophyll fluorescence and gas exchange responses of maize seedlings to saline-alkaline stress. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 16(1), 49-58. Fernandez, V., Ebert, G. & Winkelmann, G. (2005). The Use of microbial siderophores for foliar iron application studies. Plant & Soil, 272, 245-252. Hakam‚ P., khanizade‚ S., Deell‚ J. R. & Richr‚ C. (2000). Assessing chilling tolerance in roses using chlorophyll fluorescence. HortScience, 35, 184-186. Irigoyen, J. J., Emerich, D. W. & Sanchez- Diaz, M. 1992. Water stress induced changesin concentrations of proline and total soluble sugars in nodulated alfalfa (medicago sativa) plants. Physiologia Plantarum, 84, 67-72. Ksouri, R., Debez, A., Mahmoudi, H., Ouerghi, Z., Gharsalli, M. & Lachaal, M. (2007). Genotypic variability within Tunisian grapevine varieties (Vitis vinifera L.) facing bicarbonate-induced iron deficiency. Plant Physiology & Biochemistery, 45, 315-322. Lichtenthaler, H. K. (1987). Chlorophylls and Cartenoids: Pigments and Photosynthetic Biomembranes. Methods in Enzymology, 148, 350-382. Liu, J. & Shi, D. C. (2010). Photosynthesis, chlorophyll fluorescence, inorganic ion and organic acid accumulations of sunflower in responses to salt and salt-alkaline mixed stress. Photosynthetica, 48, 127-134. Malassiotis, A., Tanou, G., Diamantidis, G., Patakas, A. & Therios, L. (2006). Effects of 4-month Fe deficiency exposure on Fe reduction mechanism, photosynthetic gas exchange, chlorophyll fluorescence and antioxidant defense in two peach rootstocks differing in Fe deficiency tolerance. Journal of Plant Physiology, 163, 176-185. Marschner, H. (1995). Mineral Nutrition of Higher Plants. IIthedn. Press, London. Nikolic, M. & Kastori, R. (2000). Effect of bicarbonate and Fe supply on Fe nutrition of grapevine. Journal of Plant Nutrition, 23, 1619-1627. Paquin R. & Lechasseur, P. (1979). Observations sur une methode dosage de la proline libre dans les extraits de plantes. Canadian Journal of Botany, 57, 1851-1854. Peng, Y. L., Gao, Z. W., Gao, Y., Liu, G. F., Sheng, L. X. & Wang, D. L. (2007). Ecophysiological characteristics of alfalfa seedling in response to various mixed salt-alkaline stresses. Horticultural Science, 58, 240-278. Pissaloux, A., Morarad, P. & Bertoni, G. (1995). Alkalinity-Bicarbonate Calcium Effects on Iron Chlorosis in White Lupine in Soilless Culture. In: Abadia, J. (ed.). Development in plant and soil science. Iron nutrition in soils and plants; Seventh International Symposium on Iron Nutrition and Interactions in Plants, vol. 59. Zaragoza, Spain, June 27–July 2, 1993. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, 127-133. 27.           Romanowska-Duda, B., Kalaji, M. H. & Strasser, R. J. (2005). The Use of PSII Activity of Spirodela Oligorrhiza Plants as an Indicator for Water Toxicity. In: Van der Est A., Bruce D. Photosynthesis: Fundamental Aspects to Global Perspectives. Allen Press, Lawrence. Römheld, V. (2000). The chlorosis paradox: Fe inactivation as a secondary event in chlorotic leaves of grapevine. Journal of Plant Nutrition, 23, 1629-1643. Roosta, H. R. & J. K. Schjoerring. (2007). Effects of ammonium toxicity on nitrogen metabolism and elemental profile of cucumber (Cucumis sativus L., cv. Styx) plants. Journal of Plant Nutrition, 30, 1933-1951. Satoh, R., Nakashima, K., Seki, M., Shinozaki, K. & Yamaguchi-Shinozaki K. (2002). ACTCAT, a novel cis-acting element for proline- and hypoosmolarity-responsive expression of the ProDH gene encoding proline dehydrogenase in Arabidopsis. Plant Physiology, 130, 709-719. Shahabi, A., Malakouti, M. J. & Fallahi, E. (2005). Effects of Bicarbonate content of irrigation water on nutrition disorders of some apple varieties. Journal of Plant Nutrition, 28, 1663-1678. Shi, D. C. & Yin, L. J. (1993). Different between salt (NaCl) and alkaline (Na2CO3) stresses on Puccinellia tenuiflora (Griseb) Scribn. et. Merr. Plants. Journal of Integrative Plant Biology,35, 144-149. Shi, D. C. & Zhao, K. F. (1997). Effects of NaCl and Na2CO3 on growth of Puccinellia tenuiflora and on present state of mineral elements in nutrient solution. Acta Prataculturae Sinica, 6, 51-61. Shi, Y., Byme, D. H., Reed, D. W. & Loeppert, R. H. (1993). Iron chlorosis development and growth response of peach rootstocks to bicarbonate. Journal of Plant Nutrition, 16, 1039-1046. Singleton, V. L. & J. Rossi, A. (1965). Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology & Viticulture, 16, 144-153. Soltani, A. (2004). Chlorophyll Fluorescence and Its Application. Internal Press. University of Agricultural Science and Natural Resource, Gorgan, Iran. (in Farsi) Strasser, R. J., Srivastava, A. & Tsimilli-Michael, M. (2000). The Fluorescence Transient as Tool to Characterize and Screen Photosynthetic Samples. In: Yunus, M., Pathre, U., Mohanty, P. Probing Photosynthesis: Mechanisms, Regulation and Adaptation. Taylor and Francis, London. Taiz, L. & Zeiger, E. (2002). Plant Physiology. (3nd Edition). Sinauer Assoc. Inc., Publishers, Sunderl and MA, pp: 283- 308. Valdez-Aguilar, L. A. & Reed, D. W. (2010). Growth and nutrition of young bean plants under high alkalinity as affected by mixtures of ammonium, potassium, and sodium. Journal of Plant Nutrition, 33, 1472-1488. Valdez-Aguilar, L. A. (2004). Effect of alkalinity in irrigation water on selected greenhouse ornamental plants. Ph.D Dissertation, College Station, Texas: Texas A&M University. Wang, X., Geng, S., Ri, Y. J., Cao, D., Liu, J., Shi, D. C. & Yang, C. W. (2011). Physiological responses and adaptive strategies of tomato plants to salt and alkali stresses. Scientia Horticulturae, 130, 248-255. Whipker, B. E., Bailey, D. A.,  Nelson, P. V.,  Fonteno, W. C, & Hammer, P. A. 1996. Anoval approach calculate acid additions for alkalinity control in grrenhouse irrigation water. Communications in Soil Science and Plant Analysis, 27, 959-976. Yang, C. W., Xu, H. H., Wang, L. L., Liu, J., Shi, D. C. & Wang, D. L. (2009). Comparative effects of salt-stress and alkali-stress on the growth, photosynthesis, solute accumulation, and ion balance of barley plants. Photosynthetica, 47, 79-86. Yang, J. Y., Zheng, W., Tian, Y., Wu, Y. & Zhou, D. W. (2011). Effects of various mixed salt-alkaline stresses on growth, photosynthesis, and photosynthetic pigment concentrations of Medicago ruthenica seedlings. Photosynthetica, 49, 275- 284. Yang, X., Römheld, V. & Marschner, H. (1993). Effect of bicarbonate and root zone temperature on uptake of Zn, Fe, Mn and Cu by different rice cultivars (Oryza sativa L.) grown in calcareous soil. Plant & Soil, 155, 441-444. Zribi, K. & Gharsalli, M. (2002). Effect of bicarbonate on growth and iron nutrition of pea. Journal of Plant Nutrition, 25, 2143-2149.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56905 مقاله پژوهشی ارزیابی پاسخ به تنش کم‌آبی در اکوتیپ‌های مختلف آویشن دنایی (Thymus daenensis subsp.daenensis) با استفاده از شاخص‌های تحمل تنش خورشیدی جلال دانشجوی سابق دکتری فیزیولوژی و اصلاح گیاهان دارویی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج شکرپور مجید استادیار، گروه باغبانی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج ناظری وحیده دانشیار گروه باغبانی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج 22 12 2015 46 4 563 573 08 10 2014 28 12 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56905.html

به منظور ارزیابی تحمل به تنش کم‌آبی آویشن دنایی (Thymus daenensis subsp.daenensis)، بذر هشت اکوتیپ جمع‌آوری‌شده از مناطق مختلف، پس از تولید نشا در گلخانه، در مزرعة پردیس کشاورزی دانشگاه تهران در شرایط مختلف آبی کشت شد. آزمایش به‌صورت طرح کرت‌های خرد‌شده در قالب طرح بلوک‌های کامل تصادفی با سه تکرار اجرا شد. عامل اصلی شامل سطوح مختلف آبیاری نرمال، قطع آبیاری در مرحلة رویشی و قطع آبیاری در مرحلة زایشی و عامل فرعی، هشت اکوتیپ مختلف (ملایر 1، ملایر 2، جوزان، اراک، خانه میران بالا، خانه میران پایین، زاغه و شازند) بود. برداشت گیاهان در مرحلة تمام‌گل انجام گرفت و وزن خشک، درصد اسانس و شاخص‌های تحمل به تنش اندازه‌گیری شد. نتایج نشان داد که اکوتیپ‌ها، تحت تیمارهای مختلف از لحاظ میزان اسانس، واکنش‌های متفاوتی نشان دادند. به‌طور‌کلی، افزایش شدت تنش موجب کاهش مادة خشک شد. همبستگی قوی بین عملکرد مادة خشک با شاخص‌های تنش مشاهده شد. شاخص‌های میانگین هندسی (GMP)، شاخص تحمل به تنش (STI)، میانگین حسابی (MP) و میانگین هارمونیک (HAM) مناسب‌ترین شاخص‌ها برای انتخاب اکوتیپ‌های متحمل و برتر شناخته شدند. بر‌اساس مجموع این شاخص‌ها، اکوتیپ‌های اراک، خانه‌میران بالا و خانه‌میران پایین اکوتیپ‌های برتر برای مطالعات آتی انتخاب شدند. به‌طور‌کلی، این گیاه تحمل بالایی به تنش کم‌آبی نشان می‌دهد و گزینة مناسبی برای کشت در شرایط کم‌آبی و دیم است.

 آویشن دنایی اسانس تنش کم‌آبی شاخص‌های تحمل Ansari, H., Sharifian, H. & Davari, K. (2010). Principles of general irrigation. Academic Jehad. BadrAbadi, M., Shokrpour, M., Asghari, A. & Esfandyari, A. O. (2012). Determining relationships among dry matter remobilization and some morphological traits in barley genotypes using factor analysis method under low water stress. Journal of Crop Breeding, 4(10), 109-122. (in Farsi) Bahreininejad, B., Razmjoo, J. & Mirza, M. (2013). Influence of water stress on morpho-physiological and phytochemical traits in Thymus daenensis. International Journal of Plant Production, 7(1), 151-166. Bouslama, M. & Schapaugh, J. (1984). Stress tolerance in soybeans. I. Evaluation of three Screening techniques for heat and drought tolerance. Crop Science, 24, 933-937. Fasina, O.O. & Colley, Z. (2008). Viscosity and specific heat of vegetable oils as a function of temperature: 35°c to 180°c. International Journal of Food Properties, 11, 738-746. Fernandez, G.C.J. (1992). Effective selection criteria for assessing plant stress tolerance. In Proceedingsof the International Symposium on Adaptation of Vegetables and Other Food Crops in Temperature and Water Stress, 13-16 Aug., Taiwan, pp. 257-270. Fischer, R.A. & Maurer, R. (1978). Drought resistance in spring wheat cultivars: I. Grain yield responses. Australian Journal of Agriculture Research, 29, 897-912. Gavuzzi, P., Rizza, F., Palumbo, M., Campaline, R.G., Ricciardi, G.L. & Borghi, B. (1997). Evaluation of field and laboratory predictors of drought and heat tolerance in winter cereals. Canadian Journal of Plant Science, 77, 523-531. Golparvar, A., Ghannadha, M. R., Zali, A. A., Ahmadi, A., Majidi Harvan, E. & Ghasemi, A. (2006). Factor analysis of morphological and morpho-physiological traits in bread wheat (Triticum aestivum L.) genotypes under drought and non-drought stress conditions. Research and Development, 72(3), 52-59. (in Farsi) Hossain, A.B.S., Sears, T.S. & Paulsen, G.M. (1990). Desiccation tolerance and its relationship to assimilate partitioning in winter wheat. Journal of Crop Science, 30, 622-627. Jamzad, Z. (2010). Thymes and savorys of Iran. Research Institute of Forests and Rangelands. Kargar, S. M. A., Ghannadha, M. R., Bozorgipour, R., Khaje ahmad attari, A. A. & Babaei, H. R. (2004). An investigation of drought tolerance indices in some soybean genotypes under restricted irrigation conditions. Iranian Journal of Agricultural Science, 35(1), 129-142. (in Farsi) Laribi, B., Bettaieb, I., Kouki, K., Sahli, A., Mougou, A. & Marzouk, B. (2009). Water deficit effects on caraway (Carum carvi L.) growth, essential oil and fatty acid composition. Industrial Crops and Products, 30(3), 372-379. Lebaschi, M. & Sharifi Ashour Abadi, A. (2004). Some of medicinal plants growth indexes in different drought stress conditions. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants, 20(3), 249-261. (in Farsi) Nickavar, B., Mojab, F. & Dolat-Abadi, R. (2005). Analysis of the essential oils of two Thymus species from Iran. Food Chemistry, 90, 609-611. Omidbaigi, R. (2005). Production and processing of medicinal plants. Astane ghodse Razavi. Petropoulos, S. A., Daferera, D., Polissiou, M. G. & Passam, H. C. (2008). The effect of water deficit stress on the growth, yield and composition of essential oil of parsley. Scientia Horticulturae, 115(4), 393-397. Rustaie, A. (2009). The effect of ecological conditions on morphologic and phytochemical properties in Thymus daenensis Celak. M.Sc Thesis. Tehran University, Iran. Sadeghi, S. H. R. & Rahimzadeh Holagh, N. (2007). Study on amount of transpiration in some of rangeland species. Research and Development, 76(3), 186-192. (in Farsi) Safari, S., Dehghani, H. & Choukan, R. (2007). Evaluation of maize inbred lines for drought tolerance based on resistance indices and biplot method. Iranian Journal of Agricultural Sciences, 38(2), 215-228. Taherkhani, T., Rahmani, N., Moradi Aghdam, A. & Zandi, P. (2011). Assessment of nitrogen levels on flower yield of calendula grown under different water deficit stresses using drought tolerant indices. Journal of American Science, 7(10), 591-598. Zabet, M., Hoseinzade, A. H., Ahmadi, A. & Khialparast, F. (2003). Effect of water stress on different traits and determination of the best water stress index in mung bean (vigna radiata). Iranian Journal of Agricultural Science, 34(4), 889-898. (in Farsi)
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56906 مقاله پژوهشی بررسی خصوصیات نتاج حاصل از دورگ‎گیری در گل سیکلامن (Cyclamen persicum Mill.) بررسی خصوصیات نتاج حاصل از دورگ‎گیری در گل سیکلامن (Cyclamen persicum Mill.) نادری روح انگیز استاد، گروه علوم باغبانی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج کرمانشاهانی محمد کارشناس ارشد، گروه علوم باغبانی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج فتاحی مقدم محمدرضا دانشیار، گروه علوم باغبانی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج خلیقی احمد استاد، گروه علوم باغبانی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج 22 12 2015 46 4 575 589 27 11 2013 30 08 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56906.html

‌ایجاد تنوع در گل و گیاهان زینتی همواره مد نظر به‏نژادگران است. به‌‏‏منظور دست‏یابی به این مهم در گیاه سیکلامن ایرانی، تلاقی کنترل‌شده بین ژنوتیپ‏های مختلف‏ آن با رنگ‏ و شکل‏های‏ متنوع گل و طرح‏های مختلف روی برگ صورت پذیرفت. نتایج نشان داد که دورگ‎گیری، عاملی برای ایجاد تنوع در ویژگی‏های گل بود‌، به‌طوری‏که رنگ و شکل گل در 15 ژنوتیپ نسبت به والدین متفاوت بود، اما نتاج از نظر شکل طرح‏های سفید روی برگ با والدین خود اختلاف چندانی نشان ندادند. دگرگشنی در مقایسه با خودگشنی تأثیر به‏سزایی در افزایش سرعت رشد و کاهش مدت زمان لازم برای ظهور اولین گل در گیاهان به‌دست‌آمده داشت. به‌طور میانگین نتاج حاصل از دورگ‎گیری دو ماه سریع‏تر به مرحلۀ گلدهی رسیدند. متوسط تعداد گل تولید‌شده نیز در این نتاج بالاتر از تعداد آن در والدین (با میانگین 7/1 برابر) بود. از نظر میزان رشد، در تعدادی از تلاقی‏ها نتاج نسبت به والدین برتری نشان ‏دادند و در تعدادی دیگر رشد آنها نسبت به والدین کمتر بود. به‌طورکلی، دورگ‎گیری در سیکلامن برای ایجاد گیاهانی متنوع با سرعت رشد بیشتر و نمای گلی مناسب، توصیه می‌شود.

 تزیینات روی برگ تعداد گل تلاقی رنگ‏ و شکل‏گل سرعت رشد Anderson, N. O. (2007). Flower Breeding and Genetics. Springer. 824 p. Arisumi, K. I., Matsuo, E., Sakata, Y., Sasaki, N. & Tsukiashi, K. (1988). Breeding for the Heat Resistant Rhododendrons III. The Feature of Seedling Growth of R. pseudochrysanthum, R. simiarum and Some of Their Hybrids. Memoirs of the Faculty of Agriculture, Kagoshima University, 24(19880315), 111-122. Boase, M. R.., Lewis, D. H., Davies, K. M., Marshall, G. B., Patel, D., Schwinn, K. E. & Deroles, S. C. (2010). Isolation and antisense suppression of flavonoid 3', 5'-hydroxylase modifies flower pigments and colour in cyclamen. BMC plant biology, 10(1), 107. Bsharat, M. (2013). In vitro cytotoxic and cytostatic activities of plants used in traditional arabic herbal medicine to treat cancer in Palestine. M. Sc. thesis. Faculty of Graduate Studies, An-Najah National University, Nablus, Palestine. Bragt, J. V. (1962). Chemogenetical investigations of flower colours in Cyclamen. Ph.D. Thesis. Wageningen, Veenman. Chis, M. L., Cantor, M. & Harsan, E. (2011). Realizations and New Trends in Breeding of Gladiolus hybridus at Fruit Research Station Cluj. Bulletin of University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine Cluj-Napoca. Horticulture, 67(1), 324-329. Dillen, W., Dijkstra, I. & Oud, J. (1996). Shoot regeneration in long-term callus cultures derived from mature flowering plants of Cyclamen persicum Mill. Plant cell reports, 15(7), 545-548. Dole, J. M. and Wilkins, H. F. (1999). Floriculture: Principles and Spicies. Prentice-Hall, New Jersey. Ecker, R. & Barzilay, A. (1993). Quantitative genetic analysis of growth rate in lisianthus. Plant breeding, 111(3), 253-256. Ferrari, T. E., Lee, S. S. & Wallace, D. H. (1981). Biochemistry and physiology of recognition in pollen-stigma interactions. Phytopathology, 71, 752-755. Fujino, K., Hashida, S. N., Ogawa, T., Natsume, T., Uchiyama, T., Mikami, T. & Kishima, Y. (2011). Temperature controls nuclear import of Tam3 transposase in Antirrhinum. The Plant Journal, 65(1), 146-155. Halevy, A. H., Whitehead, C. S. & Kofranek, A. M. (1984). Does pollination induce corolla abscission of cyclamen flowers by promoting ethylene production?. Plant physiology, 75(4), 1090-1093. Hussein, H. A. S. & Misiha, A. (1979). Diallel analysis for some quantitative characters in Petunia hybrida Hort. Theoretical and Applied Genetics, 54(1), 17-25. Iida, S., Morita, Y., Choi, J. D., Park, K. I. & Hoshino, A. (2004). Genetics and epigenetics in flower pigmentation associated with transposable elements in morning glories. Advances in biophysics, 38, 141-159. Itoh, Y., Higeta, D., Suzuki, A., Yoshida, H. & Ozeki, Y. (2002). Excision of transposable elements from the chalcone isomerase and dihydroflavonol 4-reductase genes may contribute to the variegation of the yellow-flowered carnation (Dianthus caryophyllus). Plant and cell physiology, 43(5), 578-585. Karlsson, M. G. (1997). Cyclamen. Tips on Growing Specialty Potted Crops. Ohio Florists’ Association, Columbus, 59-63. Krishnaswami, S. & Menon, P. M. (1973). Cytomorphological study on some garden forms and intraspecific hybrids of Barleria cristata L. South Indian Horticulture, 21 (2), 43-49. Naderi, R., Alaey, M., Khalighi, A., Hassani, M. E. & Salami, S. A. (2009). Inter-and intra-specific genetic diversity among cyclamen accessions investigated by RAPD markers. Scientia Horticulturae, 122(4), 658-661. Naderi, R., Jalali,N., Babalar, M. & Mirmasoumi, M. (2011). Estimate of Callus induction and somatic embryogenesis in cyclamen. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 4 (11), 699-702. Oliver, M. J., Ferguson, D. L. & Burke, J. J. (1995). Interspecific Gene Transfer (Implications for Broadening Temperature Characteristics of Plant Metabolic Processes). Plant physiology, 107(2), 429-434. Patil, S. S. D. & Rane, D. A. (1994). Heterosis studies in china aster. Journal of Maharashtra Agricultural Universities, 19, 418-420. Pesteil, C. (2013). Personal Communication. Morel cyclamen company from www. cyclamen. com. Raghava, S. P. S., Negi, S. S. & Ramachander, P. R. (1988). HeteroBeltiosis in China Aster [Callistephus Chinensis (L.) Nees]. Indian Journal of Horticulture, 45(3 and 4), 336-3. Reinhardt, S., Ewalda, A. & Hellwig, F. (2007). The Anatomy of the stigma and style from Cyclamen persicum (Mill.) cv.“pure white” and its relation to pollination success. Plant Biology, 9(1), 158-162. Singh, D. & Misra, K. K. (2009). Heterosis based selection among different diallelic crosses of marigold (Tagetes spp.) under Uttarakhand conditions. Journal of Hill Research, 22(2), 95-99. Song, C. Y. & Oh, D. (2010). Inheritance of several qualitative characters in Cyclamen persicum. Korean Journal of Breeding Science, 42(2), 188-194. Takamura, T. (2006). Cyclamen. In: Anderson, N. O. (Ed), Flower Breeding and Genetics. (pp. 459-478.) Springer, Netherlands. Takamura, T., Nakao, T. & Tanaka, M. (1996). Effects of light and temperature on the in vitro germination of cyclamen [Cyclamen persicum] pollen grains. Technical Bulletin of Faculty of Agriculture-Kagawa University, 48. 29-Tsaftaris, A. S. & Kafka, M. (1997). Mechanisms of heterosis in crop plants. Journal of crop production, 1(1), 95-111. Terakawa, T., Yamamura, T. & Murayama, T. (2008). Improvement of regeneration and transformation systems for Cyclamen persicum using somatic embryo culture. Plant Biotechnology, 25, 77-80. Van-Houwelingen, A., Souer, E., Mol, J. & Koes, R. (1999). Epigenetic Interactions among Three dTph1 Transposons in Two Homologous Chromosomes Activate a New Excision–Repair Mechanism in Petunia. The Plant Cell Online, 11(7), 1319-1336. Wellensiek, S. J. (1965). Note on hybrid vigour in cyclamen. Euphytica, 14(3), 237-237. Widmer, R. E. (1992). Cyclamen. In: Larson, R. A. (Ed), Introduction to Floriculture. (pp. 385-407.) Academic Press, New York, Boston. Yadav, H. K., Shukla, S. & Singh, S. P. (2007). Genetic divergence in parental genotypes and its relation with heterosis, F1 performance and general combining ability (GCA) in opium poppy (Papaver somniferum L.). Euphytica, 157(1-2), 123-130. Yamagishi, M. & Akagi, K. (2013). Morphology and heredity of tepal spots in Asiatic and Oriental hybrid lilies (Lilium spp.). Euphytica, 194, 325-334. Young-Soon, L. (2011). Development of new varieties flowering cyclamen. Korean Horticultural research, 11, 312-325.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56907 مقاله پژوهشی بررسی امکان کاهش پفی‌شدن میوۀ نارنگی انشو (Citrus unshiu) در شرق مازندران بررسی امکان کاهش پفی‌شدن میوۀ نارنگی انشو (Citrus unshiu) در شرق مازندران اخلاقی امیری نگین استادیار بخش تحقیقات گیاهان زراعی و باغی مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی مازندران، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری اسدی کنگرشاهی علی استادیار بخش تحقیقات خاک و آب مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی مازندران، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری 22 12 2015 46 4 591 600 27 12 2013 04 09 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56907.html

پفی‌شدن یک ناهنجاری فیزیولوژیکی در برخی ارقام مرکبات است که سبب جدا‌شدن پوست از گوشت، کاهش بازارپسندی‏، افزایش خسار‌ت‌های پوست و کاهش خاصیت انباری میوه می‏شود. به‏منظور امکان کاهش این ناهنجاری، آزمایشی در قالب طرح بلوک‏های کامل تصادفی با 11 تیمار: 1. شاهد؛ 2. مونو آمونیم ‏‏فسفات؛ 3. کلرور کلسیم؛ 4. نیترات ‏پتاسیم؛ 5. مونو آمونیم ‏فسفات + نیترات‏ پتاسیم؛ 6. GA3؛ 7. 2,4-D؛ 8. مونو آمونیم ‏فسفات + GA3؛ 9. نیترات ‏پتاسیم +2,4-D ؛ 10. نیترات ‏پتاسیم + GA3 و 11. 2,4-D+GA3 و 4 تکرار با درختان بالغ نارنگی انشو با پایۀ نارنج انجام شد. نتایج نشان داد که همۀ تیمارها سبب افزایش جرم ‏حجمی پوست میوه نسبت به شاهد شدند. بهترین تیمارها در افزایش جرم ‏حجمی پوست، تیمارهای ترکیبی GA3 یعنی تیمارهای 8، 10 و 11 و تیمار تغذیه‏ای مونو آمونیم ‏فسفات بودند که این تیمار بالاترین اندازۀ میوه را نیز تولید کرد. هرچه اندازه و وزن میوه‏ها بیشتر بود، تعداد میوه‏های با پوست پفی‌شده نیز بیشتر بود. غلظت مس در برگ، همبستگی مثبت و غلظت فسفر، همبستگی منفی و معناداری با عارضۀ پفی‌شدن نشان داد. بنابراین، با توجه به نتایج این آزمایش، توصیه می‏شود در زمان تغییر رنگ میوه از محلول‏پاشی‏ کودهای فسفره استفاده شود؛ در مقابل، استفاده از سموم با ترکیبات مسی تا حد امکان کاهش یابد.

 تنظیم‌کننده‏های رشد عناصر غذایی‌ میوۀ مرکبات ناهنجاری‏های فیزیولوژیکی Agusti, M., Almela, V. & Guardiola, J.L. (1981). The regulation of fruit cropping in mandarins through the use of growth regulators. In: Proceeding of International Society of Citriculture, pp. 216-220.  Agusti, M. & Almela, V. (1994). Satsuma mandarin fruit size increased by 2,4-DP. HortScience, 29, 279-281.  Agusti, M., Martinez-Fuentes, A. & Mesejo, C. (2002). Citrus fruit quality physiological basis and techniques of improvement. Agrociencia, 6, 1-16. Akhlaghi Amiri, N., Arzani, K. & Ebrahimi, Y. (2002). Application of synthetic auxins, a way to reducing citrus losses. Iranian Journal of Horticultural Science and Technology, 3(1-2), 59-66. (in Farsi) Arzani, K. & Akhlaghi Amiri, N. (2000). Effect of 2,4-D and NAA on fruit size and quality of Satsuma mandarin (Citrus unshiu) fruit. Iranian Scientific Journal of Seed and Plant, 16 (4), 450-459. (in Farsi) Erner, Y., Kaplan, Y., Artzi, B. & Hamon, M. (1993). Increasing citrus fruit size using auxins and potassium. Acta Horticulturae, 329, 112–119. Garcia-Luis, A., Agusti, M., Almela, V., Pomero, E. & Gurdiola, J.L. (1985). Effect of gibberellic acid on ripening and peel puffing in Satsuma mandarin. Scientia Hrticulturae, 27, 75-86. Gill, P.S., Sighn, S.N. & Dhatt, A.S. (2005). Effect of foliar application of K and N fertilizers on fruit quality of Kinnow mandarin. Indian Journal of Horticulture, 62, 282-284. Greenberg, J., Hertzano, Y. & Eshel, G. (1992). Effect of 2,4-D, Ethephon and NAA on fruit size of star-ruby red grape fruit. In: Proceeding of 7th Internatuinal Society for Citriculture. pp. 520-523. Greenberg, J., Kaplan, I., Fainzack, M., Egozi, Y. & Giladi, B. (2006). Effects of auxin sprays on yield, fruit size, splitting and the incidence of creasing of ‘Nova’ mandarin. Acta Horticulturae, 727, 249–254. Hardy, S. & Treeby, M. (2009). Quick references guide to mineral nutrients for citrus production. NSW Department of Primary Industries, Orange. Jackson, L.K. & Futch, S.H. (2003). Temple Tangor. Institute of Food and Agricultural Science, University of Florida. HS-181. 6.       Davies, F.S., Campbell, C.A., Zalman, G.R. & Fidelibus, M. (1999). Gibberellic acid application timing effects on juice yield and peel quality of Hamlin oranges. In: Proceeding of Florida State of Horticultural Society, 112, 22-24. 7.       El-hilali, F., Ait-Oubahou, A., Remah, A. & Akhayat, O. (2003). Chilling injury and peroxidise activity changes in Fortune mandarin fruit during low temperature storage. Bulgaria Journal of Plant Physiology, 29(1-2), 44-54. 9.       Fidelibus, M.W., Teixeira, A.A. & Davies, F.S. (2002). Gibberellic acid applied to sweet oranges increases juice yield by reducing peel volume. In: Proceeding of Florida State of Horticultural Society, 115, 243-246. 16.    Jacobus, O.P. (2013). Fruit split and fruit size studies on Citrus. Thesis (MScAgric)--Stellenbosch University, http://hdl.handle.net/10019.1/79933 17. Kawase, K. & Hirai, M. (1983). Growth, sugar accumulation and puffiness of the mandarin peel during colouring. Journal of Japanese Society of Horticultural Science, 52 (3), 231-237. 18. Kuraoka, T. (1962). Histological studies on the fruit development of the Satsuma orange with special reference to peel-puffing. Memoirs of Ehime University, 8, 106-154. 19.    Kuraoka, T., Iwasaki, K. & Kadoya, K. (1966). Studies on peel puffing and levels of GA like substances and ABA in the peel of Satsuma mandarin (Citrus unshiu). In: Proceeding of Japanese Society of Horticultural Science, 43-44. 20.    Lester. G.E., Jifon, J.L. & Makus, D.J. (2010). Impact of potassium nutrition on food quality of fruit and vegetables: A condensed and concise review of the literature. Better Crops, 94 (1), 18-20. Lovatt, C.J. (1999). Management of foliar fertilization. Terra, 17 (3), 258-264. Morgan, K.T., Rouse, R.E., Roka, F.M., Futich, S.H. & Zekri, M. (2005). Leaf and fruit mineral content and peel thickness of ‘Hamlin’ Orange. In: Proceeding of Florida State Horticulture Society, 118, 19-21. Morris, G. (2006). Improving citrus fruit quality using Gibberellic acid (GA). Department of Agriculture and Food, Farmnote 149, the State of Western Australia. Mudau, F.N., Theron, K.I., Rabe, E. (2005). Rind texture and juice acid content of citrus SPP. As affected by foliar sprays of mono-potassium phosphate (MPP), Urea ammonium phosphate (UAP) and mono-ammonium phosphate (MAP). Stellenbosch University- Scopus Publication (6383).  Pozo, L., Kender, W.J., Burns, J.K., Hartmond, U. & Grant, A. (2000). Effects of gibberellic acid on ripening and rind puffing in Sunburst mandarin. In: Proceeding of Florida State Horticulture Society, 113, 102-105. Rastgar, S. & Rahemi, M. (2007). Evaluation of suitable time and concentration of GA3 and Isopropyl ester 2,4-D spraying on increasing of some characteristics of navel orange and Clementine mandarin. Journal of Agricultural and Natural Resources Science and Technology, 11(42), 197-208. Zekri, M. (2012). Overall report-Egypt assignment- multi county citrus agent- University of Florida (IFAS). 27.    Shah Beig, M.A. (1997). Reducing post harvest losses in citrus fruits by cooling, heat therapy, PE coating and modified atmosphere. Articles for Word Food Day, Ministry of Agriculture publication. 28.    Shi, X., Xu, J., Zhang, L., Fan, G. & Lin, M. (2010). Studies on the peel puffiness and storage of mature fruit in Satsuma mandarin. In: Proceedings of 11th International Citrus Congress, Wuhan, China, pp. 912-914.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56908 مقاله پژوهشی تأثیر کاربرد کود زیستی، نیتروژن و آزوکمپوست بر عملکرد اسانس و اجزای اسانس بادرشبی (Dracocephalum moldavica L.) تأثیر کاربرد کود زیستی، نیتروژن و آزوکمپوست بر عملکرد اسانس و اجزای اسانس بادرشبی (Dracocephalum moldavica L.) یوسف‌زاده سعید دانشجوی سابق دکتری، گروه زراعت، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران مدرس ثانوی سید علی محمد استاد، گروه زراعت، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران سفیدکن فاطمه استاد، بخش تحقیقات گیاهان دارویی و محصولات فرعی، مؤسسۀ تحقیقات جنگل‏ها و مراتع کشور غیاثی اسکویی مهدی دانشجوی دکتری، گروه زراعت، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران 22 12 2015 46 4 601 611 07 05 2013 06 09 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56908.html

به‏منظور ارزیابی تأثیر کود‏های بیولوژیک، آزوکمپوست و نیتروژن بر عملکرد اسانس و اجزای اسانس بادرشبی (Dracocephalum moldavica L.) آزمایشی به‏صورت فاکتوریل در قالب بلوک‏‏های کامل تصادفی در سه تکرار در سال زراعی 1388‌ـ 1389 در دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه تربیت مدرس (منطقۀ 1) و در مزرعۀ تحقیقاتی مرکز تحقیقات کشاورزی استان آذربایجان غربی (منطقۀ 2) اجرا شد. تیمار‏های آزمایشی شامل دو ژنوتیپ ( :G1جمعیت بومی و :G2 رقم (SZK-1، دو سطح باکتری (:B1تلقیح بذر با باکتری‏های ازتوباکتر + آزوسپیریلوم + سودوموناس و :B2عدم تلقیح) و پنج رژیم کودی (F1: 152 کیلوگرم اوره در هکتار، F2: 114 کیلوگرم اوره در هکتار + 85/3 تن در هکتار آزوکمپوست، F3: 76 کیلوگرم اوره در هکتار + 77/7 تن در هکتار آزوکمپوست،F4 : 38 کیلوگرم اوره در هکتار + 55/11 تن در هکتار آزوکمپوست و F5: 55/15 تن در هکتار) بودند. تیمار F3 در هر دو منطقه و در هر دو ژنوتیپ بیشترین مقدار و درصد ژرانیول و ژرانیال را تولید کردند. کاربرد تیمار تلفیقی 50 درصد کود اوره + 50 درصد آزوکمپوست در حالت تلقیح و عدم تلقیح با باکتری با کاهش مصرف نیتروژن، افزایش عملکرد و اجزای اسانس در جمعیت بومی بادرشبی می‏تواند جایگزینی مناسب برای کودهای شیمیایی باشد.

 تلقیح با باکتری رقم ژرانیول و ژرانیال Argyropoulou, C., Daferera, D., Tarantilis, P., Fasseas, C. & Polyssiou, M. (2007). Chemical composition and variation during development of the essential oil from leaves of Lippia citriodora H.B.K. (Verbenaceae). Biochemical Systematics and Ecology, 35, 831- 837. Ashraf, M., Qasim, A. & Zafar, I. (2006). Effect of nitrogen application rate on the content and composition of oil, essential oil and minerals in black cumin (Nigella sativa L.) seeds. Journal of the science of Food and Agriculture, 86, 871-876. Aziz, E. E. & El-Sherbeny S., E. (2003). Effect of some micro-nutrients on growth and chemical constituents of Sideritis montana as a new plant introduced into Egypt. Arab Universities Journal of Agriculture Science., Ain Shams University., Cairo, 12, 391- 403. Behera S. K. & Panda, R.K. (2009). Effect of fertilization and irrigation schedule on water and fertilizer solute transport for wheat crop in a sub-humid sub-tropical region. Agriculture, Ecosystems and Environment, 130, 141-155. Carruba, A., La Torre, R. & Matranga, A. (2002). Cultivation Trials of some Aromatic and Medicinal Plants in a Semi-arid Mediterranean Environment. Proceeding of 5th International Conference on edicinal and Aromatic Plants,10- 12Oct., Acta Horticulturae (ISHS), 576, 207-213? Chen, W. & Viljoen, A.M. (2010). Geraniol – A review of a commercially important fragrance material. South African Journal of Botany, in press. D'Antuono, L. F., Moretti, A. & Lovato, A.F.S. (2002). Seed yield, yield components, oil content and essential oil content and composition of Nigella sativa L. and damascena. Industrial Crops and Products,15, 59-69. Das, K., Dang, R., Shivananda, T.N. & Sekeroglu, N. (2007). Influence of bio-fertilizers on the biomass yield and nutrient content in Stevia rebaudiana Bert. grown in Indian subtropics. Journal of Medicinal Plants Research, 1(1), 005-008. Domokos, J., Peredi, J. & Halasz-Zelnik, K. (1994). Characterization of seed oils of Dragon head (Dracocephalum moldavica)and catnip (Nepeta cataria var. citriodora Balb.). Industrial Crops and Products, 3, 91-94. Dordas, C. & Sioulas, C. ( 2008). Safflower yield, chlorophyll content, photosynthesis, and water use efficiency response to nitrogen fertilization under rain-fed conditions. Industrial Crops and Products, 27, 75-85. Galambosi, B., Galambosi, Z. S., Perrala, R. & Reppcak, M. (2002). Yield and quality of selected herb cultivars in Finland. Acta Horticulturae, 576, 139-149. Gharib, F., A. Moussa, L., A. & Massoud, O. N. (2008). Effect of compost and bio-fertilizers on growth, yield and essential oil of sweet marjoram (Majorana hortensis) plant. International Journal of Agriculture and Biology, 381-387. Hamidi, A. (2006). Agroecological aspect of bioferyilizers on grain and silage fooder yield of late maturity maiz (Zea mays) hybrids. Ph.D. Thesis. University of Tarbiat Modares, Iran. (in Farsi) Harridy, I. M. A., Soliman, S. G. I. & Mervat, T.A. (2001). Physiological, chemical and biological studies on Lemongrass Cymbopogon citratus (DC) stapf in response to diazotrophic bacteria, Mansoura University Journal of Agricultural Sciences, 26, 6131-6152. Hendawy, S. F. (2008). Comparative Study of Organic and Mineral Fertilization on Plantago arenaria. Plant Journal of Applied Sciences Research, 4(5), 500-506. Holm, Y. & Hiltunen, R. (1988). Capillary gas chromatographic_mass spectrometric determination of the flavor composition of Dragonhead (Dracocephalum moldavica L.). Flavour and Fragrance Journal, 3, 109-112. Hussein, M. S., El-Shrbeny, S. E., Khlil, M. Y., Naguib, N. Y. & Aly, S.M. (2006). Growth characters and chemical constituents of Dracocephalum moldavica L. plants in relation to compost fertilizer and planting distance. Scientica Horticulturae, 108, 322-331. Idris, M. (2003). Effect of integrated use of mineral, organic N and Azotobacter on yield, components and N-nutrition of wheat (Triticum aestivum, L.) Pakistan Journal of Biological Sciences, 6, 539-543. Kakasy, A., Z. Lemberkovics, E., Simandi, B., Lelik, L., Hethelyi, E., Antal, I. & Szoke, E. (2006). Comparative study of traditional essential oil and supercritical fluid extracts of Moldavian dragonhead (Dracocephalum moldavica L.). Flavour and Fragrance Journal, 21, 598-603. Kalra, A. (2003). Organic cultivation of Medicinal and aromatic plants. A hope for sustainability and qualility enhancement. Journal of Organic Production of Medicinal, Aromatic and Dye- Yielding Plants (MADPs). FAO, p. 198. Kandeel, A. M., Naglaa, S. A. T. & Sadek, A. (2002). Effect of biofertilizers on the growth, volatile oil yield and chemical composition of Ocimum basilicum L. plant. Annals of Agricultural Science, Ain Shams University, Cairo, 47, 351-371. Melero, M., Vanderlinden, K., Ruiz., J. C. & Madejon, E. (2008). Long-term effect on soil biochemical status of a Vertisol under conservation tillage system in semi-arid Mediterranean conditions. European journal of soil biology, 44, 437-442. Naguib, N.Y. (2003). Impact of mineral nitrogen fertilizer and organic compost on growth, herb and chemical composition of German chamomile (Chamomilla recutita L.) Rausch. Egyptian Journal of Applied Sciences, 18, 301-323. Omidbaigi, R. Borna, F. & Inotai, K. (2009). Sowing Dates Affecting on the Essential Oil Content of Dragonhead (Dracocephalum moldavica L.) and its Constituents. Journal of Essential Oil Bearing Plants, 12(5), 580-585. Ozguven, M., Ayanoglu, F. & Ozel, A. (2006). Effects of nitrogen rates and cutting times on the essential oil yield and components of Origanum syriacum L. var. bevanii. Journal of Agronomy, 5, 101-105. Ozguven, M., Kirpik, M. & Sekeroglu, N. (2002). Determination of the optimal sowing time and nitrogen fertilization for lavender (Lavandula angustifolia Mill.) in the C¸ukurova conditions. In: Proceedings of the workshop on agricultural and quality aspects of medicinal and aromatic plants, Adana, Turkey. 217-223. Ozguven, M.. Sener, B.. Orhan, I.. Sekeroglu, N.. Kirpik, M.. Kartal, M.. Pesin, I. & Kaya, Z. (2008). Effects of varying nitrogen doses on yield, yield components and artemisinin content of Artemisia annua L. industrial crops and products, 27, 60-64. Ram, M., Ram, D. & Roy, S. K. (2003). Influence of an organic mulching on fertilizer nitrogen use efficiency and herb and essential oil yields in geranium (Pelargonium graveolens). Bioresource Technology, 87, 273-278. Ram, M. & Kumar, S. (1997). Yield improvement in the regenerated and transplanted mint (Mentha arvensis) by recycling the organic wastes and manures. Bioresource Technology, 59, 141-149. Rao, BRR. (2001). Biomass and essential oil yields of rainfed palmaroza (Cymbopogon martinii (Roxb) wats var. motia Burk) supplied with different levels of organic manure and fertilizer nitrogen in semi-arid tropical climate. Industrial Crops and Products, 14, 171-178. Sangwan, N., S. Farooqi, A., H., A. Shabih, F. & Sangwan, R.S. (2001) . Regulation of essential oil production in plants. Plant Growth regulation, 34, 3-21. Santos-Gomes, P. C., Fernandes-Ferreira, M. & Vicente, A. M. S. (2005). Composition of the essential oils from flowers and leaves of Vervain (Aloysia triphylla (L’Herit.) Britton) grown in Portugal. Journal of Essential Oil Research, 17, 73-78. Sekeroglu, N. & Ozguven, M. (2006). Effects of different nitrogen doses and plant densities on yield and quality of Oenothera biennis L. grown in irrigated lowland and un-irrigated dryland conditions. Turkish Journal of Agriculture & Forestry, 30, 125-135. Sifola, M.I. & Barbieri, G. (2006). Growth, yield and essential oil content of three cultivars of basil grown under different levels of nitrogen in the field. Scientia Horticulturae, 108, 408-413. Sonboli, A., Mojarrad, M., Gholipour, A., Ebrahimi, S. N. & Arman, M. (2008). Biological activity and composition of the essential oil of Dracocephalum moldavica L. grown in Iran. Natural Product Communications, 3(9), 1547-1550. Tanu, A. & Prakash, A. (2004). Effect of different organic manures/composts on the herbage and essential oil yield of Cymbopogon winterianus and their influence on the native AM population in a marginal alfisol Bioresource. Technology, 92, 311-319. Violent, H. G. M. & Portugal, V. O. (2007).Alternation of tomato fruit quality by root inoculation with plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): Bacillus subtilis BEB-13bs. Scientia Horticulturae, 13, 103-106. Zarfeshan, M. (2008). Preparing climate and soil requirement tables for land suitability evaluation of cumin seed cultivation in iran based on fao frame work method.M. Sc. Thesis. University of Tarbiat Modares, Iran. (in Farsi)
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56909 مقاله پژوهشی بررسی اثر سیستم کشت، رقم و محلول‌های غذایی مختلف بر برخی از پارامترهای رویشی و فیزیولوژیکی گیاه سیب ‏زمینی بررسی اثر سیستم کشت، رقم و محلول‌های غذایی مختلف بر برخی از پارامترهای رویشی و فیزیولوژیکی گیاه سیب ‏زمینی روستا حمیدرضا دانشیار، گروه علوم باغبانی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ولی عصر (عج) رفسنجان رشیدی مجید دانشجوی سابق کارشناسی ارشد گروه علوم باغبانی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ولی عصر (عج) رفسنجان 22 12 2015 46 4 613 622 27 04 2014 13 09 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56909.html

هواکشت، فناوری جدیدی برای تولید ریزغدة‌ سیب‌زمینی محسوب می‌شود. به منظور شناسایی محلول غذایی و رقم سیب‌ز‌مینی مناسب برای تولید ریزغده در سیستم هواکشت و مقایسة آن با سیستم هیدروپونیک کلاسیک، آزمایشی به‌صورت فاکتوریل با سه فاکتور سیستم کشت (هیدروپونیک کلاسیک و هواکشت)، محلول غذایی (محلول چنگ و همکاران، APCoAB و محلول هیدروپونیک تجاری اصفهان)، و سه رقم سیب‏زمینی (مارفونا، سانتانا و مورن) انجام شد. صفات تعداد برگ، سطح برگ، طول استولون، وزن خشک ساقه و ریشه، محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی، حداکثر عملکرد کوانتومی فتوسیستم 2 (Fv/Fm)، شاخص کارایی فتوسنتزی (PI)، ارزیابی شدند. نتایج نشان داد که گیاهان سیستم هواکشت بدون ارتباط به نوع رقم و محلول غذایی در مقایسه با گیاهان سیستم هیدروپونیک کلاسیک افزایش درخور توجهی در پارامترهای رویشی و فیزیولوژیکی نشان دادند که احتمالاً به دلیل دسترسی بهتر به عناصر غذایی و هوادهی کامل ریشه‌ها بود. به‌طوری‏که وزن خشک ریشه و بخش‏های هوایی گیاه و محتوای رنگدانه‌های فتوسنتزی در سیستم هواکشت بالاتر از سیستم هیدروپونیک کلاسیک بود. همچنین، گیاهان تغذیه‌شده با محلول تجاری هیدروپونیک اصفهان در مقایسه با محلول چنگ و همکاران و محلول APCoAB رشد رویشی بیشتری داشتند، که به دلیل بالا بودن نیتروژن در این محلول غذایی بود.

 ریزغده کشت بدون خاک هواکشت Anonymous. (2008). International Potato Center, Lima, Peru, Website at http//www.cipotato.org/potato/potato.htm. Arnon, D. I. (1949). Copper enzymes in isolated chloroplast polyphenol oxidase in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24, 1-15. Chang, D. C., Park, C. S. & Kim, S. Y. (2008). Physiological growth responses by nutrient in aeroponically grown potatoes. American Journal of Potato Research, 85, 315-323. Cho, Y. D., Kang, S. G., Kim, Y. D., Shin, G. H. & Kim, K. T. (1996). Effects of culture systems on growth and yield of cherry tomatoes in hydroponics. Journal of Agricultural Science, 38, 563-567. Christie, C. B. & Nichols, M. A. (2004). Aeroponics a production system and research tool. Acta Horticulturae, 648, 185-190. Correa, R. M., Pinto, J. E. B. P., Pinto, C. A. B. P., Faquin, V., Reis, E. S., Monteiro, A. B. & Dyer, W. E. (2008). A comparison of potato seed tuber yields in beds, pots and hydroponic systems Horticultural Science, 116, 17-20. Fascella, G. & Zizzo, G.V. (2007). Preliminary results of aeroponic cultivation of Anthurium andreanum for cut flower production. Acta Horticulturae, 747, 233-240. Hayden, A. L., Brigham, L. A. & Giacomelli, G. A. (2004). Aeroponic cultivation of ginger (Zingiber officinalis) rhizomes. Acta Horticulturae, 659, 397-402. He, J. & Lee, S. K. (1998). Growth and photosynthetic responses of three aeroponically grown lettuce cultivars (Lactuca sativa L.) to different rootzone temperatures and growth irradiances under tropical aerial conditions. Journal of Plant Physiology, 152, 387-391. Hermans, C., Johnson, G. N., Strasser, R. J. & Verbruggen, N. (2004). Physiological characterisation of magnesium deficiency in sugar beet: acclimation to low magnesium differentially affects photosystems I and II. Planta, 220(2), 344-355. Ian, J., Bingham, A., Glyn Bingoush, A. & Robert, M. (2010). Soil compaction-n interaction in barley: Root growth and tissue composition, Soil and Tillage Research, 106, 241- 246. Kaftan, D., Brumfeld, V., Nevo, R., Scherz, A. & Reich, Z. (2002). From chloroplasts to photosystems: in situ scanning force microscopy on intact thylakoid membranes. Journal of Experimental botany, 21, 6246-6253. Kang, J.G., Yang, S.Y. & Kim, S.Y. (1996). Effects of nitrogen levels on the plant growth, tuberization and quality of potatoes grown in aeroponics. Journal of the Korean Socirty for HortScience, 37, 761-766. Khalilian, A., Hood, C. E., Palmer, J. H., Garner, T. H. & Bathke, G. R. (1991). Soil compaction and crop response to wheat/soybean inter seeding, Transactions of the American Society of Agricultural Engineers, 34(6), 2299-2303. Molitor, H. D., Fischer, M. & Popadopoulos, A. P. (1999). Effect of several parameters on the growth of chrysanthemum stock plants in aeroponics. Volume I. Acta Horticulturae, 481, 179-187. Movahhedi, Z. (2011). Investigation of the effect of environmental factors on minituber induction of potato in aeroponic system. Ph.D. Thesis, Tarbiat Modares University, Iran. (in Persian) Nenova, V. (2006). Efect of iron supply on growth and photosystem II efficiency of pea plants. General and Applied Plant Physiology, Special Issue, 81-90. Otazu, V. (2010). Manual on quality seed potato production using aeroponics. International potato Centre (CIP). Lima, Peru. 44 pp. Park, H. S. & Chiang, M. H. (1997). Effects of form and concentration of nitrogen in aeroponic solution on growth, chlorophyll, nitrogen contents and enzyme activities in Cucumis sativus L. Plant Journal of the Korean Society for Horticultural Science, 38(60), 642-646. Pestana, M., Vaennes, A. and Araújo Faria, E. (2003). Diagnosis and correction of iron chlorosis in fruit trees: a review. Journal of Food Agriculture and Environment, 1(1), 46-51. Ranalli, P., Bassi, F., Ruaro, G., Del Re, P., Di Candilo, M. & Mandolino, G. (1994). Microtuber and mini-tuber production and field performance compared with normal tubers. Potato Research, 37, 383-391. Rizza, F., Pagani, D., Stanca, A. M. & Cattivelli, L. (2001). Use of chlorophyll fluorescence to evaluate the cold acclimation and freezing tolerance of winter and spring oats. African Journal of Agricultural Research, 120, 389- 396. Rolot, J., Seutin, H. & Michelant, D. (2002). Production de minituber cules depomme de terre par hydroponie. Biotechnology Agronomy Society and Environment, 6(3), 155-161. Shangguan, Z., Shao, M. & Dyckmans, J. (2000). Effects of nitrogen nutrition and water deficit on net photosynthetic rate and chlorophyll fluorescence in winter whet. Journal of plant physiology, 156, 45-51. Soffer, H. & Burger, D. W. (1988). Effects of dissolved oxygen concentration in aero-hydroponics on the formation and growth of adventitious roots. Amerrican Journal of potato Research, 113, 218-221. Strasser, R. J., Srivastava, A. & Tsimilli-Michael, M. (2000). The fluorescence transient as a too to characterize and screen photosynthetic samples. Photosynthesis Research, 94, 445-483. Struik, P. C. & wiersema, S. G. (1999). Seed potato technology. Wagemingen Pers, Wagemingen, Plant Cell, Tissus and Organ Culture, 65, 173-174. Taiz, L. & Zeiger, E. (2006). Plant Physiology. Sinauer Associates, (3rd ed). Tukaki, L. & Mahler, R. L. (1989). Evaluation of potting mix composition on potato plantlet tuber production under greenhouse conditions. Journal of Plant Nutrition, 12, 1055-1068. Wan, W. Y., Cao, W. & Tibbitts, T. W. (1994). Tuber initiation in hydroponically grown potatoes by alteration of solution pH. Horticultural Science, 29, 621-623. Weathers, P. J. & Zobel, R. W. (1992). Aeroponics for the culture of organisms, tissues and cells. Biotechnology Advances, 10(1), 93-115.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56910 مقاله پژوهشی تاثیر برخی تیمارهای شیمیایی و هورمونی بر شکستن خواب بذر گونه های بادام و هلو (Prunus spp) تاثیر برخی تیمارهای شیمیایی و هورمونی بر شکستن خواب بذر گونه های بادام و هلو (Prunus spp) رسولی موسی استادیار گروه مهندسی علوم باغبانی و فضای سبز دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه ملایر توکلی بنیزی رضا دانشجوی سابق دکتری گروه اصلاح نباتات، دانشکدۀ کشاورزی، واحد علوم و تحقیقات تهران ایمانی علی دانشیار بخش باغبانی مؤسسۀ اصلاح و تهیۀ نهال و بذر کرج 22 12 2015 46 4 623 635 31 10 2013 13 09 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56910.html

در این پژوهش جوانه‏زنی بذرهای گونه‏های مختلف جنس Prunus شامل Prunus communis L.، Prunus scoparia Spach، Prunus haussknechtii Bornm وPrunus persicaL. مطالعه شد. برای این کار ابتدا، بذرهای بالغ بدون پوشش پوستۀ چوبی به‏مدت 30 دقیقه تحت تیمار تترامتیل‏ تیورام ‏دی‏سولفید‌ 2 درصد‌ ضد ‏عفونی شدند. بذرهای مربوط به هر گونه در سه گروه (هر گروه حاوی 90 بذر در سه تکرار 30 تایی) تقسیم شدند و هر گروه پس از تیمار با شاهد (آب مقطر)، هورمون اسید جیبرلیک (250 و500 میلی‌گرم در لیتر) و آب اکسیژنه (5/0 و 1 درصد) در پرلیت مرطوب و در دمای 7 سانتی‌گراد به‌‏مدت 10 هفته به‏منظور بررسی و ثبت درصد جوانه‏زنی در هر هفته چینه‌سرمایی شدند. طی مدت انبار‏مانی، تعداد بذرهای جوانه‏زده، درصد جوانه‏زنی، میانگین زمان جوانه‏زنی و میانگین سرعت جوانه‏زنی ثبت شد. نتایج نشان داد بین گونه‏های مطالعه‌شده از نظر زمان جوانه‏زنی تفاوت معنا‏داری وجود داشت به‏طوری‏کهP. communis L. و P. persicaL. به‏ترتیب ‌کمترین و بیشترین زمان برای شکستن خواب و جوانه‏زنی بذرها در بین گونه‏های ‌مطالعه‌شده را داشتند‌. غلظت‌های مختلف آب اکسیژنه و اسید جیبرلیک روی بذر هر کدام از گونه‏های مطالعه‌شده اثر معنا‏داری در شکست خواب آنها داشت. بعد از پنج هفته، تیمار‏های آب اکسیژنۀ 5/0 درصد، اسید جیبرلیک500 و 250 میلی‌گرم در لیتر به‏ترتیب بیشترین تأثیر را در شکستن خواب بذر گونه‏های P. scoparia(68 درصد جوانه‏زنی)، P. communis L (60 درصد جوانه‏زنی)، P. haussknechtii (42 درصد جوانه‏زنی) و P. persica(34 درصد جوانه‏زنی) داشتند در‌حالی‏که در تیمار شاهد بذر هیچ‌کدام از گونه‏ها جوانه نزدند.

 آب اکسیژنه اسید جیبرلیک جوانه‏زنی‌ خواب بذر گونه‏هایی از Prunus Agrawal, P.K. & Dadlani, M. (1995).Techniques in seed science and technology. Second edition. South Asian Publishers New Delhi International Book Company Absecon Highlands, 109-113. Bewley, J.D. & Black, M. (1994). Seeds physiology of development and germination. Second Edition. New York, Plenum Press: 445 pages. Cetinbas, M. & Koyuncu, F. (2006). Improving germination of Prunus avium L. seedsby gibberellic acid, potassium nitrate and thiourea. Horticulture Science, 33, 119-123. Diaz, D.H. & Martin, G.C. (1972). Peach seed dormancy in relation to endogenous inhibitors and applied growth substances. Journal of the American Society for Horticultural Science, 97, 652-654. Du Toit, H.G., Jacobs, G. & Strydom, D.K. (1979). Role of various seed parts in peach seed dormancy and initial seedling growth. Journal of the American Society for Horticultural Science, 104, 490-492. Frisby, J.W. & Seeley, S.D. (1993).Chilling of endodormant peach propagules: seed germination and emergence. Journal of the American Society for Horticultural Science, 118, 248-252. Garcia-Gusano, M., Martinez-Gomez, P. & Dicenta, F. (2004). Breaking seed dormancy in almond (Prunus dulcis (Mill.) D.A. Webb). Scientia Horticulturae, 99, 363-370. Ghayyad, M., Kurbysa, M. & Napolsy, G. (2010). Effect of endocarp removal, gibberelline, stratification and sulfuric acid on germination of Mahaleb (Prunus mahaleb L.) seeds. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences, 9(2), 163-168. Grigorian, V. (1972).L’embryogenèse chez l’Amandier (Prunus amygdalus Batsch) étude comparé de la dormances des graines et de la dormances des bourgerons végétatifs. Ph.D. Dissertation. University of Bourdeaux, Bourdeaux, France, 144 pp. Grisez, T.J., Barbour, J.R. & Karrfalt, R.P. (2008). Prunus L. cherry, peach and plum, 875-890 p. In: Bonner FT, Karrfalt RP (Eds.). Woody plant seed manual. Agriculture Handbook No. 727, USDA Forest Service, Washington, DC. Gusano, G.M., Martinez-Gomez, P. & Dicenta, F. (2004). Breaking seed dormancy in almond (Prunus dulcis (Mill.) D.A. Webb). Scientia Horticulturae, 99, 363-370. Hartmann, H.T. Kester, D.E., Davies, F. J. & Geneve, R.L. (1997). Plant Propagation Principles and Practices. Sixth Edition. New Jersey, Prentice Hall. Iliev, N., Petrakieva, A. & Milev, M. (2012). Seed dormancy breaking of wild cherry (Prunus avium L.) seeds. Forestry Ideas, 17(1), 28-36. Kafkas, K.N. (1998). The effects of scarification, stratification angGa3 treatments on germination of seed and seedling growths in selected P. khinjuk types. Acta Horticulturae, 470, 454-542. Kester, D.E., Raddi, P. & Assay, R.N. (1977). Correlation of chilling requirements for germination, blooming and leafing within and among seedling populations of almond. Journal of the American Society for Horticulture Science, 102, 145-148. Lin, C.F. & Boea, A. (1972). Effects of some endogenous and exogenous growth regulators on plum seed dormancy. HortScience, 97, 41-44. Martinez-Gómez, P. & Dicenta, F. (2001). Mechanisms of dormancy in seeds of peach (Prunus persica L. Batsch) cv. GF305. Scientia Horticulturae, 91, 51-58. Mehanna, H.T. & Martin, G.C. & Nishijuma, C. (1985). Effects of temperature, chemical treatments and endogenous hormone content on peach seed germination and subsequent seedling growth. Scientia Horticulturae, 27, 63-73. Nikolaeva, M.G. (1977). Factors controlling the seed dormancy pattern, 51-74 p. In: Khan AA (Ed.) The physiology and biochemistry of seed dormancy and germination. North-Holland, Amsterdam/New York. Pipinis, E., Milios, E., Kiamos, N., Mavrokordopoulou, O. & Smiris, P. (2012). Effect of Pretreatments on Seed Germination of Prunus mahaleb L. Notulae Botanicae Horti AgrobotaniciCluj-Napoca,40(2), 183-189. Powell, L.E. (1987). Hormonal aspects of bud and seed dormancy in temperate-zone woody plants. HortScience, 22, 845-850. Rouhi, V., Ranjbar, A. & Van Damme, P. (2002). Effects of gibberellic acid and temperature on germination of Amygdalus scoparia Spech seeds. Options Méditerranéennes, 63, 397-401. Seeley, S.D., Ayanoglu, H. & Frisby, J.W. (1998). Peach seedling emergence and growth in response to isothermal and cycled stratification treatments reveal two dormancy components. Journal of the American Society for Horticultural Science, 123,776-780. Tavakoli, R., Imani, A. & Zarifi, K. (2009). Breaking seed dormancy in some of almond species and peach. V International Symposium on Pistachios and almonds. Sanliurfa,Turkey. (Abstract book). Tewari, B., Tewari, A., Shah, S., Pande, N. & Singh, R.P. (2011). Physical attributes as indicators of seed maturity and germination enhancement in Himalayan Wild Cherry (Prunus cerasoides D. Don.). New Forests, 41, 139-146. Yang, Q.H., Ye, W.H. & Yin, X.J. (2007). Dormancy and germination of Areca triandra seeds. Scientia Horticulturae, 113, 107-111. Young, J.A. & Young, C.G. (1992). Seeds of woody plants in North America Dioscorides. Portland, Oregon. Zeinalabedini, M., Majourhat, K., Khayam-Nekoui, M., Hernández, J.A. & Martínez-Gómez, P. (2009). Breaking seed dormancy in long-term stored seeds from Iranian wild almond species. Seed Science Technology, 37(2), 267-275. Zhou, L., Wu, J. & Wang, S. (2003). Low-temperature stratification strategies and growth regulators for rapid induction of Paris polyphylla var. yunnanensis seed germination. Plant Growth Regulator, 40, 179-183.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56911 مقاله پژوهشی بررسی اثر غلظت کلسیم در محلول غذایی و بستر کشت بر عملکرد کمی و کیفی سوسن هیبرید آسیاتیک بررسی اثر غلظت کلسیم در محلول غذایی و بستر کشت بر عملکرد کمی و کیفی سوسن هیبرید آسیاتیک محمدی ترکاشوند علی دانشیار، گروه باغبانی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد رشت سیدی نجمه دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه باغبانی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد رشت 22 12 2015 46 4 637 647 28 01 2014 15 09 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56911.html

به‏منظور بررسی اثر کلسیم و بستر کشت بر رشد سوسن (هیبرید آسیاتیک سوسن رقم ترسور) و جذب عناصر غذایی، یک آزمایش فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با دو فاکتور غلظت کلسیم در محلول غذایی در سه سطح (2، 4 و 6 میلی‌مولار)، و پنج نوع بستر کشت (پرلیت 100 درصد، پرلیت 70 درصد + کوکوپیت 30 درصد، پرلیت 50 درصد + کوکوپیت 50 درصد، کوکوپیت 70 درصد + پرلیت 30 درصد و کوکوپیت 100 درصد) با سه تکرار طراحی و اجرا شد. ارتفاع گیاه، قطر ساقه، ارتفاع زایشی، تعداد جوانۀ گل، قطر گل، تعداد روز تا گلدهی، وزن خشک و ماندگاری گل و پس از عصاره‏گیری از مادۀ خشک اندام هوایی، غلظت نیتروژن، فسفر، پتاسیم، کلسیم و منیزیم اندازه‏گیری و جذب این عناصر محاسبه شد. نتایج نشان داد که در بستر ترکیب کوکوپیت و پرلیت، با افزایش درصد کوکوپیت در بستر کشت، ارتفاع ساقۀ گل‏دهنده و ارتفاع گیاه، قطر ساقه و گل و تعداد جوانۀ گل که در بازارپسندی سوسن از اهمیت بسزایی برخوردارند، افزایش شایان ملاحظه‌ای داشتند. در غلظت یکسان کلسیم، مخلوط 70 درصد کوکوپیت با 30 درصد پرلیت منجر به افزایش دوام گل شد، اما در بسترهای کوکوپیت و پرلیت خالص، افزایش غلظت کلسیم سبب افزایش ماندگاری گل شد.

 پرلیت تغذیۀ گیاه جذب زینتی سوسن هیبرید آسیاتیک عنصر غذایی کوکوپیت Bahr, L. & Comrton, M.E. (2004). Competence for invitro bulblet regeneration among eight Lilium genotype. HortScience, 39(1), 127-129. Bhattacharjee S.K. & Palalanikumar, S. (2002). Postharvest life of roses as affected by holding Solution. Journal of Ornamental Horticulture, 5(2), 37-38. Buchanan, B. B., Gruissem, W. & Jones, R. L. (2002). American Society of Plant Physiologists: Biochemistry & molecular biology of plants, Wiley & Sons Press, ISBN: 9780943088396. Capdeville, G.D., Maffia, L.A., Finger, F.L. & Batista, U.G. (2004). Pre-Harvest calcium sulfate applications affect vase life and severity of Gray Mold in cut roses. Science Horticulture, 103, 329-338. Chang, Y.C. (2002). Upper leaf necrosis on lilium cv. Star Gazer, a calcium deficiency disorder. Ph.D. Thesis, Cornell University, New York, USA. Chang, Y.C., Grace-Martin, K. & Miller, W.B. (2004). Efficacy of exogenous calcium applications for reducing upper leaf necrosis in lilium cv. Star Gazer. Horticulture Science, 39, 272-275. Change, Y.C., Alban, J.P. & Miller, W.B. (2008). Oriental hybrid lily vary in susceptibility to upper leaf necrosis. Acta Horticulturae, 766, 433-439. Chi, J.M., Lee, K.H. & Lee, E.M. (2005). Effect of calcium concentrations in fertilizer solution on growth of and nutrient uptake by Oriental hybrid lily ‘Casa Blanca’. Acta Horticalturae, 673, 755-760. FAO. (2009). FAO Statistical Database, (www.fao.org). Fascella, G. & Zizzo, G.V. (2005). Effect of growing media on yield and quality of soilless cultivated rose. Acta Horticulturae, 697, 133-138. Gabriels, R., Kerrsbulkand, W.V. & Engels, P. (1993). A rapid method for the determination of physical properties of growing media. Acta Horticulturae, 342, 243-247. Gerasopoulos, D. & Chebli, B. (1999). Effects of pre and postharvest calcium applications on the vase life of cut gerberas. Journal of Horticulture Science & Biology, 74, 78-81. Goos, R.G. (1995). A laboratory exercise to demonstrate nitrogen mineralization and immobilization. Journal of Natural Resources & Life Sciences Education, 24(1), 68-70. Grassoti, A., Nesi, B., Maletta, M. & Magnani, G. (2005). Effect of growing media and planting time on lily hybrids in soilless culture. Acta Horticulturae, 609, 395-399. Griffin, W.N. (2010). Evaluation of Whole Tree as an Alternative substrate Component in production of Greenhouse - Grown Annuals. M.Sc. Thesis, Auburn University, Auburn, Alabama, USA. Hogland, D.R. & Arnon, D.I. (1950). The water culture method for growing plants without soil. California Agricultural Experiment Station Publications. 347. Honfi, P., Gaspar, T. & Szabo-Erdelyi, E. (2010). Application of coir in cut lily production. Journal Kertgazdasag Horticulture, 42, 93-100. Ketsa, S. & Narkuba, N. (2001). Effect of aminoxyacetic acid and sucrose on vase life of cut roses. Acta Horticulturae, 543, 227-234. Khayyat , M., Nazari , F. & Salehi , H. (2007). Effects of different pot mixtures on pothos growth and development. American-Eurasian Journal of Agriculture and Environment Science, 2(4), 341-348. Luiz, A.M., Fernando, L.F. & Ulisses, G.B. (2005). Pre harvest calcium sulfate application affect vase life and severity of gray mold in cut roses. Science Horticulture, 103, 329-338. Nikrazm, R., Alizadeh Ajirlou, S., Khaligy, A. & Tabatabaei, S. (2011). Effects of different media on vegetative growth of two Lilium cultivars in soilless culture. Journal of Science and Technology of Greenhouse Culture, 2(6), 1-9. Noguera, P., Abad, M., Noguera, V., Puchades, R. & Maquieira, A. (2000). Coconut coir waste, a new and viable ecologically friendly peat substitute. Acta Horticulturae, 517, 279-286. Oki, L.R. & Lieth, J.H. (2004). Effect of changes in substrate salinity on the elongation of Rosa hybrida L. ‘Kardinal’ stems. Science Horticulture, 101, 103-119. Olympios, C.M. (1995). Overview of soilless culture advantage, constraints and perspective for its use in Mediterranean countries. Cahier Option, 31, 307-324. Paye, A.L., Miller, R.H. & Keeny, D.R. (1984). Methods of soil analysis, Part II, Chemical and microbiological properties. American Society of Agronomy, Inc. Soil Science of America, Inc. Madison, Wisconsin, USA. Rani, N., Kumar, R. & Dhatt, K.K. (2005). Effect of nitrogen levels and growing media on growth , flowering and bulb production of lilium cultivars. Journal of Ornamental Horticulture, 8(1), 36-40. Rezaei, A., Mobli, M., Etamdi, N., Khoshgoftarmanesh, H. & Bani Nasab, B. (2009). Effect of different growth media on cut roses. First National Congress of hydroponics and greenhouse production, 20-22 October 2009, 298-299. (In Farsi) Richard, M.P. (2004). Effect of nursery media particle size distribution on container- grown woody ornamental production. M.Sc. Thesis in horticulture Science, Faculty of the Louisiana state university. Robichaux, M. (2008). The effect of calcium or silicon on potted miniature roses or poinsettias. A thesis for degree of M.Sc. in the Agricultural and Mechanical College of Louisiana State University. Samiei, L., Khalighi, A., Kafi, M., Samavat, S. & Arghavani, M. (2005). An investigation of substitution of peat moss with palm tree celluloid wastes in growing Aglaonema (Aglaonema commutatum Cv. Silver Queen). Iranian Journal of Agricultural Science, 36(2), 503-509. (In Farsi) Shi, Z. Q., Jobin-Lawler, F., Gosselin, A., Turcotte, G., Papadopoulos, A. P. & Dorais. M. (2002). Effect of different EC management on yield, quality and nutraceutical properties of tomato grown under supplemental lighting. Acta Horticulturae, 580, 241-247. Shillo, R., Ding, M. Pasternak, D. & Zacca, M. (2002). Cultivation of cut flower and bulb species with saline water. Science Horticulture, 92, 41-54. Shiravand, D. &Rostami, F. (2008). Apartment and cut flowers. Sarv Press, Tehran, 259 p. (In Farsi) Singh, R. & Pradhan, K. (1981). Determination of nitrogen and protein by Kjeldahl method. In: Forage Evaluation Science. Pvt. Publishers Ltd., New Delhi, p. 23. Sonneveld, C. & Voogt, W. (2009). Plant nutrition of greenhouse crops. 1st Ed., Springer. Sosanan, S. (2007). Effect of Pre-and postharvest calcium supplementation on longevity of sunflower (Helianthus annuus cv. Superior sunset). Degree of M.Sc. in the department of Horticulture Louisiana University and Agricultural and mechanical college. Torre, S., Borochov A. & Halevy, A.H. (1999). Calcium regulation of senescence in roses. Physiology of Plant, 107, 214-219. Treder, J. (2008). The effect of cocopeat and fertilization on growth and flowering of Oriental lily cv. Star Gazer. Journal of Fruit and Ornamental Plant Research, 16, 361-370. Verdonck, O. & Gabriels, R. (1992). I.Reference method for the determination of physical properties of plant substrates. II.Reference method for the determination of chemical properties of plant substrates. Acta Horticulturae, 302, 169-179. Yau, P.Y. & Murphy, J. (2000). Biodegraded cocopeat as a horticultural substrate. Acta Horticulturae, 517, 275-278.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56912 علوم میوه تأثیر نوع پلی آمین بر انبارمانی میوه آلو، رقم ‘شابلون’ تأثیر نوع پلی آمین بر انبارمانی میوه آلو، رقم ‘شابلون’ شکراله فام صبا کارشناس ارشد، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تبریز حاجی لو جعفر دانشیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تبریز زارع نهندی فریبرز استادیار، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تبریز 22 12 2015 46 4 649 658 04 05 2014 22 10 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56912.html

در این آزمایش تأثیر سه نوع پلی‌آمین پوتریسین، اسپرمیدین و اسپرمین بر عمر پس از برداشت میوۀ آلو رقم ‘شابلون’ بررسی شد. میوه ها در محلول پلی‌آمین‌ها با دو غلظت 1 و 2 میلی‌مولار و نیز آب مقطر (تیمار شاهد) به‌مدت 5 دقیقه غوطه‌ور و در سردخانه‌ای با دمای 5/0± 5/1 درجۀ سانتی‌گراد و رطوبت نسبی 80‌ـ 85 درصد انبار شدند. آزمایش در قالب فاکتوریل بر پایۀ طرح کاملاً تصادفی با 7 تیمار و 6 زمان انبارداری در سه تکرار انجام شد. پس از شروع انبارداری، هر هفته یک بار میزان سفتی بافت، اسیدیتۀ قابل تیتراسیون و pH میوه ها، مواد جامد محلول و کاهش وزن اندازه‌گیری شد. همچنین میزان تولید اتیلن در سه هفته انبارداری و میزان فعالیت آنزیم پلی‌گالاکتروناز در هفتۀ اول و آخر انبارمانی مطالعه شد. پلی‌آمین‌ها به‌طور معنا داری تولید اتیلن را نسبت به میوه های شاهد کاهش دادند و سبب حفظ سفتی میوه ها شدند. در بین پلی‌آمین‌ها اسپرمین 2 میلی‌مولار، مؤثرترین نوع پلی‌آمین در حفظ سفتی بافت بود. این تیمار به همراه پوتریسین 2 میلی‌مولار و اسپرمیدین 1 میلی‌مولار در جلوگیری از تولید اتیلن نیز مؤثر واقع شدند، در‌حالی‌که در جلوگیری از فعالیت آنزیم پلی‌گالاکتروناز، تقریباً بین سه نوع پلی‌آمین اختلاف معنا‌داری مشاهده نشد. تیمار پلی‌آمین‌ها به‌طور معنا داری از کاهش وزن میوه‌ها در طول دورۀ انبارداری جلوگیری کرد.

 اتیلن پلی‌گالاکتروناز سفتی‌ عمر پس از برداشت کاهش وزن Ball, J.A. (1997). Evaluation of two lipid-based edible coatings for their ability to preserve postharvest quality of green bell peppers. Master Thesis. Faculty of the Virginia Polytechnic and state University, Blacksburg, Virginia, USA. Bors, N., Langebartels, C., Mitchel, C. & Sanderman, H. (1989). Polyamines as radical scavengers and protectants against ozone damage. Journal of Phytochemistry, 28, 1589-1595. Bradford, MM. (1976). A rapid and sensitive method for the quantization of microgram quantities of protein utilizing the principles of protein-dye binding. Journal of Annal Biochemical, 72, 248-254. Bregoli, A.M., Scaramagli, S., Costa, G., Sabatini, E., Ziosi, V., Biondi S. & Torrigiani, P. (2002). Peach (Prunus persica L.) fruit ripening: aminoethoxyvinylglycine (AVG) and exogenous polyamines affect ethylene emission and flesh firmness. Journal of Plant Physiology, 114, 472-481. Drolet, G., Dumbroff, E.B., Legge, R.L. & Thompson, J.E. (1986). Radical scavenging properties of polyamines. Journal of Phytochemistry, 25, 367-371. Heby, O. & Persson, L. (1990). Molecular genetics of polyamine synthesis in eukaryotic cells. Journal of Trends in Biochemical Sciences, 15, 153-158. Huber, DJ. (1983). The role of cell wall hydrolyses in fruit softening. Journal of Horticultural Review, 5, 169-219. Khan, A.S. Singh, Z., Abbasi, N.A. & Swinny, E.E. (2008). Pre or post-harvest application of putrescine and low temperature storage affect fruit ripening and quality of Agelino plum. Journal of Science of Food and Agriculture, 88, 1687-1695. Martinez-Romero, D., Serrano, M., Carbonell, A., Burgos, L., Riquelme F. & Valero. D. (2002). Effects of postharvest putrescine treatment on extending shelf life and reducing mechanical damage in apricot. Journal of Food Science, 67, 1706-1712. Martinez-Tellez, M.A., Ramos-Clamont, M.G., Gardea, A.A. & Vargas-Arispuro, I. (2002). Effect of infiltrated polyamines on polygalacturonase activity and chilling injury responses in Zucchini Squash (Cucurbita pepo L.). Journal of Biochemical and Biophysical Research Communications, 295(1), 98-101. Mirdehghan, S., Rahimi, M., Castillo, S., Martinez-Romero, D., Serrano, M. & Valero, D. (2007). Pre-storage application of polyamins by pressure or immersion improves shelf life of pomegranate stored at chilling temperature by increasing andogenous polyamine level. Journal of Post harvest Biology and Technology, 44(1), 26-33. Mostofi, Y. & Najafi, F. (2005). Laboratory analytical methods in horticultural science. Tehran University Publication. (In Farsi) Perez-Vicente, A., Martinez-Romero, D., Carbonell, A., Srrano, M., Riquelme, F., Guillen, F. & Valero, D. (2002). Role of polyamines in extending shelf life and reduction of mechanical damage during plum (Prunus Salicina Lind L.) storage. Journal of Postharvest Biology and Technology, 25(1), 25-32. Rahemi, M. (2005). Postharvest physiology: an introduction to physiology and handling of fruits, vegetables and ornamental plants (3rd ed.). Shiraz University Publication. (In Farsi) Serrano, M., Martinez-Romero, D. Guillen F. & Valero. D. (2003). Effects of exogenous putrescine on improving shelf life of four plum cultivar. Journal of Postharvest Biology and Technology, 30, 259-271. Sood, S. & Nagar, P.K. (2008). Post-harvest alteration in polyamins and ethylene in two diverse rose species. Journal of Acta Physiology Plant, 30, 243-248. Valero, D., Serrano, M., Martinea-Madrid, M.C. & Riquelme, F. (1997). Polyamines, Ethylen and physiochemical changes in low temperature-stored peach (Prunus Persica L. CV. Maycrest). Journal of Agriculture and Food Chemistery, 45, 3406-3410. Valero, D., Vicente, AP., Romero, DM., Castilo, S. & Guillen, FS. (2002). Plum storability improved after calcium and heat postharvest treatments. Journal of Food Science, 67, 2571-2575. Takahashi, T. & Kakehi, J.I. (2010). Polyamine: Ubiquitous polycations with unique roles in growth and stress responses. Journal of Annals of botany, 105, 1-6. Torrigiani, P., Bregoli, A. M., Ziosi, V., Scaramagli, S., Ciriaci, T., Rasori, A., Biondi, S. & Costa, G. (2004). Preharvest polyamine and AVG applications modulate fruit ripening in Stark Red Gold nectarines. Journal of Postharvest Biology and Technology, 33, 293-308. Zokaee Khosroshahi, M.R., Esna-Ashari, M., Ershadi, A. & Ahmadi. A. (2006). Effect of exogenous putrescine on post-harvest life of strawberry fruit, cultivar Selva. Journal of Agricultural research, soil, water and plant in agriculture, 6(1). (In Farsi). Zokaee Khosroshahi, M.R., Esna-Ashari, M. & Ershadi, A. (2007). Effect of exogenous putrescine on post-harvest life of strawberry (Fragaria ananassa Duch.) fruit, cultivar Selva. Journal of Scientia Horticulturae, 114, 27-32. Zokaee, Khosroshahi, M.R. & Esna-Ashari, M. (2008). Effect of putrescine on shelflife and postharvest physiology of strawberry, apricot, peach and cherry. Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources, 12(45). (In Farsi). Zokaee, Khosroshahi, M.R. & Esna-Ashari., M. (2008). Effect of exogenous putrescine treatment on the quality and storage life of peach (Prunus persica L.) fruit. Journal of Postharvest Technology and Innovation, 1, 278-287.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56913 علوم میوه غلظت عناصر معدنی ریشه و برگ چهار پایۀ دانهالی پسته تحت رژیم‏ های مختلف آبیاری غلظت عناصر معدنی ریشه و برگ چهار پایۀ دانهالی پسته تحت رژیم‏ های مختلف آبیاری قاسمی مصطفی دانشجوی سابق دکتری، گروه علوم باغبانی دانشگاه تربیت مدرس تهران ارزانی کاظم استاد، گروه علوم باغبانی دانشگاه تربیت مدرس تهران یداللهی عباس استادیار، گروه علوم باغبانی دانشگاه تربیت مدرس تهران حکم آبادی حسین استادیار، مؤسسۀ تحقیقات پستۀ کشور 22 12 2015 46 4 659 667 22 01 2014 28 07 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56913.html

‌این پژوهش به‏منظور بررسی اثر تنش خشکی روی رشد و غلظت عناصر معدنی برگ و ریشۀ چهار پایۀ دانهالی پسته شامل بادامی ‏ریز ‏زرند، قزوینی، سرخس و بنه انجام شد. تیمارهای آبیاری شامل 100 درصد نیاز آبی گیاه (شاهد)، 65 درصد نیاز آبی گیاه (تنش متوسط) و 30 درصد نیاز آبی گیاه (تنش شدید) بودند که 75 روز روی دانهال‌های چهار‌ماهۀ پسته اعمال شدند. در انتهای آزمایش، مقدار عناصر غذایی در برگ و ریشۀ گیاهان بررسی شد. نتایج نشان داد که تنش خشکی تأثیرات معنا‏داری روی بیومس و وضعیت مواد معدنی برگ و ریشۀ پایه‏های ‌مطالعه‌شده داشت. از نظر وزن خشک ساقه، ریشه و برگ، پایه‏های‌ بنه و بادامی ‏ریز ‏زرند کمتر تحت‌تأثیر خشکی قرار گرفتند. پایۀ بنه بیشترین مقدار عناصر فسفر و منگنز برگ و فسفر، پتاسیم و کلسیم ریشه را در شرایط تنش آبی نشان داد. پایۀ بادامی ‏ریز ‏زرند نیز بیشترین مقدار منیزیم برگ و ریشه را در شرایط تنش آبی داشت. پایۀ قزوینی بیشترین مقدار ازت، پتاسیم و مس برگ و آهن، مس و روی ریشه را در شرایط تنش آبی داشت. پایۀ سرخس نیز بیشترین مقادیر آهن برگ و ازت و منگنز ریشه را در شرایط تنش خشکی نشان داد. بر‌اساس نتایج می‏توان نتیجه‏ گرفت تنش خشکی تأثیرات منفی بر پایه‏های دانهالی پسته داشت و پایۀ بنه و بادامی ‏ریز ‏زرند نسبت به سایر پایه‏ها مقاومت بیشتری به تنش خشکی نشان دادند.

 بیومس‌ پسته پایه تنش آبی جذب عناصر‌ Bilger, H. W., Schreiber, U. & Lange, O. L. (1984). Determination of leaf heat- resistance-comparative investigation of chlorophyll fluorescence changes and tissue necrosis methods. Oecologia, 63, 256-262. Brown, P., Zhang, Q. & Ferguson, L. (1991). Nutrient uptake efficiencies of various pistachio rootstocks. In: California Pistachio Industry. Annual Report. pp. 158. Brown, P., Zhang, Q., Huang, Z. Holtz, B. & Hornung, C. (1999). Agronomic and economic responses of mature 'Kerman' pistachio trees to potassium applications in California. In: California Pistachio Industry. Annual Report. pp. 84-85. Chartzoulakis, K., Noitsakis, B. &Therios, I. (1993). Photosynthesis, Plant growth and dry matter distribution in kiwifruit as influenced by water deficits. Irrigation Science, 14, 1-5. Dubey, R.S. (1997). Photosynthesis in plants under stressful conditions. In: Handbook of Photosynthesis (Ed. Pessarakli, M.). Pp. 859-875. Marcel Dekker, New York. Fan, M. X. & Mackenzie, A. F. (1994). Corn yield and phosphorus uptake with bonded urea and phosphate mixtures. Soil Science Society of America Journal, 58, 249-255. Ferguson, L. (1995). Pistachio production. Center of Fruit and Nut Crop Research and Information. University of California at Davis. Department of Pomology, USA. pp: 160. Havlin, J. L., Beaton, J. D., Tisdale, S. L. & Nelson, W. L. (1999). Soil fertility and fertilizers: An introduction to nutrient management. Prentice-Hall, Inc., London, pp. 406-425. Hu, Y. &Schemidhalter, U. (2005). Drought and salinity: A comparison of their effects on mineral nutrition of plants. Journal of Plant Nutrition and Soil Science, 168, 541-549. Jabbari Orange, M. & Ebadi, A. (2010). Effect of supplemental irrigation on nutrient uptake, water relations and drought tolerance of sunflower cultivars in Ardabil conditions. Environmental stresses in crop Sciences, 3(2), 115-127. (In Farsi) Khalid, K. A. (2006). Influence of water stress on growth, essential oil, and chemical composition of herbs (Ocimum sp.). International Agrophysics, 20, 289-296. Martins, A. L. C., Batagha, O.C., Camargo, O.A. & Conarella, H. (2003). Corn yield and uptake of Cu, Fe, Mn and Zn from sewage sludge-amend soil with and without liming. Revista-Basilica-Deciencia, 27, 563-574. Rahimizadeh, M., Kashani, A., Zare Fizabady, A., Madani, H. & Soltani, E. (2010). Effect of micronutrient fertilizers on sunflower growth and yield in drought stress condition. Electronic Journal of Crop Production, 3 (1), 57-72. (In Farsi) Santos, M. S. & Alejo, N. O. (1994). Effect of water stress on growth, osmotic potential and solute accumulation in cultivars from chili pepper. Plant Science, 96, 21-29. Sayed, O.H. (2003). Chlorophyll flourscence as a tool in cereal research. Photosynthetica, 3, 321-330. Schenek, M. K. & Barber, S. A. (1979). Root characteristics of corn genotypes as related to P uptake. Agronomy Journal, 71, 921-924. Sinclair, W.B. (1984). The biochemistry and physiology of the lemon and other citrus fruits. University of California, Division of Agriculture and Natural Resources. Taiz, L. & Zeiger, E. (1998). Plant physiology. Sinauer Associates Inc. Publisher, Sonderland Massachusetts. 757p. Tavallali, V. & Rahemi, M. (2007). Effects of Rootstock on Nutrient Acquisition by Leaf, Kernel and Quality of Pistachio (Pistacia vera L.). American-eurasian journal of agricultural & environmental sciences, 2 (3), 240-246. Tekin, H. (2002). Deficiencies of nutrients and fertilization in pistachio. (in Turkish). In: Pistachio Research Institute Publication, 14, p. 33. Uriu, K. & Pearson, J. (1983). Diagnosis and correction of nutritional problems, including the crinkle leaf disorder. California Pistachio Industry, Annual Report. Wu, F. Z., Bao, W.K., Zhou, Z.Q. & Wu, N. (2009). Carbon accumulation, nitrogen and phosphorus use efficiency of Sophora davidii seedlings in response to nitrogen supply and water stress. Journal of arid environments, 73, 1067-1073. Xu, Y. L. &Yu, S. W. (1990). Energy consumption in plant adapting to salinity adverse habitat. Acta Phytophysiologica Sinica, 6, 70-73. Yin, X. & Vyn, T.Y. (2002). Soybean responses to potassium placement and tillage alternatives flowering no-till. Agronomy Journal, 94, 1367-1374. Yuncai, H. & Schmidhalter, U. (2005). Drought and salinity: A comparison of their effects on mineral nutrition of Plants. Journal of Plant Nutrition and Soil Science, 168, 541-549.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56914 مقاله پژوهشی تأثیر نانو اکسید سیلیس (SiO2) بر پرآوری درون شیشه‌ای سیب رقم گالا تأثیر نانو اکسید سیلیس (SiO2) بر پرآوری درون شیشه‌ای سیب رقم گالا اوستان صابر دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ارومیه ناصری لطفعلی دانشیار علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه ارومیه 22 12 2015 46 4 669 675 15 02 2014 29 09 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56914.html

سیلیسیوم اثر مفیدی بر رشد بسیاری از گیاهان دارد. این مطالعه با هدف بررسی اثر نانو‌‌سیلیس بر پرآوری و بهبود برخی صفات رشد سیب رقم گالا در شرایط درون‌شیشه‏ای انجام شد. به این منظور آزمایشی در قالب طرح کاملاً تصادفی با پنج سطح نانو‌اکسید سیلیس (صفر، 25، 50، 100و 200‏ میلی‌گرم در لیتر) در پنج تکرار اجرا و میانگین نتایج با آزمون چند‌دامنه‌ای دانکن مقایسه شدند. نتایج حاصل از این آزمایش نشان داد که با کاربرد نانو‌سیلیس وزن تر، وزن خشک، طول شاخه، تعداد شاخساره، تعداد گره، طول میان‌گره و شاخص کلروفیل در نمونه‏های حاوی نانو‌سیلیس افزایش یافت، که بیشترین افزایش‏ها در غلظت 100 میلی‌گرم در لیتر مشاهده شد. بر‌اساس نتایج این پژوهش به نظر می‏رسد برای افزایش سرعت رشد و پرآوری ریزنمونه‏های سیب رقم گالا می‌توان از 100 میلی‌گرم بر لیتر نانو‌سیلیس در محیط کشت موراشیگ و اسگوک استفاده کرد.

 ریزازدیادی شاخص کلروفیل محیط کشت موراشیگ و اسگوک Adatia, M. H. & Bestfor, R. T. (1986). The effect of silicon on cucumber plants grown in recirculating nutrition solution. Annals of Botany, 58, 343-35. Agarie, S., Agata, W., Uchida, H., Kubota, F. & Kaufman, P. B. (1996). Function of silica bodies in the epidermal system of rice (Oryza Sativa L.): Testing the window hypothesis. Journal of Experimental Botany, 47(299), 655-660. Agarie, S., Uchida, H., Agata, W., Kubota, F. & Kaufman, P. B. (1993). Effects of silicon on growth, dry matter production and photosynthesis in rice plant (Oryza sativa L.). Crop Production and Improvement Technology, (34), 225-234. Al-Aghabary, K., Zhu, Z. & Shi, Q. (2004). Influence of Silicon supply on chlorophyll content, chlorophyll fluorescence and antioxidative enzyme activities in tomato plants under salt stress. Journal of Plant Nutrition, 27, 2101-2115. Behtash, F., Tabatabaii, S. J., Malakouty, M. J., Sorour-Aldin, M. H. & Ustan, S. (2009). Effect of cadmium and silicon on growth and some physiological aspect of red beet. Journal of plant physiology and breeding, 2(1), 53-67. (in Farsi) Cherif, M. & Belanger, R. R. (1992). Use of potassium silicate amendments in recirculating nutrient solutions to suppress Pythium ultimumon Long English Cucumber. Plant Disease, 76(10), 1008-1011. FAO. (2009). [On-line] at URL:http://faostat.fao.org/site/567/Desktopdefault.aspx?PageID =567#ancor. Guo, Z. (2000). Synthesis of the needle-like silica nanoparticles by biomineral method. Chemical Journal of Chinease Universities, 21(6), 847-848. Jhanshah, S. & Najafi, N. (2011). Silicon functions in Olive plant. Zeitun, 31(217), 8-16. (in Farsi) Jiang, J. P. (2002). Physical and chemical properties and diagnosis of turf soils in golf courses. Acta Agrestia Sinica, 10(1), 59-62. Lee, C.W., Mahendra, S., Zodrow, K., Li, D., Tsai, Y.C., Braam, B., Pedro, J. & Alvarez, J. (2010). Developmental Phytotoxicity of Metal oxide Nanoparticles to Arabidopsis thaliana. Environmental Toxicology and Chemistry, 29(3), 669-675. Lin Bao, S.H., Qi, D.S., Hui, L.C., Jun, F.L., Chun, Q. S. & Min, Y. (2004). Effect of TMS (nanostructured silicon dioxide) on growth of Changbai larch seedlings. Journal of Forestry Research, 15(2), 138-140. Miller, G. & Senjan, R. (2006). The disruptive social impacts of nanotechnology. [On-line] at http://nano.foe.org.au Mohggeg, P., Shirvani, M. & Ghasemi, S. (2009). Effect of silicon application on growth and produce cucumber, two cultivar in hydroponic system. Journal of Science and techniques of greenhouse culture, 1(1) 39 -35. (in Farsi) Pyvast, G. h., Zaree, M. & Sanizadeh, H. (2009). Interaction of silicon and on salinity stress on Lettuce growth under NFT system condition. Agricultural Sciences and Technology Journal, Horticulture Science Specific, 22(1), 79-88. (in Farsi) Rahimi, Z., Kafi, M., Nazemi, A. & Khozaie, H. R. (2011). Effect of salinity and silicon on some morphophysiologic characters of Purslane (Portulaca oleracea L.). Iranian journal of medicinal and Aromatic plant, 27(3), 359-374. (in Farsi) Samuels, A. L., Glass, A. D. M., Ehret, D. L. & Menzies, J. G. (1993). The effects of silicon supplementation on cucumber fruit: Changes in surface characteristics. Annals of Botany, 72, 433-440. Wang, L. (1999). Bio mineralized nanostructured materials and plant silicon nutrition. Progress in Chemistry, 11(2), 119-128. Wang, L. (2001). Relationship between nanostructure SiO2 and occurrence of plant fungi. Journal of Huazhong Agricultural University, 20(6), 593-597. Wang, L. (2002a). Self-assembled bio mineralized structures constructed in plant cell walls. Acta Chimica Sinica, 60(6), 1144-1146. Wang, L. (2002b). Synthesis of ordered Biosilica Materials. Chinese Journal of Chemistry, 20(2), 107-110. Shan, L.B., Qi, D.S., Hui, L.C., Jun, F.L., Chun, Q.S. & Min, Y. (2004). Effect of TMS (nanostructured silicon dioxide) on growth of Changbai larch seedlings. Journal of Forestry Research, 15(2), 138-140.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56915 مقاله پژوهشی تأثیر کاربرد پس از برداشت اسید سالیسیلیک و ژل آلوئه‏ ورا بر عمر پس از برداشت و ویژگی آنتی‏ اکسیدانی انگور قزل‌ازوم اصغری محمدرضا استادیار، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ارومیه احدی لیلا دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ارومیه ریایی سجاد دانشجویان سابق کارشناسی ارشد، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه ارومیه 22 12 2015 46 4 677 685 19 04 2014 04 10 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56915.html

امروزه، به دلیل تأثیرات زیانبار مواد شیمیایی بر سلامت انسان و محیط زیست، استفاده از این مواد با محدودیت‌هایی روبه‌روست. از‌این‌رو، یافتن مواد سالم برای استفاده در فناوری پس از برداشت میوه‏ها و سبزی‌ها ضروری است. در این پژوهش، تأثیر غلظت‏های مختلف اسید سالیسیلیک (0، 1، 2 میلی‏مولار) به همراه ژل آلوئه‏ورا در غلظت‏های 0، 25 درصد و 33 درصد بر عمر پس از برداشت میوۀ انگور رقم قزل‏ازوم در دمای 5/0±0درجۀ سانتی‏گراد و رطوبت نسبی 95-90 درصد به مدت 45 و 90 روز در آزمایشگاه دانشگاه ارومیه در مهرماه 1390 بررسی شد. آزمایش به صورت فاکتوریل بر پایۀ طرح کاملاً تصادفی و در 6 تکرار انجام شد که هر تکرار محتوی 500 گرم انگور بود. ویژگی‌های کیفی میوه شامل pH آب میوه، اسید قابل تیتراسیون، ویتامین ث، فعالیت آنتی‏اکسیدانی، فعالیت آنزیم کاتالاز و درصد کاهش وزن بررسی شد. اسید سالیسیلیک 2 میلی‌مولار و ژل آلوئه‏ورا 33 درصد به طور معناداری سبب حفظ فعالیت آنتی‏اکسیدانی و آنزیم کاتالاز میوه شدند و تأثیر معناداری بر مقدار اسیدهای آلی، ویتامین ث، درصد کاهش وزن و pH آبمیوه داشتند.

 آنزیم کاتالاز انبارمانی پوشش خوراکی خصوصیات کیفی Asghari, M.R. & Shirzad, H. (2008). Application of postharvest salicylic acid in postharvest on quality properties, decay index and fruit storage in apple, pear and grape variety. Final ReportResearch Project, 87 pages. Adisa, V.A. (1986). The influence of molds and some storage factors on the ascorbic acid content of orange and pineapple fruits. Food Chemistry, 22, 139-146. Asghari, M.R. & Babalar, M. (2009). Use of salicylic acid to increase strawberry fruit total antioxidant activity. Acta Horticulture, 877, 1117-1122. Ayala-Zavala, J.F., Wang, S.Y., Wang, C.Y & González-Aguilar, G. A, (2007). High oxygen treatment increases antioxidant capacity and postharvest life of strawberry fruit. Food Technology and Biotechnology, 45, 166-173. Beers, R. F. & Sizer, I.W. (1952). Aspectrophotometric method for measuring the breakdown of hydrigen peroxide by cabalase. Biochemistry, 95, 133-140. Benzie, I.F. & Strain, J.J. (1996). The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of antioxidant power: The FRAP assay. Analytical Biochemistry, 239, 70-76. Chan, Z.L. & Tian, S.P. (2006). Induction of H2O2-metabolizing enzymes and total protein synthesis in sweet cherry fruit by Pichia membranefaciens and salicylic acid treatment. Postharvest Biology and Technology, 39, 314-320. Choi, S., Son, B.W. & Son, Y.S. (2001). The wound-healing effect of a glycoprotein fraction isolated from Aloe vera. British Journal of Dermatology, 45, 535-545. Cioroi, M. (2007). Study on L-ascorbic acid contents from exotic fruits. Cercetari Agronomicin Moldova, 1, 23-27. Cordenunsi, B., Genovese, M., Nascimento, J., Hassimotto, N., Santos, R. & Laiolo, F. (2005). Effects of temperature on the chemical composition and antioxidant activity of three strawberry cultivars. Food Chemistry, 91, 113-121. Crisosto, C.H., Garner, D. & Crisosto, G. (2002). High carbon dioxide atmospheres affect stored ‘Thompson Seedless’ table grapes. Horticulture science, 37, 1074-1078. Ergun, M. & Satici, F. (2012). Use of Aloe vera gel as blopreservantive for ‘Granny Smith’ and ‘red Chief’ apples. The Journal of Animal & Plant Sciences, 22, 363-368. Han, T., Wang, Y., Li, L. & Ge X. (2003). Effect of exogenous salicylic acid on postharvest physiology of peaches. Acta Horticulturae, 628(628):583-589. Lakshmi, S., Abirami, L. S. S., Pushkala, R. & Srividya, N. (2011). Enhancement of storage life and quality maintenance of papaya fruits using Aloe vera based antimicrobial coating. Indian Journal of Biotechnology, 10(1): 83-89. Martinez-Romero, D., Alburquerque, N., Valverde, J. M., Guillen, F., Castillo, S., Valero, D. & Serrano, M. (2005). Postharvest sweet cherry quality and safety maintenance by Aloe vera treatments: A new edible coating. Postharvest Biology and Technology, 114, 27-32 Meng, X., Li, B., Liu, J. & Tian, S. (2007). Physiological responses and quality attributes of table grape fruit to chitosan preharvest spray and postharvest coating during storage. Food Chemistry, 106: 501-508. Morillon, V., Debeaufort, F., Blond, G., Capelle, M, & Voilley, A. (2002). Factors affecting the moisture permeability of lipid-based edible films: a review. Crit. Rev. Food Science, 42, 67-89. Muhammad, J. A., Sigh, Z. & Ahmad, S. KH. (2009). Postharvest Aloe vera gel-coating modulates fruit ripening and quality of ‘Arctic Snow’ nectarine kept in ambient and cold storage. International Journal of Food Science and Technology, 44, 1024-1033. Overmyer, K., Brosche, M. & Kangasjarvi, J. (2003). Reactive oxygen species and hormonal control of cell death. TREND in Plant Science, 8, 336-342. Ranjbaran, E., Sarikhani, H., Wakana, A. & Bakhshi, D. (2011). Effect of Salicylic Acid on Storage Life and Postharvest Quality of Grape (Vitis vinifera L. cv. Bidaneh Sefid). Laboratory of Horticultural Science, 56, 263-269. Raskin, I. (1992a). Salicylic, a new plant hormone. Plant Physiology, 99, 799-803. Riaie, S. (2010). Effect of Aloe vera gel and calcium chloride the storage life of peach fruit quality characteristics, MS Thesis horticulture, Faculty of Agriculture,Universityof Urmia, 92 p. (in Farsi) Sayyari, M., Babalar, M., Kalantari, S., Serrano, M. & Valero, D. (2009). Effect of salicylic acid treatment on reducing chilling injury in stored pomegranates. Postharvest Biology and Technology, 53, 152-154. Sonego, L., Lurie, S., Zuthi, Y., Kaplonov, T., Ben-Arie, R. & Kosto, I. (2002). Factors affecting taste scores of early season seedless table grape cv. Mystery and Prime. journal of agricultural food chemistry, 50, 544-548. Srivastava, M.K. & Dwivedi, U.N. (2000). Delayed ripening of banana fruit by salicylic acid. Plant Science, 158, 87-96. Tavarani, S., Deglinnnocenti, E., Remorini, D., Massai, R. & Guidi, L. (2008). Antioxidant capacity ascorbic acid, total phenols and cartenoids changes during harvest and storage of Hayward kiwifruit. Food Chemistry, 107, 282le-288. Xu, X. & S. Tian. (2008). Salicylic acid aviated pathogen–induced oxidative stress in harvested sweet cherry fruit. Postharvest Biology and Technology, 49, 379-385. Zokaee Khosroshahi, M.R., Esna-Ashari, M. & Ershadi, A. (2007). Effect of exogenous putrescine on postharvest life of strawberry fruit. Horticultural Science, 114, 27-32. Zhao-liang, L., Young-Bing, Y., Cheng-Lian, L., Zong-Xun, C. & Tsung-Hsum, T. (1998). Regulation of antioxidant enzymes by salicylic acid in cucumber leaves. Acta Botanica Science, 40(4), 356-361. Zavala, J. F. A., Wang, S. Y, Wang, C.Y. & Aguilar, G.A.G. (2004). Effect of storage temperatures on antioxidant capacity and aroma compounds in strawberry fruit. Swiss Society of Food Science & Technology, 39, 279-485. Zhao-liang, L., Young-Bing, Y., Cheng-Lian, L., Zong-Xun, C. & Tsung-Hsum, T. (1998). Regulation of antioxidant enzymes by salicylic acid in cucumber leaves. Acta Botanica Science, 40(4), 356-361. Zokaee Khosroshahi, M.R., Esna-Ashari, M. & Ershadi, A, (2007). Effect of exogenous putrescine on postharvest life of strawberry fruit. Horticultural Science, 114, 27-32.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.56916 مقاله پژوهشی شناسایی، اهلی‌کردن و مقایسۀ عملکرد نژاد بومی قارچ صدفی (Pleurotus spp) با نژاد تجاری شناسایی، اهلی‌کردن و مقایسۀ عملکرد نژاد بومی قارچ صدفی (Pleurotus spp) با نژاد تجاری رئیسی فاطمه کارشناس ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشگاه گیلان پیوست غلام علی استاد، گروه علوم باغبانی، دانشگاه گیلان حسن پور اصیل معظم استاد، گروه علوم باغبانی، دانشگاه گیلان الفتی جمال علی استادیار گروه علوم باغبانی، دانشگاه گیلان خداپرست سید اکبر دانشیار گروه گیاه‌پزشکی، دانشگاه گیلان 22 12 2015 46 4 687 692 05 08 2013 26 08 2014 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_56916.html

در این پژوهش ابتدا دو نژاد قارچ صدفی که از نظر صفات ظاهری تفاوت نشان می‏دادند از جنگل‌های گیلان جمع‌آوری و سپس در محیط کشت MEA کاشته شدند. پس از تکمیل رشد میسیلیوم در ظروف کشت، اسپان قارچ تهیه ‌و کشت قارچ در بستر کاه برنج انجام شد. در‌نهایت پس از برداشت محصول، شناسایی گونه‏های وحشی با استفاده از روش PCR و روش‏های میکرو و ماکروسکوپی صورت گرفت. بر این اساس گونه‏های شناسایی‌شده شامل Pleurotus ostreatus و Pleurotus pulmonariusبودند. نتایج این پژوهش نشان داد که کوتاه‏ترین زمان تشکیل پین‏هد مربوط به نژاد تجاری فلوریدا (8/14روز) و بیشترین میزان پروتئین (24/26 درصد) و نیتروژن (77/9 درصد) مربوط به نژاد استراتوس بود. در سایر صفات اندازه‏گیری شده تفاوت معنا‏داری بین نژادهای مختلف وجود نداشت.

 قارچ صدفی‌ کشت بافت PCR Pleurotus ostreatus Pleurotus pulmonarius Adamovic, M., Grubic, G., Milenkovic, I., Jovanovic, R., Prptic, R., Sretenovic, L. & Stoicevic, L. J. (1997). The biodegradation of wheat straw by Pleurotus ostreatus mushroom and its use in cattle feeding. Animal Food Science Technology, 71, 357-362. Alam, N., Amin, R., Khan, A., Ara, I., Shim, M., Lee, M. & Lee,T. (2008). Nutritional analysis of cultivated mushrooms in Bangladesh –Pleurotus ostreatus, Pleurotus sajor-caju, Pleurotus florida and Calocybe indica. Mycobiology, 36(4), 228-232. Asghar, R., Tariq , M. & Rehaman, T. (2007). Propagation of Pleurotus sajor-caju (Oyster mushroom) through tissue culture. Pakistan Journal of Botany, 39(4), 1383-1386. Baysal, E., Peker, H., Yalinkilic, M. & Temiz , A. (2003). Cultivation of oyster mushroom on waste paper with some added supplementary materials. Bioresource Technology, 89, 95-97. Bonatti, M., Karnopp, P., Soares, H. M. & Furlan, S. A. (2004). Evaluation of Pleurotus ostreatus and Pleurotus sajor-caju nutritional characteristics when cultivated in different lignocellulosic wastes. Food chemistry, 88, 425-428. Dus, N. & Mukherjee, M. (2007). Cultivation of Pleurotus ostreatus on weed plants. Bioresource Technology. 98, 2723-2726. Gbolagade, J., Ajayi, A., Oku, I. & Wankasi, D. (2006). Nutritive value of common wild edible mushrooms from southern nigeria. Global Journal of Biotechnology & Biochemistry, 1(1), 16-21. Han, J. (1999). The influence of photosyntheticbacteria treatments on the crop yield, dry matter content, and protein cotent of the mushroom Agaricus bisporus. Scientia Horticulturae, 82, 171-178. Jonathan, S. G. & Fasidi, I. O. (2003). Studies on Psathyerella atroumbonata (Pegler), a Nigerian edible fungus. Food Chemistry, 81, 481-484. Khan, Md. A., Ruhul Amin, S. M., Nazim Uddin, Md., Tania, M. & Alam, N. (2008). Comparative study of the nutritional composition of oyster mushrooms cultivated in Bangladesh. Bangladesh Journal of Mushroom, 2(1), 9-14. Norouzi, A., Peyvast, Gh. & Olfati, J.A. (2008). Oilseed rape straw for cultivation of oyster mushroom. Maejo International Journal of Science and Technology, 2(3), 502-507. Obodai, M., Cleland-Okine, J. & Vowotor, K. A. (2002). Comparative study and yield of Pleurotus ostreatus mushroom on different lignocellulosic by-products. Microbiology and Biotechnology, 53, 42-47. Olfati, J.A. & Peyvast, Gh. (2008). Lawn clippings for cultivation of oyster mushroom. International Journal of Vegetable Science, 14(2), 98-103. Olfati. J.A., Peyvast, Gh. & Mami, Y. (2009). Identification and chemical properties of popular wild edible mushrooms from northern Iran. Journal of Horticulture and Forestry, 1(3), 48-51. Peyvast, Gh., Olfati, J.A., Kariminia, A. & Fallah, A. (2009). Bradyrhizobium bacteria increase oyster mushroom quality. Journal of pure and Applied Microbiology, 3(2), 421-424. Royse, D. J., Rhodes, T. W., Ohga, S. & Sanchez., J. E. (2004). Yield, mushroom size and time to production of pleurotus cornucopiae (oyster mushroom) grown on switch grass substrate spawned and supplemented at various rates. Bioresource Technology, 91, 85-91. Singh, D. & Singh, S. P. (2005). Modern Mushroom Cultivation. Updesh Purohit for Agrobios. Pp. 86-93. Yildiz, S., Yildiz, U. G., Gezer, E. D. & Temiz, A. (2002). Some lignocellulosic wastes used as raw material in cultivation of the pleurotus ostreatus culture mushroom. Process Biochemistry, 38, 301-306. Zhang, R., Li, X. & Fadel, J. G. (2001). Oyster mushroom cultivation with rice and wheat straw. Bioresource Technology, 82, 277-284.
پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران علوم باغبانی ایران 2008-482X پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران 92 10.22059/ijhs.2015.57494 مقاله پژوهشی چکیده های انگلیسی 22 12 2015 46 4 1 15 28 05 2016 28 05 2016 Copyright © 2015, پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 2015 https://ijhs.ut.ac.ir/article_57494.html

unavailable